The antifungal tests of essential o

The antifungal tests of essential oils were carried out for assessing its contact and volatile phase effects towards mycelial growth of B. cinerea as described previously (Soylu et al., 2006). For determi- nation of contact effects, the essential oils were dispersed as an emulsion in water using ethanol and Tween 20 (0.1% v/v) and added to PDA immediately before it was emptied into the glass Petri dishes (90 × 20 mm in diameter) at a temperature of 40–45 °C. The concentrations tested were 0.4 to 25.6 μg/ml. The controls received the same quantity of ethanol and Tween 20 mixed with PDA. B. cinerea was inoculated immediately by plating in the centre of each plate with a 7 mm diameter disc of the fungus, cut with a sterile cork borer from the edge of actively growing cultures on PDA plates. The Petri dishes were incubated in the dark at 22 °C. For determination of volatile phase effects, glass Petri dishes (90 × 20 mm, which offer 80 ml air spaces after addition of 20 ml agar media) were used. The Petri dishes inoculated as described above at different concentrations of essential oils were added to sterile filter papers (10 mm diameter, Whatman no.1) and placed on the inner surface of the lid of Petri dishes to obtain final concentrations of 0.05 to 1.6 μm/ml air. The Petri dishes were sealed immediately with parafilm to prevent loss of essential oil vapours and incubated at 22 °C. The mean radial mycelial growth of the pathogen was determined by measuring the diameter of the colony in two directions at right angels when the plate surface of the control Petri was covered by fungus 7 days after inoculation. The fungistatic–fungicidal nature of essential oils was tested by observing revival of growth of the inhibited mycelial disc following its transfer to non-treated PDA. A fungicidal effect was where there was no growth, whereas a fungistatic effect was where temporary inhibition of microbial growth occurred. The agar discs of B. cinerea, which failed to grow were either transferred onto agar media without oils (for contact phase effect of oils) or onto lids of the plate containing ethanol and Tween 20 (0.1% v/v) without oil (for volatile phase effect of oils). Petri plates were incubated for 5days. Activity of the each concentration of the various oils was considered fungicidal if the pathogen did not grow or fungistatic if the pathogen growth occurred.
