completed within 20 minutes, but al

completed within 20 minutes, but also facilitated accurate
quantitation of E. coli O157:H7 in spiked ground beef samples
with the detection limit being 1e400 cells. In addition, some
other bacterial species such as S. typhimurium and B. cereus
could be quantified, indicating the wide application of this
method for detecting both Gram-negative and Gram-positive
microorganisms [39]. Although both gold-standard platecounting
and fluorescent-nanoparticle methods provided
similar results, the latter was faster, compared with plate
counting, which required 16 hours. Furthermore, this method
facilitated high-throughput capability with detection even
down to single bacterial cell, and thus, its application could be
envisaged for ultrasensitive detection of disease markers and
infectious agents. In a similar study, the GNPs were conjugated
with p-conjugated polymer poly(para-phenylene
ethynylene) for positive identification of 12 different
bacterial strains within a few minutes [40]. Upon nanoparticleebacteria
interaction, the bound fluorescent polymer
was released from GNP quencher emitting fluorescence.
Moreover, the negatively charged bacterial cell membrane
could also displace the polymer from GNPs thereby further
enhancing the fluorescence emission. Three different nanoparticle
preparations were prepared by the authors and
distinct fluorescence could be observed for each bacterium
including Amycolatopsis azurea, Amycolatopsis orientalis, Bacillus
licheniformis, Bacillus subtilis, some E. coli strains (BL21DE3,
DH5a, and XL1-Blue), Lactobacillus lactis, Lactobacillus plantarum,
Pseudomonas putida, Streptomyces coelicolor, and Streptomyces
griseus [40]. For quantitation, a signature plot was
constructed for pattern recognition through linear discriminant
analysis. The major advantage of this method is its
affordability and robust bacterial identification capability
without the need for heat-labile antibody-conjugated probes.
However, its detection limit is high (1
109 CFU/mL). The
sensitivity of this method can be improved by further optimization
of conditions and employing some other polymer
conjugates [40]. More recently, Huang et al [41] prepared
amine-functionalized MNPs (AF-MNPs) for rapid and high efficiency
(88.5e99.1%) capture of both Gram-negative and
Gram-positive bacteria from water, food matrices, and urine.
A high-affinity adsorption toward eight bacteria including
Sarcina lutea, S. aureus, E. coli, B. cereus, B. subtilis, Salmonella, P.
vulgaris, and P. aeruginosa was shown to occur based on the
electrostatic interaction between positively charged AF-MNPs
and negatively charged sites of the bacterial surface. The
amount of AF-MNPs, pH of phosphate buffer, and ionic
strength were shown to be crucial in mediating fast and
effective interaction [41]. The advantages of this method are
short incubation time and high capture efficiency requiring no
further modification of biomolecules on AF-MNPs. However,
the major pitfall is less specificity/selectivity when compared
