3.4. RicinOwing to its illegal use,

3.4. Ricin
Owing to its illegal use, ricin (Ricinus communis), a highly toxic
lectin, is now considered a bioterrorism threat. The mechanism
of toxicity arises from binding of its two carbohydrate
active sites to b-D-galactopyranose or b-D-N-acetylgalactosamine
residues on the surface of the host cell [6,49]. Based on
this toxicity mechanism, Uzawa et al [49] developed a facile
and sensitive colorimetric assay for ricin using GNPs functionalized
with a thiolated b-lactosylceramide ligand. Upon
addition of ricin (RCA60) or its surrogate agglutinin RCA120 to
glycol nanoparticles, a visual change of color from red to
purple occurred and this color change was not observed in the
presence of several other plant lectins including those from
jack bean, soybean, peanut, clary sage, osage orange, and
Amur maackia trees, as well as in the presence of
noncarbohydrate-binding proteins [bovine serum albumin
(BSA) and g-globulin]. This bioassay could detect ricin at
concentrations less than 3.3 mg/mL in 10minutes or 1.7 mg/mL
in 30 minutes. In another study, Taylor et al [50] combined the
sensitivity of SPR and facile construction of microfluidic devices
from polydimethylsiloxane by tethering gangliosidemonosialic
acid 1 receptor-containing lipid vesicles on gold
nanoglassified surface through anchoring the vesicle's biotin
moieties to the surface-interacting streptavidin molecules.
Although the detection limit (0.83e5.83nM) obtained by this
method was not as sensitive as the other methods, further
improvements in both device designing and signal amplification
could significantly enhance its sensitivity and multiplexing
capability.
3.5. Brevetoxins
Brevetoxins (BTXs) are cyclic polyether ladder neurotoxins
produced by the dinoflagellate Karenia brevis (marine microorganism),
which can bind to voltage-sensitive sodium
channels in cell membranes, leading to neurotoxic shellfish
poisoning characterized by paresthesia, reversal of hotecold
temperature sensation, muscle pain, vertigo, loss of coordination,
abdominal pain, nausea, diarrhea, headache, slow
heart rate, dilated pupils, and respiratory irritation [9]. For
rapid screening of BTX-B in food samples, Tang et al [51]
developed a sensitive electrochemical immunosensor by
immobilizing BTX-BeBSA conjugate on GNPs-decorated
amine-terminated polyamidoamine dendrimers
(GNPePAADs). On the basis of the competitive-type immunoassay
format with the HRP-labeled anti-BTX antibodies as
sensor label, a low detection limit of 0.01 ng/mL was obtained
with a wide working linear range of 0.03e8 ng/mL BTX-B. The
incorporation of GNPs and three-dimensional PAADs could
substantially enhance the conductivity of PAADs and surface
coverage of biomolecules on the electrode, respectively [51].
3.6. Multiplex detection of bacterial and food toxins
In an attempt to simultaneously detect multiple toxins, multiplexed
fluoroimmunoassays were developed by conjugating
highly luminescent semiconductor nanocrystals (CdSeeZnS
core-shell QDs) and antibodies for analyzing CT, ricin, Shigalike
toxin, and SE B [52]. This sandwich immunoassay could
quantify all the four toxins in a single sample by a highthroughput
format. Although this method overcomes the
multiple isolation and incubation steps as required in any
typical immunoassay, the cross-reactivity was shown to be
problematic. However, it was suggested that through the
careful optimization of assay conditions and selection of the
antibody reagent, the problem associated with crossreactivity
could be solved for attaining reliability and robustness.