For each concentration, five replicate plates were used. The mean growth values were obtained and then converted in to the inhibition percentage of mycelial growth in relation to the control treatment by using the formula, MGI(%) = ((dc − dt) / dc) × 100, dc and dt represent mycelial growth diameter in control and treated Petri plates, respectively. The experiments were conducted twice.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ทดสอบต้านเชื้อราของน้ำมันได้ดำเนินการประเมินของผู้ติดต่อและระยะระเหยผลกระทบต่อการเจริญเติบโต mycelial cinerea เกิดอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Soylu และ al., 2006) สำหรับ determi-ประเทศติดต่อผล น้ำมันหอมระเหยได้กระจายเป็นเป็นอิมัลชันในน้ำโดยใช้เอทานอลและ Tween 20 (0.1% v/v) และเพิ่ม PDA ทันทีก่อนจะถูกอบในอาหาร Petri แก้ว (90 × 20 มม.เส้นผ่านศูนย์กลาง) ที่อุณหภูมิ 40 – 45 องศาเซลเซียส 0.4-25.6 μg/ml ความเข้มข้นที่ทดสอบได้ ควบคุมการรับปริมาณเดียวกับของเอทานอล และ Tween 20 ผสมกับ PDA มี inoculated cinerea เกิดทันที โดยชุบในแต่ละจานด้วยดิสก์ 7 มม.เส้นผ่าศูนย์กลางของเชื้อรา ตัดกับ borer คอร์กกอซจากขอบของวัฒนธรรมบนแผ่น PDA ที่เติบโตอย่างแข็งขัน จาน Petri ถูก incubated ในมืดที่ 22 องศาเซลเซียส สำหรับการกำหนดลักษณะระยะระเหย แก้วจาน Petri (90 × 20 มม. ซึ่งมีช่องว่างอากาศ ml 80 หลังจากเพิ่มปริมาณ 20 ml agar media) ที่ใช้ จาน Petri inoculated ที่อธิบายข้างต้นที่ความเข้มข้นแตกต่างกันของน้ำมันหอมระเหยถูกเพิ่มเพื่อใส่กระดาษกรอง (เส้นผ่าศูนย์กลาง 10 มม. Whatman no.1) และวางอยู่บนพื้นผิวด้านในของฝา Petri อาหารเพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้ายของอากาศ 0.05-1.6 μm/ml จาน Petri ปิดผนึกทันที ด้วยเพื่อป้องกันการสูญเสียน้ำมัน vapours parafilm และ incubated ที่ 22 องศาเซลเซียส หมายถึงรัศมี mycelial เจริญเติบโตของการศึกษาถูกกำหนด โดยการวัดเส้นผ่าศูนย์กลางของโคโลนีในสองทิศทางที่ถูกเทวดาเมื่อผิวจานควบคุม Petri ถูกปกคลุม โดยเชื้อรา 7 วันหลังจาก inoculation ธรรมชาติ fungistatic – fungicidal ระเหยถูกพิสูจน์ โดยการสังเกตของการเจริญเติบโตของดิสก์ mycelial inhibited ต่อโอนของ PDA ไม่ถือว่า การ fungicidal คือ ที่ใดมีไม่เจริญเติบโต ในขณะที่มีผล fungistatic ที่เกิดขึ้นชั่วคราวยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ ดิสก์ agar ของ cinerea เกิด ซึ่งไม่สามารถเติบโตได้อย่างใดอย่างหนึ่งแล้ว ลงสื่อ agar โดยน้ำมัน (สำหรับผลในระยะติดต่อของน้ำมัน) หรือ บนฝาจานที่ประกอบด้วยเอทานอลและ Tween 20 (0.1% v/v) โดยไม่มีน้ำมัน (สำหรับผลในระยะระเหยของน้ำมัน) จาน Petri ถูก incubated สำหรับ 5days กิจกรรมของแต่ละความข้นของน้ำมันต่าง ๆ ถูกพิจารณา fungicidal ถ้าการศึกษาไม่ได้เติบโต หรือเกิดการเจริญเติบโตการศึกษา fungistaticสำหรับแต่ละความเข้มข้น มีใช้แผ่น 5 replicate ค่าเฉลี่ยการเจริญเติบโตได้ และจากนั้น แปลงเป็นในเปอร์เซ็นต์ยับยั้งการเจริญเติบโต mycelial เกี่ยวกับการรักษาควบคุม โดยใช้สูตร MGI(%) = ((dc − dt) / dc) × 100, dc และ dt หมายถึงเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญเติบโตของ mycelial ในการควบคุมและบำบัด Petri แผ่น ตามลำดับ ได้ดำเนินการทดลองสอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การทดสอบเชื้อราของน้ำมันหอมระเหยได้ดำเนินการในการประเมินการติดต่อของขั้นตอนและผลกระทบที่มีความผันผวนต่อการเจริญเติบโตของเส้นใยของบีซีเนเรียตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Soylu et al., 2006) สำหรับประเทศ determi- ของผลกระทบที่ติดต่อน้ำมันหอมระเหยก็แยกย้ายกันเป็นอิมัลชันในน้ำโดยใช้เอทานอลและ Tween 20 (0.1% v / v) และเพิ่มไปยัง PDA ทันทีก่อนที่จะถูกเทลงในแก้วอาหารเลี้ยงเชื้อ (90 × 20 มม เส้นผ่าศูนย์กลาง) ที่อุณหภูมิ 40-45 องศาเซลเซียส ความเข้มข้นของการทดสอบเป็น 0.4-25.6 ไมโครกรัม / มิลลิลิตร ได้รับการควบคุมปริมาณเดียวกันของเอทานอลและ Tween 20 ผสมกับพีดีเอ บีซีเนเรียได้รับการฉีดวัคซีนทันทีโดยชุบในใจกลางของแต่ละจานดิสก์ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 7 มมของเชื้อราที่ตัดกับหนอนเจาะก๊อกผ่านการฆ่าเชื้อจากขอบของวัฒนธรรมที่เติบโตอย่างแข็งขันบนจานพีดีเอ อาหารเลี้ยงเชื้อถูกบ่มในที่มืดที่ 22 ° C สำหรับความมุ่งมั่นของผลกระทบระยะระเหยจานเลี้ยงเชื้อแก้ว (90 × 20 มิลลิเมตรซึ่งมี 80 มล. ช่องว่างอากาศหลังจากที่นอกเหนือจาก 20 มล. วุ้นสื่อ) ถูกนำมาใช้ อาหารเลี้ยงเชื้อเชื้อที่อธิบายข้างต้นที่ความเข้มข้นที่แตกต่างกันของน้ำมันหอมระเหยที่ถูกเพิ่มเข้าเอกสารกรองผ่านการฆ่าเชื้อ (เส้นผ่าศูนย์กลาง 10 มม 1 เบอร์) และวางไว้บนพื้นผิวด้านในของฝาของจานเลี้ยงเชื้อเพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้ายของ 0.05-1.6 ไมครอน / ml อากาศ อาหารเลี้ยงเชื้อถูกปิดผนึกทันทีด้วย parafilm เพื่อป้องกันการสูญหายของไอระเหยน้ำมันหอมระเหยและบ่มที่ 22 องศาเซลเซียส หมายถึงการเจริญเติบโตของเส้นใยรัศมีของเชื้อโรคที่ถูกกำหนดโดยการวัดขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางของอาณานิคมในสองทิศทางที่เทวดาที่เหมาะสมเมื่อพื้นผิวแผ่นของการควบคุมการเลี้ยงเชื้อที่ถูกปกคลุมด้วยเชื้อรา 7 วันหลังจากการฉีดวัคซีน ธรรมชาติ fungistatic-เชื้อราของน้ำมันหอมระเหยได้รับการทดสอบโดยการสังเกตการฟื้นตัวของการเจริญเติบโตของแผ่นเส้นใยยับยั้งต่อไปนี้การถ่ายโอนไปยังไม่ได้รับการรักษา PDA ผลเป็นเชื้อราที่มีการเจริญเติบโตในขณะที่ผลกระทบ fungistatic เป็นที่ยับยั้งชั่วคราวที่เกิดขึ้นเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ แผ่นวุ้นของซีเนเรียบีซึ่งล้มเหลวที่จะเติบโตถูกย้ายอย่างใดอย่างหนึ่งลงบนสื่อวุ้นโดยไม่ต้องน้ำมัน (สำหรับผลการขั้นตอนการติดต่อของน้ำมัน) หรือบนฝาของแผ่นที่มีเอทานอลและ Tween 20 (0.1% v / v) ไม่มีน้ำมัน (สำหรับ ผลกระทบขั้นตอนการระเหยของน้ำมัน) จาน Petri ถูกบ่มเป็นเวลา 5 วัน กิจกรรมของความเข้มข้นของแต่ละน้ำมันต่าง ๆ ได้รับการพิจารณาถ้าเชื้อราเชื้อโรคไม่เติบโตหรือ fungistatic ถ้าการเจริญเติบโตของเชื้อโรคที่เกิดขึ้น.
