2.3.2. Laboratory measurements of Mineral-N
NH4 + -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 + -N. NH4 + -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
potential of soils and the effect of incorporation of Eucalyptus plant
residues in a laboratory lysimeter leaching experiment maintained
for 400 days. The incubators were constructed by removing the
bottom from a 120-mL screw-top plastic sample container
(approximately 45 mm diameter). About 30–45 holes (1/160
diameter) were drilled in the lid of the container, which was
inverted, so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore, catalogue No. AP25 04200) prevented silt from clogging
the finer pre-filter below. Soil (50 cm3) was packed into the incubators
at field bulk density. In the treatments with plant residues, leaf
material was cut into small pieces and spread uniformly on top
(equivalent to 4 Mg dry material ha1 on a surface-area basis).
Another pre-filter (Millipore, AP25 042 00) was then placed on
top of the soil/plant residues, to prevent the entry of leaching solution
from the top displacing soil from the surface. A size 38 rubber
bung sealed the top of the incubator. The rubber bung was fitted
with tap (Baxter-Pharmaseal three-way stopcock, Cat No. K75)
through which leaching solution and compressed air was admitted.
Compressed air was distributed from a pressure regulator (set at
25 kPa) to the valve on each chamber via a network of hoses. This
valve was closed when pressurized for leaching and opened when
not leaching. To seal the incubator, the bung was firmly pressed in
and taped down to withstand the pressure of a leaching cycle and
stay in place during the incubation period. The entire experimental
set-up was mounted on a stand with leachate collecting in a bottle
below each incubator. Leachate solution, comprising 240-mL of
0.01 M CaCl2/0.01 M KCl, was slowly passed through the soil in
the incubator by adding it to the top of the soil in the incubator (in several aliquots) and applying 25 kPa positive air pressure to
the chamber. Leachate was suctioned into receiving container by
applying a vacuum of 4–5 kPa for 1 to 2 s at 45 min intervals
during the 8 h cycle to ensure uniform leaching of the soil column.
After a complete leaching cycle, the volume of leachate was
measured and a sub-sample was taken for the determination of
NH4 + -N and NO3
-N. Leachate sub-samples were analyzed immediately
or frozen until the analysis was completed. More details on
laboratory scale micro-lysimeter leaching experiments are
provided in Mendham et al., 2009. Mineral nitrogen in leachate
was determined as described above.
2.3.4. Potentially available nitrogen (anaerobic-N)
Portions of moist soil (ca. 10–20 g dry soil) were weighed into
125 ml plastic vial and 30 ml of distilled water added, and incubated
in a hot water bath at 40 C for 7 days. After the incubation
time, 30 ml of 2 M KCl was added to the soil samples, and they
were shaken end-over-end for 1 h. All the KCl extracts were
extracted and analyzed using a Technicon II auto analyzer.
2.3.5. Soil microbial biomass C
Soil microbial biomass C was estimated at 2 years after plantation
establishment through the chloroform fumigation-extraction
method (Brookes et al., 1985; Jenkinson and Powlson 1976). Four
replicate soil samples (field fresh, as collected for the N mineralization
above) were fumigated with ethanol-free chloroform for
15 min. In brief, 2 sub-samples of moist soil (10–15 g, approximating
around 10 g on dry weight basis) were weighed into a
glass vial, one set was fumigated with ethanol-free chloroform in
a desiccator by warming the chloroform and applying a vacuum
to vaporize it. The wall of the desiccator was lined with wet tissue
paper to maintain a humid soil atmosphere during repeat vacuum
application. The vacuum was applied for 5 min, after which the
desiccators with soil samples were kept in dark conditions at
25 C for 24 h. A second, non-fumigated set was treated the same
way, but without the fumigation step. After 24 h, the samples were
extracted with 0.5 M K2SO4 for 30 min. by shaking on an endto-
end shaker. Microbial C and N was estimated as the difference
in C and N concentrations between the fumigated and unfumigated
samples, multiplied by a Kec of 0.4 and Ken of 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6. Total C, N and P
Organic carbon was determined by the wet digestion method
(Walkley and Black, 1934). Total N and P in soil was assessed by
Micro-kjeldahl digestion of soil and chemical analysis of the
extracts on an auto analyser (Rayment and Higginson, 1992). All
the values were expressed on an oven-dry-weight basis.
2.4. Statistical analysis
The influence of slash management on soil C, N, P, N mineralization
and microbial biomass was tested by one-way analysis of
variance (ANOVA) at each sampling time, and when treatment
effects were significant, the least significant difference test was
used to assess which treatment means were different from each
other (a = 0.05). To increase the power of the analysis further, site
was included as a replicate factor, with replicates within-sites as a
nested replicate effect. The Genstat statistical package (Lawes
Agricultural Trust, Rothamsted, United Kingdom) was used to
conduct all statistical analysis.