In a previous study, Branen et al [53] developed an
enzyme bionanotransduction assay for simultaneous detection
of E. coli O157:H7, S. enterica serovar typhimurium, and SE B
in both buffer and milk with the limit of detection obtained
being 2.4
103 CFU/mL, 1.9
104 CFU/mL, and 0.11 ng/mL,
respectively. This fluorescence-based assay could quantify all
the three toxins through adsorption onto antibodyeMNPs
conjugate and amplification of DNA templates bound onto the
antibody.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3.4. ไรซินเนื่องจากการใช้กฎหมาย ไรซิน (Ricinus communis) พิษสูงศึกษา ตอนนี้ถือว่าเป็นภัยคุกคาม bioterrorism กลไกการของความเป็นพิษที่เกิดจากการรวมของคาร์โบไฮเดรตสองใช้งานเว็บไซต์ galactopyranose/D/b หรือ b-D-N-acetylgalactosamineตกค้างบนผิวของเซลล์โฮสต์ [6,49] อิงกลไกนี้เป็นพิษ Uzawa et al [49] พัฒนาเป็นร่มและการทดสอบความไวต่อสีสำหรับไรซินใช้ GNPs ปรับหมู่ฟังก์ชั่นมีลิแกนด์เป็น thiolated b lactosylceramide เมื่อของไรซิน (RCA60) หรือของ agglutinin ตัวแทน RCA120 การเก็บกักไกลคอล เปลี่ยนสีจากสีแดงไปสีม่วงเกิดขึ้น และเปลี่ยนสีนี้ไม่ได้ถูกตรวจสอบในการของ lectins พืชหลายอื่น ๆ รวมทั้งจากแจ็คถั่ว ถั่วเหลือง ถั่วลิสง clary sage, osage ส้ม และอา maackia ต้นไม้ เช่นในการปรากฏตัวของโปรตีนรวม noncarbohydrate [วัว serum albumin(บีเอสเอ) และ กล g] Bioassay นี้สามารถตรวจพบไรซินที่ความเข้มข้นน้อยกว่า 3.3 mg/mL ใน 10 นาทีหรือ 1.7 mg/mLใน 30 นาที ศึกษาอื่น Taylor et al [50] รวมการความไวของคอฟฟี่ช็อปและก่อสร้างร่มอุปกรณ์ microfluidicจาก polydimethylsiloxane โดย tethering gangliosidemonosialicกรด 1-รีเซพเตอร์ประกอบด้วยไขมันอสุจิทองคำnanoglassified ผิวผ่านบริเวณของเวสิเคิลโบโอตินmoieties การโต้ตอบพื้นผิวโมเลกุล streptavidinถึงแม้ว่าขีดจำกัดการตรวจสอบ (0.83e5.83nM) ได้ตามนี้วิธีที่ไม่เป็นที่สำคัญเป็นวิธีอื่น ๆ เพิ่มเติมปรับปรุงการออกแบบอุปกรณ์และการขยายสัญญาณสามารถเพิ่มความไวเป็นอย่างมาก และการมัลติเพล็กซ์ความสามารถในการ3.5. BrevetoxinsBrevetoxins (BTXs) ได้วงจร polyether บันได neurotoxinsผลิต โดย dinoflagellate Karenia เอกซ์เทนเซอร์ (จุลินทรีย์ทางทะเล),ซึ่งสามารถผูกกับโซเดียมไวต่อแรงดันไฟฟ้าในเยื่อหุ้มเซลล์ การนำหอยที่กระทรวงสาธารณสุขลักษณะพิษ โดยอัดดาก กลับ hotecoldรู้สึกอุณหภูมิ วิงเวียน กล้ามเนื้อ สูญเสียการประสานงานอาการปวดท้อง คลื่นไส้ ท้องเสีย ปวด หัว ช้าอัตราการเต้นหัวใจ ม่านตา และระคายเคืองทางเดินหายใจ [9] สำหรับคัดกรองอย่างรวดเร็วของ BTX B ในตัวอย่างอาหาร Tang et al [51]immunosensor เคมีสำคัญโดยพัฒนาimmobilizing BTX BeBSA conjugate ในตกแต่ง GNPsdendrimers เลิกมีน polyamidoamine(GNPePAADs) ถก immunoassay ชนิดแข่งขันรูปแอนตี้ชื่อ HRP BTX ป้องกันเป็นป้ายเซนเซอร์ ระยะตรวจจับต่ำของ 0.01 ng/mL ได้รับที่ทำงานเชิงเส้นหลากหลายของ 0.03e8 ng/mL BTX b การสามารถรวมตัวกันของ GNPs และ PAADs สามมิติเพิ่มค่าการนำไฟฟ้าของ PAADs