2.3. Screening experiments2.3.1. In

2.3. Screening experiments
2.3.1. Inoculation
Two screening experiments were conducted in a greenhouse to
evaluate the ability of the ten isolates/strains to endophytically colonize
cassava plants; one with the five B. bassiana isolates/strains
and one with the five M. anisopliae isolates/strains. Each treatment
consisted of 12 cassava plants, which were grown and prepared
for inoculation according to the methods outlined above at 2.1. Each
cassava plant root area was drenched with 100 mL of inoculum,
applied to the soil surface around the base of the plant 14–15 days
after the cassava cuttings were planted in the pots. At this time,
the buds on the cutting of the cassava plants had already produced
roots and shoots. Control plant pots were inoculated with 100 mL
of sterile distilled water containing 0.1% Triton X-100. The plants
were arranged in the greenhouse in a randomized block design with
12 blocks, each block containing six plants (five treatment plants
and one control). A root drench was chosen as the best inoculation
method after concluding a pilot study comparing root drench to
immersion of cuttings. The immersion method involved the immersion
of 200 mm long cassava stem cuttings in fungal inoculum for up
to 2 h prior to planting the cuttings. However, this method resulted
in only one root subsequently being colonized by B. bassiana and no
roots colonized by M. anisopliae

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. ตรวจทดลองการ2.3.1. กักบริเวณดำเนินการทดลองตรวจกรองสองในเรือนกระจกเพื่อประเมินความสามารถของสิบแยก/สายพันธุ์ endophytically มีการตั้งรกรากมันสำปะหลังพืช หนึ่งกับห้า B. bassiana แยก/สายพันธุ์และหนึ่งในห้า M. anisopliae แยก/สายพันธุ์ การรักษาแต่ละประกอบด้วยพืชมันสำปะหลัง 12 ที่ปลูก และเตรียมสำหรับกักบริเวณตามวิธีที่ระบุไว้ข้างต้นที่ 2.1 แต่ละบริเวณรากพืชมันสำปะหลังเป็นเปียกโชกไป ด้วย 100 มล.ของ inoculumใช้กับพื้นผิวดินรอบ ๆ ฐานของโรงงาน 14-15 วันหลังจากตัดมันสำปะหลังที่ปลูกในกระถาง ตอนนี้ตาบนการตัดพืชมันสำปะหลังมีผลิตอยู่แล้วรากและหน่อ ควบคุมกระถางถูก inoculated กับ 100 มิลลิลิตรน้ำกลั่นปลอดเชื้อประกอบด้วย 0.1% Triton X-100 พืชถูกจัดอยู่ในเรือนกระจกในการออกแบบบล็อกสุ่มด้วย12 บล็อก แต่ละบล็อคที่ประกอบด้วยพืชหก (ห้ารักษาพืชและตัวควบคุมหนึ่ง) เปียกโชกรากถูกเลือกให้เป็นกักบริเวณที่ดีที่สุดวิธีหลังจากจบการศึกษานำร่องรากเปียกโชกเพื่อเปรียบเทียบแช่ของตัด วิธีแช่ที่เกี่ยวข้องกับการแช่การตัดลำต้นมันสำปะหลังยาว 200 มม.ใน inoculum เชื้อราสำหรับค่าไป 2 ชม.ก่อนปลูกการตัด อย่างไรก็ตาม วิธีการนี้ส่งผลให้เกิดในต่อมาเป็นอาณานิคม โดย B. bassiana และไม่มีรากเดียวรากอาณานิคม โดย M. anisopliae

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 การทดลองการคัดกรอง
2.3.1 การฉีดวัคซีน
สองการทดลองการตรวจคัดกรองได้ดำเนินการในเรือนกระจกเพื่อ
ประเมินความสามารถในสิบสายพันธุ์ / สายพันธุ์เพื่อ endophytically รกราก
พืชมันสำปะหลัง; อย่างใดอย่างหนึ่งกับห้า B. bassiana แยก / สายพันธุ์
และเป็นหนึ่งกับห้า M. anisopliae แยก / สายพันธุ์ การรักษาแต่ละครั้ง
ประกอบด้วย 12 พืชมันสำปะหลังที่ปลูกและเตรียมความพร้อม
สำหรับการฉีดวัคซีนตามวิธีการที่ระบุไว้ข้างต้นที่ 2.1 แต่ละ
พื้นที่รากพืชมันสำปะหลังเปียกโชกด้วย 100 มลเชื้อ,
นำไปใช้กับพื้นผิวดินรอบฐานของพืช 14-15 วัน
หลังจากการตัดมันสำปะหลังที่ปลูกในกระถาง ในเวลานี้
ตาบนตัดของพืชมันสำปะหลังที่มีการผลิตอยู่แล้ว
รากและยอด กระถางควบคุมถูกเชื้อด้วย 100 มิลลิลิตร
ของน้ำกลั่นที่มีการฆ่าเชื้อ 0.1% Triton X-100 พืชที่
ถูกจัดให้อยู่ในเรือนกระจกในการออกแบบบล็อกสุ่มกับ
12 บล็อกบล็อกที่มีหกพืช (โรงบำบัดห้าแต่ละ
และการควบคุมอย่างใดอย่างหนึ่ง) แช่รากได้รับเลือกเป็นฉีดวัคซีนที่ดีที่สุด
วิธีการหลังจากที่จบการศึกษานำร่องเปรียบเทียบแช่ราก
แช่ของกิ่ง วิธีการที่เกี่ยวข้องกับการแช่แช่
200 มมมันสำปะหลังยาวตัดลำต้นในเชื้อเชื้อราได้ถึง
2 ชั่วโมงก่อนที่จะมีการปลูกกิ่ง แต่วิธีนี้ส่งผลให้
ในเวลาเพียงหนึ่งรากภายหลังถูกอาณานิคมโดย B. bassiana และไม่มี
รากอาณานิคมโดย M. anisopliae

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 การทดลองฉาย2.3.1 . การฉีดวัคซีน2 การคัดกรองในเรือนกระจกเพื่อการทดลองประเมินความสามารถของสิบสายพันธุ์ / สายพันธุ์ endophytically อพยพพืชมันสำปะหลัง ; หนึ่งกับห้าพ. bassiana สายพันธุ์ / สายพันธุ์และหนึ่งกับห้าเมตร anisopliae สายพันธุ์ / สายพันธุ์ การรักษาแต่ละจำนวน 12 ต้นมันสำปะหลังที่ปลูก และเตรียมสำหรับการฉีดวัคซีนตามวิธีการที่ระบุไว้ข้างต้นที่ 2.1 . แต่ละเขตรากพืชมันสำปะหลังเปียกด้วยปริมาณ 100 ml ,ใช้กับพื้นผิวดินรอบฐานของพืช 14 – 15 วันหลังจากตัดมันสำปะหลังปลูกในกระถาง ในเวลาแบบนี้ตาบนตัดของพืชได้ผลิตมันสำปะหลังรากและหน่อ หม้อโรงงานควบคุมจำนวนเชื้อ 100 มล.ของการฆ่าเชื้อน้ำที่ประกอบด้วย 0.1% Triton X-100 . ในพืชถูกจัดอยู่ในเรือนกระจกใน Randomized Block ด้วย12 บล็อก แต่ละบล็อกที่มีหกพืช ( ห้ารักษาพืชและควบคุม ) รากแช่ถูกเลือกเป็นเชื้อที่ดีที่สุดวิธีการหลังจากสรุปกรณีศึกษาเปรียบเทียบรากแช่เพื่อแช่ของกิ่ง . การแช่วิธีเกี่ยวข้องกับ Bluesยาว 200 มม. ตัดต้นมันสำปะหลังโดยเชื้อราที่ขึ้นใน2 ชั่วโมงก่อนปลูกกิ่ง . แต่วิธีนี้ ส่งผลให้ในเพียงรากเดียวต่อมา ที่อยู่โดย bassiana และไม่มีโรครากอาณานิคมโดยม.