2.3.2 การปฏิบัติวัดแร่-NNH4 + -N และ NO3 - แบบฟอร์ม -N แร่ N ในตัวอย่างดินเริ่มต้น และสุดท้ายสกัด ด้วย MKCl 1 (อัตราส่วน 1:5) โดยเขย่าสำหรับ 1 h ในการเชคเกอร์สิ้นสุดเพื่อสิ้นสุดการ สารสกัดจาก KCl ดินได้รับอนุญาตขาตั้งสำหรับ30 นาที และกรองผ่านหินกระดาษกรอง (Whatman#42) ในระหว่างการสกัด สุดถูกนำไปทำสกัดภายในระยะเวลาสั้น ๆ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนจากการบรรยากาศ NH4 + - ตอนเหนือ NH4 + -N ถูกกำหนดโดยไฮโปซาลิไซเลตและ NO3-เนื้อหาตามด้วยทองแดง - Nคอลัมน์แคดเมียมโดย analyser อัตโนมัติเป็นขั้นตอนแบ่งเป็นส่วน ๆ(Technicon II, Technicon Corporation โอ๊คแลนด์ CA สหรัฐอเมริกา) แร่ความเข้มข้นของ N ในดินได้แก้ไขสำหรับความชื้นเริ่มต้นเนื้อหาของตัวอย่างดิน และแสดงตามน้ำหนักเตาอบแห้งสุทธิ N mineralized ระหว่างระยะฟักตัวถูกดำเนินการเป็นการแร่ N ผลต่างระหว่างตัวอย่างเริ่มต้น และสุดท้าย และแสดงบนข้อมูลพื้นฐานน้ำหนักดินแห้งเตาอบ (Mendham et al., 2004)2.3.3 การละลายทดลอง (แอโรบิก)การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อสำรวจการ mineralization ระยะยาวศักยภาพของดินเนื้อปูนและผลของการจดทะเบียนของยูคาลิปตัสพืชตกค้างใน lysimeter ห้องปฏิบัติการละลายการทดลองรักษาวัน 400 การผลิตและถูกสร้าง โดยการเอาการจากคอนเทนเนอร์ 120 mL ตัวอย่างพลาสติกสกรูด้านล่าง(ประมาณ 45 มม.เส้นผ่าศูนย์กลาง) ประมาณ 30 – 45 หลุม (1/160เส้นผ่าศูนย์กลาง) ถูกเจาะในฝาของภาชนะบรรจุ ซึ่งกลับ เพื่อให้ฝาดำเนินเป็นฐานของการบ่มเพาะวิสาหกิจ ที่ฝาถูกติดตั้งตัวกรองก่อน (มากก่อนกรอง แคตตาล็อกหมายเลขAP15 046 00) เป็นแผ่นสำหรับการสนับสนุนสำหรับเมมเบรนแบบโพลีคาร์บอเนตแล้ว ตัวกรองก่อนอื่นที่วางอยู่ด้านบนเพื่อป้องกันการขับของรูขุมขนในตัวเมมเบรน มีโอริงข้างตัวก่อนปิดผนึกหน่วยเมื่อฝาเรื่องบนอย่างแน่นหนา กรองก่อนอื่น(มาก แคตตาล็อกหมายเลข AP25 04200) ป้องกันไม่ให้ตะกอน cloggingปลีกย่อยก่อนตัวด้านล่าง ดิน (50 cm3) ถูกบรรจุลงในการผลิตและที่ฟิลด์จำนวนมากความหนาแน่น ในการรักษากับโรงงานตก ใบไม้วัสดุที่ถูกตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และกระจายสม่ำเสมอเมื่อเทียบเคียงด้านบน(เท่ากับ 4 มิลลิกรัมแห้งวัสดุฮา 1 ตามพื้นผิวของพื้นที่)กรองก่อนอื่น (มาก AP25 042 00) ถูกวางลงบนด้านบนของตกดิน/พืช การป้องกันการป้อนรายการของโซลูชันการละลายจากด้านบนฎพยัคฆ์ดินจากพื้นผิว ยางขนาด 38บึงปิดสนิทด้านบนสุดของการบ่มเพาะวิสาหกิจ บุ่งยางถูกติดตั้งมีประปา (Baxter Pharmaseal สาม stopcock หมายเลขแมว