และพื้นผิวอย่างมากความครอบคลุมของชื่อโมเลกุลชีวภาพบนอิเล็กโทรด ตามลำดับ [51]3.6 การ multiplex ตรวจจับสารพิษที่แบคทีเรียและอาหารในความพยายามพร้อมตรวจหาสารพิษหลาย multiplexedfluoroimmunoassays ได้ถูกพัฒนาขึ้น โดย conjugatingสารกึ่งตัวนำเรืองแสงสูง nanocrystals (CdSeeZnSเปลือก QDs) และแอนตี้วิเคราะห์ CT ไรซิน Shigalikeสารพิษ และ B SE [52] สามารถ immunoassay นี้แซนวิชกำหนดปริมาณสารพิษที่สี่ทั้งหมดในตัวอย่างเดียว โดย highthroughputรูปแบบ แม้ว่าวิธีนี้ overcomesขั้นตอนการแยกและกกไข่ตามความจำเป็นในหลายปกติ immunoassay, cross-reactivity ที่แสดงให้เป็นที่มีปัญหา อย่างไรก็ตาม เขาแนะนำที่ผ่านการเพิ่มประสิทธิภาพระวังทดสอบเงื่อนไขและตัวเลือกของการแอนติบอดีสาร ปัญหาที่เกี่ยวข้องกับ crossreactivityสามารถแก้ไขสำหรับการบรรลุความน่าเชื่อถือและความทนทานในการศึกษาก่อนหน้านี้ Branen et al [53] พัฒนาการเอนไซม์ bionanotransduction ทดสอบสำหรับการตรวจสอบพร้อมของ O157:H7 E. coli, S. enterica serovar typhimurium และ SE Bในบัฟเฟอร์และนม ด้วยขีดจำกัดของการตรวจสอบได้มี 2.4 103 โยง mL, 1.9 104 อาหรับ/mL และ 0.11 ng/mLตามลาดับ ทดสอบนี้ใช้สารเรืองแสงสามารถกำหนดปริมาณทั้งหมดสารพิษที่สามผ่านการดูดซับบน antibodyeMNPsconjugate และขยายของแม่แบบดีเอ็นเอถูกผูกไว้ไปยังแอนติบอดี

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3.4 ซิน
เนื่องจากการใช้ที่ผิดกฎหมายของซิน (Ricinus communis) ซึ่งเป็นพิษสูง
เลคติน, ขณะนี้ถือว่าเป็นภัยคุกคามชีวภาพ กลไก
ของความเป็นพิษที่เกิดจากการมีผลผูกพันของทั้งสองของคาร์โบไฮเดรต
เว็บไซต์ที่ใช้งานเพื่อ BD-galactopyranose หรือ BDN-acetylgalactosamine
ตกค้างบนพื้นผิวของเซลล์โฮสต์ [6,49] ขึ้นอยู่กับ
กลไกความเป็นพิษนี้ Uzawa et al, [49] การพัฒนาได้อย่างง่ายดาย
และมีความสำคัญสำหรับการทดสอบสีซินโดยใช้ฟังก์ชัน GNPs
กับ thiolated แกนด์ B-lactosylceramide เมื่อ
นอกเหนือจากซิน (RCA60) หรือ RCA120 agglutinin ของตัวแทนไป
ไกลคอลอนุภาคนาโนที่มีการเปลี่ยนแปลงภาพของสีจากสีแดงเป็น
สีม่วงที่เกิดขึ้นและเปลี่ยนสีนี้ไม่ได้พบใน
การปรากฏตัวของพืชอื่น ๆ อีกหลายเลคตินรวมทั้งจาก
แจ็คถั่วถั่วเหลืองถั่วลิสง ปัญญาชนงวงช้างส้มโอเซจและ
อามูร์ maackia ต้นไม้เช่นเดียวกับในการปรากฏตัวของ
โปรตีน noncarbohydrate ผูกพัน [วัวซีรั่มอัลบูมิ
(BSA) และ G-globulin] ทดสอบฤทธิ์ทางชีวภาพนี้สามารถตรวจพบซินที่
ความเข้มข้นน้อยกว่า 3.3 mg / ml ใน 10minutes หรือ 1.7 mg / ml
ใน 30 นาที ในการศึกษาอื่นเทย์เลอร์, et al [50] รวมกัน
ไวของ SPR ก่อสร้างสะดวกของอุปกรณ์ microfluidic
จาก polydimethylsiloxane โดย tethering gangliosidemonosialic
กรด 1 ตัวรับที่มีถุงไขมันทอง
ผิว nanoglassified ผ่านทอดสมอตุ่มของไบโอติน
moieties กับพื้นผิวโต้ตอบโมเลกุลของสเต .
แม้ว่าการตรวจสอบวงเงิน (0.83e5.83nM) ที่ได้รับจากนี้
วิธีการก็ไม่ได้มีความละเอียดอ่อนเป็นวิธีการอื่น ๆ ต่อไป
ปรับปรุงในอุปกรณ์ทั้งการออกแบบและการใช้เครื่องขยายเสียงสัญญาณ
อย่างมีนัยสำคัญสามารถเพิ่มประสิทธิภาพความไวและความมัลติของ
ความสามารถ.