with some other methods using antibody conjugates.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เสร็จภายใน 20 นาที แต่ยัง ได้อำนวยความสะดวกถูกต้องการวิเคราะห์หาปริมาณของไล O157:H7 ในตัวอย่างเนื้อดินถูกแทงจำกัดการตรวจสอบที่ถูกเซลล์ 1e400 นอกจากนี้ บางสายพันธุ์แบคทีเรียอื่น ๆ เช่น S. typhimurium และ B. cereusไม่ได้วัด แสดงประยุกต์กว้างนี้วิธีการตรวจสอบทั้งแกรมลบ และแบคทีเรียแกรมบวกจุลินทรีย์ [39] แม้ว่าทั้งสองมาตรฐานทองคำ platecountingและวิธี nanoparticle สูงฟลูออเรสเซนต์ให้ผลคล้าย หลังได้เร็วขึ้น เมื่อเทียบกับแผ่นนับ ซึ่งต้องเวลา 16 ชั่วโมง นอกจากนี้ วิธีการนี้อำนวยความสะดวกความสามารถความเร็วสูง ด้วยการตรวจจับได้ลงไปเซลล์เพียงเซลล์เดียวแบคทีเรีย จึง การประยุกต์อาจจะน้า ultrasensitive ตรวจจับเครื่องหมายโรค และเชื้อ ในการศึกษาคล้ายกัน GNPs ได้รวมกันด้วยโพลิเมอร์ p รวมกัน poly(para-phenyleneethynylene) สำหรับรหัสบวก 12 แตกต่างกันสายพันธุ์แบคทีเรียกี่นาที [40] เมื่อ nanoparticleebacteriaการโต้ตอบ พอลิเมอร์ที่เรืองแสงถูกผูกไว้ถูกนำออกใช้จาก quencher GNP เปล่งเรืองแสงนอกจากนี้ แบคทีเรียประจุเซลล์เมมเบรนอาจยังตาร์ทเมอร์จาก GNPs จึงเพิ่มเติมเพิ่มปล่อยสารเรืองแสง Nanoparticle สูงแตกต่างกันสามมีเตรียมการเตรียมการ โดยผู้เขียน และสารเรืองแสงที่แตกต่างที่สามารถสังเกตสำหรับแบคทีเรียแต่ละรวม Amycolatopsis อาซูเรียนีซ Amycolatopsis orientalis แบคทีเรียlicheniformis, subtilis บาซิลลัส โคไลบางสายพันธุ์ (BL21DE3DH5a และน้ำเงิน XL1), แลคโตบาซิลลัส lactis แลคโตบาซิลลัสPseudomonas putida, Streptomyces coelicolor และ Streptomycesgriseus [40] สำหรับการวิเคราะห์หาปริมาณ พล็อตลายเซ็นได้สร้างขึ้นสำหรับการรู้จำแบบผ่านเส้น discriminantการวิเคราะห์ ประโยชน์หลักของวิธีนี้คือการความพยายามและความสามารถระบุเชื้อแบคทีเรียที่มีประสิทธิภาพโดยไม่ต้องการความร้อน labile แอนติบอดีรวมกันหัวอย่างไรก็ตาม ขีดจำกัดของการตรวจจับสูง (1 109 โยง mL) การความไวของวิธีการนี้สามารถพัฒนาได้ โดยปรับให้เหมาะสมต่อไปเงื่อนไขและการใช้พอลิเมอร์บางconjugates [40] เมื่อเร็ว ๆ นี้ Huang et al [41] เตรียมปรับหมู่ฟังก์ชั่นมีน MNPs (AF MNPs) สำหรับอย่างรวดเร็ว และมี ประสิทธิภาพสูง(88.5e99.1%) จับทั้งแกรมลบ และแบคทีเรีย จากน้ำ อาหารเมทริกซ์ ปัสสาวะการดูดซับความสัมพันธ์สูงต่อแปดแบคทีเรียรวมทั้งSarcina เหลื่อม หมอเทศข้างลาย S., E. coli, B. cereus, B. subtilis, Salmonella, P.ผด P. aeruginosa ได้แสดงและเกิดขึ้นตามโต้ตอบไฟฟ้าสถิตระหว่างมีประจุบวก AF-MNPsและประจุลบไซต์ผิวแบคทีเรีย การจำนวนของ AF-MNPs วัดค่า pH ของ บัฟเฟอร์ฟอสเฟต และไอออนมีแสดงความแข็งแรงที่เป็นสิ่งสำคัญในการเป็นสื่อกลางอย่างรวดเร็ว และผลโต้ตอบ [41] ข้อดีของวิธีนี้เวลาบ่มสั้นและประสิทธิภาพสูงจับต้องไม่การเปลี่ยนแปลงของชื่อโมเลกุลชีวภาพใน AF MNPs อย่างไรก็ตามข้อสำคัญมีน้อยความ/วิธีเมื่อเทียบด้วยวิธีอื่นๆ โดยใช้แอนติบอดี conjugates

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ให้แล้วเสร็จภายใน 20 นาที แต่ยังอำนวยความสะดวกที่ถูกต้อง
ปริมาณเชื้อ E. coli O157: H7 ในตัวอย่างเนื้อดินถูกแทง
ด้วยขีด จำกัด ของการตรวจสอบการเป็นเซลล์ 1e400 นอกจากนี้ยังมี
แบคทีเรียชนิดอื่น ๆ เช่นเอส typhimurium และ B. cereus
อาจจะวัดแสดงให้เห็นการประยุกต์กว้างนี้
วิธีการสำหรับการตรวจสอบทั้งแกรมลบและแกรมบวก
จุลินทรีย์ [39] แม้ว่าทั้งสอง platecounting ทองมาตรฐาน
และเรืองแสง-อนุภาคนาโนวิธีการจัดให้มี
ผลที่คล้ายกันหลังได้เร็วเมื่อเทียบกับแผ่น
นับซึ่งจำเป็นต้องใช้เวลา 16 ชั่วโมง นอกจากนี้วิธีการนี้
การอำนวยความสะดวกความสามารถสูง throughput มีการตรวจสอบแม้กระทั่ง
ลงไปที่เซลล์ของแบคทีเรียเดียวและทำให้การประยุกต์ใช้อาจจะ
วาดภาพสำหรับการตรวจสอบ ultrasensitive ของตัวบ่งชี้โรคและการ
ติดเชื้อ ในการศึกษาที่คล้ายกัน GNPs ถูกผัน
กับ P-ผันโพลิเมอร์โพลี (Para-phenylene
ethynylene) สำหรับประชาชนในเชิงบวกของแตกต่างกัน 12
สายพันธุ์แบคทีเรียภายในไม่กี่นาที [40] เมื่อ nanoparticleebacteria
ปฏิสัมพันธ์ลิเมอร์เรืองแสงที่ถูกผูกไว้
ถูกปล่อยออกมาจากผลิตภัณฑ์มวลรวมประชาชาติดับเปล่งแสงเรืองแสง.