K75)ซึ่งละลายโซลูชันและลมได้รับเข้าลมมีการกระจายจากดัน (ตั้งที่25 kPa) กับวาล์วในแต่ละหอการค้าผ่านเครือข่ายของท่อ นี้ปิดวาล์วเมื่อหนีสำหรับละลาย และเปิดเมื่อไม่ละลาย ปิดที่บ่มเพาะวิสาหกิจ บึงมั่นกดในและบันทึกเทปลงทนต่อแรงดันของวงจรการ leaching และเข้าพักในระยะฟักตัว ทดลองทั้งหมดตั้งค่าถูกติดตั้งบนขาตั้ง leachate เก็บในขวดด้านล่างแต่ละบ่มเพาะวิสาหกิจ โซลูชั่น leachate, 240 mL ของประกอบด้วย0.01 M CaCl2/0.01 M KCl ช้าส่งผ่านดินในบ่มเพาะวิสาหกิจ โดยเพิ่มด้านบนของดินในการบ่มเพาะวิสาหกิจ (ในหลาย aliquots) และใช้ความดันอากาศเป็นบวก kPa 25 ไปหอ Leachate ถูก suctioned เข้ารับบรรจุโดยใช้ดูดของ 4 – 5 kPa สำหรับ 1 2 s ในช่วงเวลา 45 นาทีในระหว่างรอบ 8 h ให้ละลายเป็นรูปแบบของคอลัมน์ดินหลังจากรอบการ leaching สมบูรณ์ ปริมาตรของ leachate ถูกวัด และตัวอย่างย่อยถูกใช้สำหรับความมุ่งมั่นของNH4 + -N และ NO3-มีวิเคราะห์ตัวอย่างย่อย N. Leachate ทันทีหรือแช่แข็งจนกว่าการวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ รายละเอียดเพิ่มเติมมีห้องปฏิบัติการขนาดไมโคร lysimeter ละลายทดลองจัดให้ใน Mendham et al., 2009 ไนโตรเจนแร่ใน leachateได้กำหนดที่อธิบายข้างต้น2.3.4 พัฒนา,อาจมีไนโตรเจน (ไม่ใช้ N)ส่วนของดินชุ่มชื่น (ca. 10 – 20 กรัมแห้งดิน) มีน้ำหนักเป็นคอนแทคพลาสติก 125 ml 30 ml ของน้ำกลั่นเพิ่ม และ incubatedในอ่างน้ำอุ่นที่ 40 C 7 วัน หลังจากที่คณะทันตแพทยศาสตร์เวลา 30 ml 2 M KCl ได้เพิ่มตัวอย่างดิน และพวกเขาถูกเขย่าท้ายมากกว่าสิ้นสำหรับ 1 h สารสกัดจาก KCl ได้แยก และวิเคราะห์โดยใช้การวิเคราะห์โดยอัตโนมัติ Technicon II2.3.5 การดินชีวมวลจุลินทรีย์ Cชีวมวลจุลินทรีย์ดิน C ได้ประมาณ 2 ปีหลังสวนก่อตั้ง โดยคลอโรฟอร์ม fumigation-สกัดวิธี (เดอะ et al., 1985 เจนคินสันและ Powlson 1976) สี่จำลองตัวอย่างดิน (ฟิลด์สด เป็นการรวบรวมการ N mineralizationเหนือ) ได้ผ่านรมฟรีเอทานอลคลอโรฟอร์มสำหรับ15 นาที ในโดยย่อ ตัวอย่างย่อย 2 ดินชุ่มชื่น (10-15 g ระหว่างประมาณ 10 กรัมเป็นน้ำหนักแห้ง) มีน้ำหนักในการแก้วคอนแทค ชุดหนึ่งผ่านรมฟรีเอทานอลคลอโรฟอร์มในdesiccator ทางร้อนคลอโรฟอร์มใช้สุญญากาศการ vaporize มัน ผนังของ desiccator ที่ได้เต็มไป ด้วยเนื้อเยื่อที่เปียกกระดาษเพื่อรักษาบรรยากาศดินชื้นระหว่างดูดซ้ำแอพลิเคชัน เครื่องดูดฝุ่นที่ใช้ใน 5 นาที ที่desiccators กับตัวอย่างดินที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่C 25 ใน 24 ชม ชุดที่สอง ไม่ผ่านรมมีรับเหมือนกันทาง แต่ไม่ มีแบบ fumigation ขั้นตอน ตัวอย่างดีหลังจาก 24 ชมสกัด ด้วย 0.5 M K2SO4 ใน 30 นาที โดยเขย่าใน endto การ-เชคเกอร์สิ้นสุด C และ N จุลินทรีย์ได้ประมาณเป็นผลต่างในความเข้มข้น C และ N ปรู๊ฟ และ unfumigatedตัวอย่าง คูณ Kec ของ 0.4 และเคน 0.45 (Sparling 1992)2.3.6. รวม C, N และ Pคาร์บอนอินทรีย์ถูกกำหนด โดยวิธีการย่อยอาหารเปียก(Walkley และดำ 1934) รวม N และ P ในดินถูกประเมินโดยไมโคร-kjeldahl การย่อยอาหารของการวิเคราะห์ดินและสารเคมีสารสกัดในการ analyser อัตโนมัติ (Rayment และ Higginson, 1992) ทั้งหมดค่าถูกแสดงเป็นเตาอบแห้งน้ำหนักตาม2.4. สถิติวิเคราะห์อิทธิพลของจัดการเฉือนดิน C, N, P, N mineralizationและชีวมวลจุลินทรีย์ได้รับการทดสอบ โดยการวิเคราะห์แบบทางเดียวผลต่าง (การวิเคราะห์ความแปรปรวน) ในแต่ละครั้งที่สุ่มตัวอย่าง และเมื่อรักษาลักษณะพิเศษสำคัญ การทดสอบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยที่สุดใช้ในการประเมินหมายถึงการรักษาที่ไม่แตกต่างจากอื่น ๆ (= 0.05) เพื่อเพิ่มอำนาจการวิเคราะห์เพิ่มเติม เว็บไซต์รวมอยู่เป็นปัจจัยการ replicate เหมือนกับภายในเว็บไซต์เป็นการผลการ replicate ซ้อนกัน แพคเกจทางสถิติ Genstat (Lawesบริษัทเกษตร Rothamsted สหราชอาณาจักร) ถูกใช้ในการดำเนินการวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมด
การแปล กรุณารอสักครู่..
![](//thimg.ilovetranslation.com/pic/loading_3.gif?v=b9814dd30c1d7c59_8619)
2.3.2 วัดในห้องปฏิบัติการของแร่-N
NH4 + -N และ NO3 - รูปแบบ -N แร่ไม่มีในตัวอย่างดินครั้งแรกและครั้งสุดท้ายที่
ถูกสกัดด้วย 1 MKCl (1: 5 อัตราส่วน) โดยการเขย่าเป็นเวลา 1 ชั่วโมงในการ
ปั่นแบบ end-to-end สารสกัดจากดิน KCl ได้รับอนุญาตให้ยืนสำหรับ
30 นาทีและกรองผ่านกระดาษกรองก่อนล้าง (Whatman
# 42) ในระหว่างการสกัดความระมัดระวังสูงสุดถูกนำตัวไปดำเนินการ
สกัดภายในระยะเวลาสั้น ๆ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อน
จากบรรยากาศ NH4 + -N NH4 + -N ถูกกำหนดโดย
ซาลิไซ-ไฮโปคลอไรต์และ NO3
? เนื้อหา -N โดยการลดกับทองแดง
คอลัมน์แคดเมียมโดยการใช้การไหลแบ่งการวิเคราะห์อัตโนมัติ
(Technicon-II, Technicon คอร์ปอเรชั่น Oakland, CA, USA) แร่
เข้มข้นของไนโตรเจนในดินได้รับการแก้ไขสำหรับความชื้นเริ่มต้น
เนื้อหาของตัวอย่างดินและแสดงบนพื้นฐานน้ำหนักอบแห้ง.
สุทธิไม่มี mineralized ในช่วงระยะฟักตัวถูกนำมาเป็น
ความแตกต่างในแร่ธาตุที่ไม่มีข้อความระหว่างกลุ่มตัวอย่างครั้งแรกและครั้งสุดท้ายและ
แสดงใน ดินเตาอบแห้งโดยน้ำหนัก (เม็นดัม et al., 2004).
