Quantitative analysis of biofilm was performed by adding 200 μL of 33% (v/v) glacial acetic acid (Merck, Darmstadt, Germany) per well for thick biofilms. The optical density (OD) of 135 μL of each well was measured using an ELISA reader (Molecular Devices, Spectra Max Plus 384) at 492 nm. Each strain and/or each condition was tested in (at least) three independent experiments, and each used eight biological replicates. Based on using OD of the biofilms and the corresponding blanks (ODc), strains were classified as per the criteria described by Stepanovic, Vulcovic, Dakic, and Savic (2000).
In order to differentiate between the behavior of single bacterial cells (L. plantarum 33 and E. coli) and of cells resulting from biofilm on adhesion ability, bacterial cells from both treatments were submitted to the adhesion assay in a Caco-2 cell line as described previously. To monitor the biofilm composition (in terms of viable counts of LAB and E. coli), cells were collected from each well, plated on MRS agar for Lactobacillus strains, and VRBD for E. coli, and incubated at 37 °C for 24–48 h to enumerate bacterial counts per mL.
Quantitative analysis of biofilm was performed by adding 200 μL of 33% (v/v) glacial acetic acid (Merck, Darmstadt, Germany) per well for thick biofilms. The optical density (OD) of 135 μL of each well was measured using an ELISA reader (Molecular Devices, Spectra Max Plus 384) at 492 nm. Each strain and/or each condition was tested in (at least) three independent experiments, and each used eight biological replicates. Based on using OD of the biofilms and the corresponding blanks (ODc), strains were classified as per the criteria described by Stepanovic, Vulcovic, Dakic, and Savic (2000).In order to differentiate between the behavior of single bacterial cells (L. plantarum 33 and E. coli) and of cells resulting from biofilm on adhesion ability, bacterial cells from both treatments were submitted to the adhesion assay in a Caco-2 cell line as described previously. To monitor the biofilm composition (in terms of viable counts of LAB and E. coli), cells were collected from each well, plated on MRS agar for Lactobacillus strains, and VRBD for E. coli, and incubated at 37 °C for 24–48 h to enumerate bacterial counts per mL.
การแปล กรุณารอสักครู่..
การวิเคราะห์เชิงปริมาณของฟิล์มทำโดยการเพิ่ม 200 μ L 33 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) กรดแอซีติก ( เมอร์คดาร์มสตัดท์ , เยอรมนี ) ต่อด้วยไบโอฟิล์มหนา ความหนาแน่นของแสง ( OD ) 135 μ L ของแต่ละคือการวัดอ่าน ELISA ( อุปกรณ์ระดับโมเลกุลนี้แม็กซ์พลัส 384 ) ที่ 492 นาโนเมตร แต่ละสายพันธุ์ และ / หรือ แต่ละสภาวะการทดสอบ ( อย่างน้อย ) สามการทดลองที่เป็นอิสระและแต่ละใช้แปดแบบชีวภาพ ใช้ OD ของไบโอฟิล์ม และช่องว่างที่สอดคล้องกัน ( ODC ) สายพันธุ์จำแนกตามเกณฑ์ที่ระบุไว้ โดย stepanovic vulcovic dakic , , , และซาวิค ( 2000 ) .
เพื่อแยกความแตกต่างระหว่างพฤติกรรมของแบคทีเรียเซลล์เดียว ( L . plantarum 33 และ E . coli ) และเซลล์ที่เกิดจากฟิล์มใน ความสามารถในการยึดเกาะ ,เซลล์แบคทีเรียทั้งจากการรักษาที่ถูกส่งไปยังเกาะ assay ในเซลล์ caco-2 ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ตรวจสอบฟิล์มองค์ประกอบ ( ในแง่ของรัฐนับจากห้องทดลองและ E . coli ) , เซลล์ที่เก็บจากแต่ละอย่างดีชุบบนอาหารวุ้นคุณนายสำหรับสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัส และ vrbd ใน E . coli , บ่มที่ 37 ° C เป็นเวลา 24 และ 48 ชั่วโมง เพื่อนับจำนวนจุลินทรีย์ต่อมิลลิลิตร
การแปล กรุณารอสักครู่..