สำหรับความเข้มข้นของแต่ละห้าแผ่นถูกนำมาใช้ซ้ำ ค่าเฉลี่ยการเติบโตที่ได้รับแล้วแปลงในอัตราร้อยละการยับยั้งการเจริญเติบโตของเส้นใยที่เกี่ยวข้องกับการควบคุมการรักษาโดยใช้สูตร MGI (%) = ((dc - dt) / DC) × 100, dc และ dt เป็นตัวแทนของเส้นใย เส้นผ่าศูนย์กลางการเจริญเติบโตในการควบคุมและรับการรักษาแผ่น Petri ตามลำดับ การทดลองได้ดำเนินการเป็นครั้งที่สอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การทดสอบฤทธิ์ของน้ำมันหอมระเหย ได้ดำเนินการประเมินการติดต่อและผลกระทบระยะระเหยต่อเจริญของ B . cinerea ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( soylu et al . , 2006 ) สำหรับพยา - ชาติติดต่อผล , น้ำมันหอมระเหยถูกกระจายเป็นอิมัลชันในน้ำโดยใช้เอทานอลและ Tween 20 ( 01 % v / v ) และเพิ่มไปยัง PDA ทันทีก่อนที่มันจะไม่มีอะไรในแก้วจานเลี้ยงเชื้อ ( 90 × 20 มม. ) ที่อุณหภูมิ 40 – 45 ° C มีความเข้มข้น 0.4 เพื่อทดสอบμ 2.4 g / ml และการควบคุมที่ได้รับปริมาณเดียวกันของเอทานอลและ Tween 20 ผสมกับ PDA บีขาวเป็นเชื้อทันที โดยชุบในศูนย์กลางของแต่ละจานมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 7 มม. แผ่นดิสก์ของเห็ดราตัดกับฆ่าเชื้อก๊อกเจาะจากขอบของวัฒนธรรมอย่างเติบโตบนอาหาร PDA แผ่น ในจานเพาะเลี้ยงเชื้อได้ในที่มืด อุณหภูมิ 22 องศา สำหรับการหาผลระยะที่ระเหย , จาน Petri แก้ว ( 90 × 20 มิลลิเมตร ซึ่งมีช่องว่างอากาศหลัง 80 ml เพิ่ม 20 ml อาหารวุ้น ) สถิติที่ใช้ในจานเพาะเลี้ยงเชื้อตามที่อธิบายไว้ข้างต้น ที่ระดับความเข้มข้นของน้ำมันหอมระเหยมีการเพิ่มตัวกรองเอกสารเป็นหมัน ( เส้นผ่าศูนย์กลาง 10 มม. whatman No.1 ) และวางไว้บนพื้นผิวด้านในของฝาของจานเพาะเลี้ยงเพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้าย 0.05 ถึง 1.6 μ M ปริมาตรอากาศ ในจานเพาะเลี้ยงถูกปิดสนิททันทีกับพาราฟิล์มเพื่อป้องกันการสูญหายของไอระเหยน้ำมัน และบ่มที่อุณหภูมิ 22 องศาหมายถึงรัศมีของการเจริญเติบโตของเชื้อโรคถูกกำหนดโดยการวัดเส้นผ่านศูนย์กลางของอาณานิคมใน 2 เส้นทางที่เทวดาถูกเมื่อจาน Petri ควบคุมพื้นผิวของถูกปกคลุมด้วยเห็ดรา 7 วันหลังจากปลูกเชื้อ การ fungistatic – fungicidal ธรรมชาติของน้ำมันหอมระเหยคือการทดสอบโดยการฟื้นฟูสังเกตการเจริญเติบโตของการเจริญของการรักษาแผ่นดิสก์ต่อไปนี้บน PDAผล fungicidal คือ ที่ไม่มีการเติบโต ขณะที่ผล fungistatic ที่การยับยั้งชั่วคราวการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ที่เกิดขึ้น การใช้แผ่น B . cinerea ซึ่งไม่สามารถเติบโตได้ถูกย้ายไปยังอาหารวุ้นไม่มีน้ำมัน ( สำหรับติดต่อ ) ผลของน้ำมัน ) หรือบนฝาของจานที่มีเอทานอลและ Tween 20 ( 0.1 % v / v ) ไม่มีน้ำมัน ( ผลระยะระเหยของน้ำมัน )จาน Petri ถูกบ่มเป็นเวลา 5 วัน . กิจกรรมของแต่ละความเข้มข้นของน้ำมันต่าง ๆถือว่า fungicidal ถ้าเชื้อโรคไม่เจริญเติบโตหรือ fungistatic ถ้าเชื้อโรคเจริญเติบโตขึ้น .
สำหรับแต่ละของห้าจำลองแผ่นใช้การเจริญเติบโตเฉลี่ยที่ได้รับและแปลงแล้วในการร้อยละของเจริญในความสัมพันธ์กับการรักษา ควบคุมโดยการใช้สูตร mgi ( % ) = ( ( DC − DT ) / DC ) × 100 DC และ DT แสดงเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญในการควบคุมและรักษาจาน Petri ) ทำการทดลอง 2 ครั้ง