2.3.3 การรั่วไหล (แอโรบิก) ทดลอง
การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อสำรวจแร่ในระยะยาว
ที่มีศักยภาพของดินและผลกระทบจากการรวมตัวกันของยูคาลิปพืช
ตกค้างในห้องปฏิบัติการทดลอง Lysimeter ชะล้างเก็บรักษาไว้
400 วัน ตู้อบถูกสร้างขึ้นโดยการลบ
ด้านล่างจาก 120 มิลลิลิตรพลาสติกสกรูบนภาชนะตัวอย่าง
(ประมาณ 45 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง) ประมาณ 30-45 หลุม (1/160
เส้นผ่าศูนย์กลาง) ถูกเจาะฝาของภาชนะซึ่งถูก
คว่ำเพื่อให้ฝาปิดทำหน้าที่เป็นฐานของการบ่มเพาะ
ฝาก็พอดีกับกรองก่อน (คกรองก่อน, แคตตาล็อกฉบับที่
046 AP15 00) เป็นแผ่นการสนับสนุนสำหรับเมมเบรนโพลีคาร์บอเนต,
แล้วอีกกรองก่อนถูกวางไว้ด้านบนเพื่อป้องกันการอุดตัน
ของรูขุมขนในเมมเบรน โอริงข้างต้นกรองก่อนปิดผนึก
หน่วยเมื่อฝาถูกเมาแน่น อีกกรองก่อน
(คแคตตาล็อกฉบับที่ AP25 04200) ป้องกันไม่ให้เกิดตะกอนจากการอุดตัน
ปลีกย่อยกรองก่อนด้านล่าง ดิน (50 cm3) ได้รับการบรรจุลงในตู้อบ
ที่ความหนาแน่นฟิลด์ ในการรักษาด้วยสารตกค้างพืชใบ
วัสดุที่ถูกตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และกระจายสม่ำเสมอด้านบน
(เทียบเท่า 4 Mg วัสดุแห้งฮ่า 1 บนพื้นฐานผิวพื้นที่).
อีกกรองก่อน (ค AP25 042 00) ตอนนั้น วางอยู่บน
ด้านบนของสารตกค้างในดิน / พืชเพื่อป้องกันการเข้ามาของการแก้ปัญหาการชะล้าง
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ยางขนาด 38
จุกปิดผนึกด้านบนของศูนย์บ่มเพาะ ยางจุกก็พอดี
กับประปา (แบ็กซ์เตอร์-Pharmaseal ก๊อกปิดเปิดน้ำสามทางแมวที่ K75)
ที่ผ่านการแก้ปัญหาการชะล้างและการบีบอัดอากาศเข้ารับการรักษา.
อัดอากาศถูกกระจายออกมาจากตัวควบคุมแรงดัน (ชุดที่
25 ปาสคาล) เพื่อวาล์วในแต่ละ ห้องผ่านเครือข่ายของท่อ นี้
วาล์วถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะล้างและเปิดเมื่อ
ไม่ชะล้าง ในการปิดผนึกตู้อบ, จุกถูกกดมั่นในการ
บันทึกเทปและลงไปที่ทนต่อแรงดันของวงจรการชะล้างและ
อยู่ในสถานที่ในช่วงระยะฟักตัว ทดลองทั้ง
การตั้งค่าที่ถูกติดตั้งอยู่บนขาตั้งที่มีการจัดเก็บภาษีน้ำชะขยะในขวด
ด้านล่างแต่ละศูนย์บ่มเพาะ การแก้ปัญหาน้ำชะขยะประกอบด้วย 240 มิลลิลิตร
0.01 M CaCl2 / 0.01 M KCl ก็ผ่านไปอย่างช้า ๆ ผ่านดินใน
ศูนย์บ่มเพาะโดยการเพิ่มมันไปด้านบนของดินในการเพาะบ่ม (ในหลายส่วนลงตัว) และการประยุกต์ใช้ 25 kPa ความดันอากาศบวกกับ
ห้อง น้ำชะขยะถูกดูดลงไปในภาชนะที่ได้รับจาก
การใช้เครื่องดูดฝุ่น 4-5 กิโลปาสคาลสำหรับ 1 ถึง 2 วินาทีที่ 45 ช่วงเวลานาที
ในระหว่างรอบ 8 ชั่วโมงเพื่อให้แน่ใจว่าการชะล้างเครื่องแบบของคอลัมน์ดิน.
หลังจากรอบชะล้างสมบูรณ์ปริมาณของน้ำชะขยะที่ถูก
วัด และย่อยกลุ่มตัวอย่างถูกนำสำหรับการกำหนด
NH4 + -N และ NO3
? -N น้ำชะขยะตัวอย่างย่อยที่ได้มาวิเคราะห์ได้ทันที
หรือแช่แข็งจนการวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับ
การทดลองในห้องทดลองชะล้างไมโคร Lysimeter มีการ
ระบุไว้ในเม็นดัม et al., 2009 ไนโตรเจนแร่ในน้ำชะขยะ
ที่ถูกกำหนดตามที่อธิบายไว้ข้างต้น.