นอกจากนี้ยังมีเยื่อหุ้มเซลล์แบคทีเรียที่มีประจุลบ
ยังสามารถแทนที่ลิเมอร์จาก GNPs จึงต่อ
การเสริมสร้างการปล่อยก๊าซเรืองแสง สามอนุภาคนาโนที่แตกต่างกัน
การเตรียมการจัดทําโดยผู้เขียนและ
การเรืองแสงที่แตกต่างกันอาจจะมีการตั้งข้อสังเกตสำหรับแต่ละแบคทีเรีย
รวมทั้ง Amycolatopsis Azurea, Amycolatopsis orientalis, Bacillus
licheniformis, Bacillus subtilis บางสายพันธุ์เชื้อ E. coli (BL21DE3,
DH5a และ XL1 Blue), แลคโตบาซิลลัส lactis, Lactobacillus plantarum,
Pseudomonas putida, Streptomyces coelicolor และ Streptomyces
griseus [40] หาปริมาณ, พล็อตลายเซ็นถูก
สร้างขึ้นสำหรับการรับรู้รูปแบบการจำแนกเชิงเส้นผ่าน
การวิเคราะห์ ได้เปรียบที่สำคัญของวิธีนี้คือมัน
สามารถในการจ่ายและความสามารถในการระบุตัวตนที่แข็งแกร่งแบคทีเรีย
โดยไม่จำเป็นต้อง probes แอนติบอดีผันความร้อน labile ได้.
อย่างไรก็ตามการตรวจสอบวงเงินที่สูง (1? 109 CFU / มิลลิลิตร)
ความไวของวิธีการนี้สามารถปรับปรุงโดยการเพิ่มประสิทธิภาพต่อไป
ของเงื่อนไขและการจ้างบางพอลิเมออื่น ๆ
คอนจูเกต [40] เมื่อเร็ว ๆ นี้ Huang et al, [41] เตรียม
amine-ฟังก์ชัน MNPs (AF-MNPs) ให้มีประสิทธิภาพรวดเร็วและสูง
(88.5e99.1%) จับภาพของทั้งสองแกรมลบและ
แบคทีเรียแกรมบวกจากน้ำ, การฝึกอบรมอาหารและปัสสาวะ .
ดูดซับสูงความสัมพันธ์ที่มีต่อแบคทีเรียรวมทั้งแปด
lutea แพคเกจ, เชื้อ S. aureus, E. coli, B. cereus, B. subtilis, Salmonella, P.
vulgaris และ P. aeruginosa ก็แสดงให้เห็นว่าจะเกิดขึ้นบนพื้นฐานของ
การมีปฏิสัมพันธ์ระหว่างไฟฟ้าสถิตในเชิงบวก ค่าบริการ AF-MNPs
และประจุลบเว็บไซต์ของพื้นผิวของแบคทีเรีย
ปริมาณของ AF-MNPs ค่า pH ของฟอสเฟตบัฟเฟอร์และอิออน
มีความแข็งแรงมีการแสดงที่มีความสำคัญในการเป็นสื่อกลางได้อย่างรวดเร็วและ
มีประสิทธิภาพในการทำงานร่วมกัน [41] ข้อดีของวิธีนี้เป็น
เวลาฟักตัวสั้นและมีประสิทธิภาพสูงจับต้องไม่มี
การปรับเปลี่ยนต่อไปของสารชีวโมเลกุลใน AF-MNPs อย่างไรก็ตาม
หลุมพรางที่สำคัญคือความจำเพาะน้อย / หัวกะทิเมื่อเปรียบเทียบ
กับวิธีการอื่น ๆ โดยใช้คอนจูเกตแอนติบอดี