3.5 Brevetoxins
Brevetoxins (BTXs) เป็นวงจร polyether neurotoxins บันได
ผลิตโดยไดโนแฟลกเจลเลต Karenia brevis (ทะเลจุลินทรีย์)
ซึ่งสามารถเชื่อมโยงกับแรงดันไฟฟ้าที่ไวต่อโซเดียม
ช่องทางในเยื่อหุ้มเซลล์ที่นำไปสู่อัมพาตหอย
พิษโดดเด่นด้วยอาชาผกผันของ hotecold
รู้สึกอุณหภูมิกล้ามเนื้อ อาการปวด, วิงเวียน, การสูญเสียของการประสานงาน,
ปวดท้อง, คลื่นไส้, ท้องเสีย, ปวดหัว, ช้า
อัตราการเต้นหัวใจรูม่านตาขยายและการระคายเคืองระบบทางเดินหายใจ [9] สำหรับ
การตรวจคัดกรองอย่างรวดเร็วของ BTX-B ในตัวอย่างอาหารรส et al, [51]
พัฒนา immunosensor ไฟฟ้าที่มีความสำคัญโดยการ
ตรึงผัน BTX-BeBSA บน GNPs ตกแต่ง
amine สิ้นสุด dendrimers polyamidoamine
(GNPePAADs) บนพื้นฐานของการแข่งขัน immunoassay ชนิด
รูปแบบกับ HRP ป้ายแอนติบอดีต่อต้าน BTX เป็น
ป้ายเซ็นเซอร์ตรวจจับวงเงินต่ำ 0.01 ng / ได้รับ
กับช่วงเชิงเส้นการทำงานกว้างของ 0.03e8 ng / BTX-B
รวมตัวกันของ GNPs และ PAADs สามมิติจะ
มากเพิ่มการนำของ PAADs และพื้นผิว
การรายงานข่าวของสารชีวโมเลกุลในขั้วไฟฟ้าตามลำดับ [51].
3.6 การตรวจสอบ Multiplex ของแบคทีเรียและอาหารสารพิษ
ในความพยายามที่จะตรวจสอบพร้อมกันสารพิษหลายมัลติเพล็ก
fluoroimmunoassays รับการพัฒนาโดย conjugating
นาโนคริสตัลเซมิคอนดักเตอร์เรืองแสงสูง (CdSeeZnS
หลักเปลือก QDS) และแอนติบอดีสำหรับการวิเคราะห์ CT, ซิน, Shigalike
สารพิษและ SE B [52] . immunoassay แซนวิชซึ่งอาจ
ปริมาณทั้งสี่สารพิษในตัวอย่างเดียวโดย highthroughput
รูปแบบ แม้ว่าวิธีนี้เอาชนะ
การแยกและการบ่มหลายขั้นตอนตามความจำเป็นในการใด ๆ
immunoassay ทั่วไปที่ปฏิกิริยาข้ามได้รับการแสดงให้เห็นว่า
มีปัญหา อย่างไรก็ตามมันก็บอกว่าผ่าน
การเพิ่มประสิทธิภาพระมัดระวังของเงื่อนไขการทดสอบและการเลือกของ
สารแอนติบอดีปัญหาที่เกี่ยวข้องกับปฏิกิริยาข้ามกัน
สามารถแก้ไขได้สำหรับการบรรลุความน่าเชื่อถือและความทนทาน.
ในการศึกษาก่อนหน้านี้ Branen et al, [53] การพัฒนา
bionanotransduction ทดสอบเอนไซม์ สำหรับการตรวจสอบพร้อมกัน
ของเชื้อ E. coli O157: H7, S. enterica serovar typhimurium และ SE B
ทั้งใน buffer และนมที่มีขีด จำกัด ของการตรวจสอบที่ได้รับ
เป็น 2.4? 103 CFU / ml 1.9? 104 CFU / ml และ 0.11 นาโนกรัม / มิลลิลิตร
ตามลำดับ การทดสอบนี้จะเรืองแสงที่ใช้สามารถหาจำนวนทั้งหมด
สามสารพิษผ่านการดูดซับเข้าสู่ antibodyeMNPs
ผันและการขยายของแม่ดีเอ็นเอที่ถูกผูกไว้บน
แอนติบอดี