2.3.4 ที่อาจเกิดไนโตรเจนที่มีอยู่ (แบบไม่ใช้ออกซิเจน-N)
บางส่วนของดินที่ชื้น (แคลิฟอร์เนีย 10-20 กรัมดินแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
125 มล. ขวดพลาสติกและ 30 ml ของน้ำกลั่นเพิ่มและบ่ม
ในอ่างน้ำร้อนที่อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 7 วัน หลังจากการบ่ม
เวลา 30 มิลลิลิตร 2 M KCl ถูกบันทึกอยู่ในตัวอย่างดินและพวกเขา
ถูกเขย่าปลาย-over-ปลายเป็นเวลา 1 ชั่วโมง สารสกัดจากทั้งหมด KCl ถูก
สกัดและวิเคราะห์โดยใช้ Technicon II วิเคราะห์อัตโนมัติ.
2.3.5 ดินจุลินทรีย์ C
ดินชีวมวล C จุลินทรีย์ที่ประมาณ 2 ปีหลังจากที่สวน
สถานประกอบการที่ผ่านการรมควันคลอโรฟอร์มสกัด
วิธี (บรูกและคณะ, 1985;. เจนกินสันและ Powlson 1976) สี่
ตัวอย่างดินซ้ำ (ข้อมูลสดใหม่เป็นที่เก็บไว้สำหรับธาตุไนโตรเจน
ด้านบน) ถูกรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีสำหรับ
15 นาที ในช่วงสั้น ๆ 2 ย่อยตัวอย่างของดินที่ชื้น (10-15 กรัมใกล้เคียง
ประมาณ 10 กรัมโดยน้ำหนักแห้ง) ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น
ขวดแก้วหนึ่งชุดได้รับการรมยาที่มีเอทานอลคลอโรฟอร์มฟรีใน
เดซิโดยร้อนคลอโรฟอร์มและการประยุกต์ใช้ สูญญากาศ
มันกลายเป็นไอ ผนังของเดซิถูกเรียงรายไปด้วยเนื้อเยื่อเปียก
กระดาษที่จะรักษาบรรยากาศของดินชื้นในช่วงสูญญากาศทำซ้ำ
การประยุกต์ใช้ สูญญากาศถูกนำมาใช้เป็นเวลา 5 นาทีหลังจากที่
ดูดความชื้นที่มีตัวอย่างดินที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง สองชุดที่ไม่รมยาได้รับการรักษาเดียวกัน
วิธี แต่ไม่มีขั้นตอนการรมควัน หลังจาก 24 ชั่วโมงตัวอย่างถูก
สกัดด้วย 0.5 M K2SO4 เวลา 30 นาที โดยการเขย่าใน endto-
ปั่นปลาย จุลินทรีย์ C และ n เป็นที่คาดกันเป็นความแตกต่าง
ใน C และความเข้มข้นยังไม่มีข้อความระหว่างรมยาและ unfumigated
ตัวอย่างคูณด้วย Kec 0.4 และเคน 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6 รวม C ไนโตรเจนและฟอสฟอรัส
อินทรีย์คาร์บอนถูกกำหนดโดยวิธีการย่อยอาหารเปียก
(Walkley และดำ, 1934) รวมไนโตรเจนและฟอสฟอรัสในดินได้รับการประเมินโดย
การย่อย Micro-Kjeldahl ของดินและการวิเคราะห์ทางเคมีของ
สารสกัดในการวิเคราะห์อัตโนมัติ (Rayment และ Higginson, 1992) ทั้งหมด
ค่ามีการแสดงออกบนพื้นฐานเตาอบแห้งน้ำหนัก.
2.4 การวิเคราะห์ทางสถิติ
อิทธิพลของการจัดการเฉือนบนพื้นดิน C, N, P, ธาตุไนโตรเจน
และชีวมวลจุลินทรีย์ได้รับการทดสอบโดยการวิเคราะห์ทางเดียวของ
ความแปรปรวน (ANOVA) ในแต่ละช่วงเวลาการสุ่มตัวอย่างและเมื่อการรักษา
ผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญ, การทดสอบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยเป็น
ใช้ในการประเมินซึ่งวิธีการรักษาที่แตกต่างกันจากแต่ละ
อื่น ๆ (= 0.05) เพื่อเพิ่มพลังของการวิเคราะห์เพิ่มเติม, เว็บไซต์
ถูกรวมเป็นปัจจัยซ้ำด้วยซ้ำภายในเว็บไซต์เป็น
ผลกระทบซ้ำซ้อนกัน แพคเกจทางสถิติ Genstat (Lawes
การเกษตรไว้ใจ Rothamsted, สหราชอาณาจักร) ถูกใช้ในการ
ดำเนินการวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมด
การแปล กรุณารอสักครู่..
![](//thimg.ilovetranslation.com/pic/loading_3.gif?v=b9814dd30c1d7c59_8619)
2.3.2. Laboratory measurements of Mineral-N
NH4 -N and NO3 - -N forms. Mineral N in the initial and final soil samples
was extracted with 1 MKCl (1:5 ratio) by shaking for 1 h on an
end-to-end shaker. The soil KCl extracts were allowed stand for
30 min and filtered through pre-washed filter paper (Whatman
#42). During the extraction utmost care was taken to complete
the extraction within a short time period to avoid contamination
from the atmospheric NH4 -N. NH4 -N was determined by
salicylate-hypochlorite and NO3
-N content by reducing with copper-
cadmium column by using a segmented flow auto analyser
(Technicon-II, Technicon Corporation, Oakland, CA, USA). Mineral
N concentrations in the soil were corrected for initial moisture
content of soil samples and expressed on an oven-dry weight basis.
Net N mineralized during the incubation period was taken as the
difference in mineral N between the initial and final samples, and
expressed on an oven-dry soil weight basis (Mendham et al., 2004).
2.3.3. Leaching (aerobic) experiment
This experiment aimed to explore the long-term mineralization
ศักยภาพของดินและผลกระทบของการปลูกยูคาลิปตัส
ตกค้างในปฏิบัติการไลซิมิเตอร์ละลายการทดลองรักษา
400 วัน ที่ผลิตขึ้นโดยเอา
ด้านล่างจาก 120 ฝาเกลียวพลาสติกตัวอย่างภาชนะ
มิลลิลิตร ( ประมาณ 45 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ประมาณ 30 – 45 หลุม ( 1 / 160
เส้นผ่าศูนย์กลาง ) ถูกเจาะในฝาของภาชนะบรรจุที่
ฤๅษี , so that the lid acted as the base of the incubator. The
lid was fitted with pre-filter (Millipore pre-filter, catalogue No.
AP15 046 00) as the support pad for a polycarbonate membrane,
then another pre-filter was placed on top to prevent the clogging
of the pores in the membrane. An O-ring above the pre-filter sealed
the unit when the lid was screwed on firmly. Another pre-filter
(Millipore,แคตตาล็อกไม่ ap25 04200 ) ป้องกันตะกอนจากการอุดตัน
ตขึ้นก่อนกรองด้านล่าง ดิน ( 50 cm3 ) ถูกบรรจุเข้าไปในตู้
ที่ความหนาแน่นสนาม ในการรักษาด้วยเศษซากพืช วัสดุใบไม้
ถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ กระจายอย่างสม่ำเสมอบน
( เท่ากับ 4 มิลลิกรัม ฮา วัสดุ บริการ 1 บนพื้นที่ผิวพื้นฐาน ) .
อีกก่อนกรอง ( มิลลิ , ap25 042 00 ) ถูกวางไว้แล้วใน
ด้านบนของดิน / พืชตกค้าง เพื่อป้องกันการเข้าของน้ำชะละลาย
จากด้านบนแทนที่ดินจากพื้นผิว ขนาด 38 ยาง
บึงปิดด้านบนของตู้ฟักไข่ บึงยางติดตั้ง
กับแตะ ( แบ็กซ์เตอร์ pharmaseal สาม stopcock แมวไม่ k75 )
ที่ชะละลายและอัดอากาศรักษา .
อากาศอัดกระจายจากควบคุมความดัน ( ตั้งไว้ที่
25 kPa ) วาล์วในแต่ละห้องผ่านทางเครือข่ายของท่อ วาล์วนี้
ถูกปิดเมื่อแรงดันสำหรับการชะละลายและเปิดออกเมื่อ
ไม่ละลาย . การปิดผนึกตู้ฟักไข่ , บึงก็โดนกดใน
และบันทึกเทปลงเพื่อทนต่อแรงดันของน้ำและวงจร
อยู่ในสถานที่ในระหว่างรอบระยะเวลาการบ่ม การตั้งค่าการทดลอง
ทั้งหมดถูกติดตั้งบนขาตั้ง มีน้ำสะสมในขวด
ด้านล่างแต่ละตู้ฟักไข่ จำนวน 240 มิลลิลิตรของน้ำสารละลาย 0.01 M
ผลิต / 0.01 M KCl ช้าๆ ผ่านดิน
ตู้อบ โดยการเพิ่มการด้านบนของดินในตู้อบ ( หลายเฉยๆ ) และใช้ 25 kPa บวกแรงดันอากาศ
ห้อง น้ำชะมูลฝอยในภาชนะโดยสมบูรณ์ได้รับ
ใช้สูญญากาศ 4 – 5 กิโลปาสคาลสำหรับ 1 ใน 45 นาทีช่วงเวลา
ในช่วงฤดูกาลที่ 8 ชั่วโมงเพื่อให้แน่ใจว่าชุดการรั่วไหลของคอลัมน์ดิน
หลังจากที่สมบูรณ์ชะรอบปริมาณของน้ำชะมูลฝอย
วัดและย่อยตัวอย่างถ่ายการหา
-
NH4 และ No3 - ตัวอย่างซับน้ำ , วิเคราะห์ทันที
หรือแช่แข็งจนกว่าจะวิเคราะห์เสร็จสมบูรณ์ รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับ
ปฏิบัติการระดับจุลภาคของการทดลอง
ไลซิมิเตอร์ที่ให้ไว้ใน Mendham et al . , 2009 แร่ธาตุไนโตรเจนในน้ำ
ตั้งใจตามที่อธิบายไว้ข้างต้น .
2.3.4 . ไนโตรเจนอาจใช้ได้ ( anaerobic-n )
ส่วนของดินชุ่มชื้น ( ประมาณ 10 –ดินแห้ง 20 กรัม ) มีน้ำหนักในขวดพลาสติก
125 มล. และ 30 มล. ของน้ำเพิ่มและบ่ม
ในน้ำร้อนที่อุณหภูมิ 40 C เป็นเวลา 7 วัน หลังจากบ่ม
ครั้ง 30 ml of 2 M KCl was added to the soil samples, and they
were shaken end-over-end for 1 h. All the KCl extracts were
extracted and analyzed using a Technicon II auto analyzer.
2.3.5. Soil microbial biomass C
Soil microbial biomass C was estimated at 2 years after plantation
establishment through the chloroform fumigation-extraction
method (Brookes et al., 1985; Jenkinson and Powlson 1976). Four
เลียนแบบตัวอย่างดิน ( สนามสด เก็บสำหรับสารอินทรีย์ไนโตรเจน
ข้างบน ) ถูกรมยาด้วยเอทานอล ( ฟรีสำหรับ
15 นาที ในสั้น ย่อย 2 ตัวอย่างดินชุ่มชื้น ( 10 – 15 กรัม ประมาณ
ประมาณ 10 กรัมต่อน้ำหนักแห้ง ) มีน้ำหนักใน
ขวดแก้ว , ชุดหนึ่งถูกรมยาด้วย เอทานอลฟรีคลอโรฟอร์มใน : เดซิกเคเตอร์วอร์มคลอโรฟอร์มและใช้เครื่องดูดฝุ่น
กลายเป็นไอแล้วผนังของเดซิกเคเตอร์ถูกเรียงรายไปด้วยกระดาษ
เนื้อเยื่อเปียกเพื่อรักษาบรรยากาศดินชื้นระหว่างการดูด
ย้ำ เครื่องดูดฝุ่นใช้ 5 นาทีหลังจากที่
ยากง่ายกับดินที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
25 C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ครั้งที่สองไม่รมยาชุดปฏิบัติเหมือนกัน
, แต่ไม่มีรมขั้นตอน หลังจาก 24 ชั่วโมง ตัวอย่างที่สกัดด้วย
05 M K2SO4 for 30 min. by shaking on an endto-
end shaker. Microbial C and N was estimated as the difference
in C and N concentrations between the fumigated and unfumigated
samples, multiplied by a Kec of 0.4 and Ken of 0.45 (Sparling 1992).
2.3.6. Total C, N and P
Organic carbon was determined by the wet digestion method
(Walkley and Black, 1934). Total N and P in soil was assessed by
Micro-kjeldahl digestion of soil and chemical analysis of the
extracts on an auto analyser (Rayment and Higginson, 1992). All
the values were expressed on an oven-dry-weight basis.
2.4. Statistical analysis
The influence of slash management on soil C, N, P, N mineralization
and microbial biomass was tested by one-way analysis of
variance (ANOVA) at each sampling time, and when treatment
ผลอย่างมีนัยสำคัญ การทดสอบความแตกต่างน้อยที่สุดที่สําคัญ
ใช้ประเมินซึ่งหมายถึงการรักษาแตกต่างจากแต่ละอื่น ๆ (
= 0.05 ) เพื่อเพิ่มอำนาจในการวิเคราะห์เพิ่มเติม เว็บไซต์
ถูกรวมเป็นปัจจัยสร้างด้วยซ้ำภายในเว็บไซต์เป็น
ซ้อนกันสร้างผล การ genstat แพคเกจสถิติ ( ลอส
การเกษตรเชื่อถือ rothamsted , สหราชอาณาจักร
) ถูกใช้นำการวิเคราะห์สถิติทั้งหมด .
การแปล กรุณารอสักครู่..
![](//thimg.ilovetranslation.com/pic/loading_3.gif?v=b9814dd30c1d7c59_8619)