As discussed above, even though pol

As discussed above, even though polyphenols share the common phenolic feature, due to the structural diversity, these phytochemicals vary significantly in their physicochemical properties. Owing to the chemical complexity and the frequent occurrence of polyphenols in plants, extraction, separation, identification and analysis of polyphenols remain as challenging as ever, despite the recent advances in new instrumentation. The challenge is multiplied when the complex glycosylation and polymerization patterns and the various food matrices are considered. While it is nearly impossible to develop a protocol for all polyphenols, there are some general approaches to these important aspects of polyphenol research. Many good reviews and books are available on this subject, so only a brief summary will be covered here [32-35].
Before polyphenols are extracted, samples containing these compounds must be collected, reserved and prepared properly. It is generally understood that samples (e.g., plants, foods, biological fluids) collected must represent the actual pool. Care must be taken to minimize the loss of compounds of interest during transportation and preservation of the samples. To avoid degradation of native polyphenols, samples are often dried, frozen or lyophilized before extraction because high moisture or water content aids enzyme activities [33] (Figure 10). Heating and exposure to light and oxygen may affect the polyphenolic composition in many cases; therefore high-temperature drying should be avoided as much as possible. Antioxidants such as butylated hydroxytoluene (BHT) and ascorbic acid are often added to samples to avoid oxidation of the polyphenols. Sample pre-treatment may be done by filtration and centrifugation as well [33] (Figure 10).
Many different extraction methods are available for different types of samples [32-34]. For the majority of plant originated food samples, solvent extractions such as liquid/liquid partitioning and solid/liquid extraction are most frequently employed in the laboratory. The phenolic nature of polyphenols makes them relatively hydrophilic, thus free polyphenols, including aglycones, glycosides, and oligomers, are extracted using water, polar organic solvents such as methanol, ethanol, acetonitrile and acetone, or their mixture of water. The liquid extracts are sometimes partitioned with solvents such as ethyl acetate, depending on the solubility of the target polyphenols. Also important is the pH of the extraction solvent. For polyphenols, most extractions are carried out under acidic conditions because they are generally more stable in low pH, and the acidic condition helps polyphenols to stay neutral, thus readily extracted into organic solvents. This is done using weak acid or low concentrations of a strong acid. High acid concentration can cause hydrolysis of glycosides or acylglycosides and thus may give different pictures of native polyphenol profiles. On the other hand, not all polyphenols exist in the free form. Phenolic acids such as ferulic acid and lignans in grains are often bound to structural materials. Hydrolysis using acid or alkaline releases these phenolics which
Nutrients 2010, 2
1240
are partitioned into ethyl acetate or n-butanol [8-10]. Sometimes, intentional hydrolysis is carried out
to obtain aglycones with enzymes such as -glucosidase, or with strong acid such as 2–4 M HCl at
elevated temperature such as refluxing. This is necessary, particularly when the glycosylation patterns
are extremely complex, and when standard reference materials of polyphenol glycosides are
unavailable. The hydrolysis can simplify the chromatographic profile during separation, and aid
quantification and structural identification of the polyphenols.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ดังที่กล่าวไว้ข้างต้น ถึงแม้ว่าคุณลักษณะฟีนอทั่วไป เนื่องจากความหลากหลายของโครงสร้าง แบ่งปันโพลีฟีน phytochemicals เหล่านี้แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในคุณสมบัติ physicochemical เนื่องจากความซับซ้อนทางเคมีและเกิดขึ้นบ่อยของโพลีฟีนในพืช แยก แยก การระบุและการวิเคราะห์โพลีฟีนครั้งที่ท้าทายเช่นเคย แม้ มีความก้าวหน้าล่าสุดในเครื่องมือใหม่ คูณความท้าทายเมื่อพิจารณารูปแบบ glycosylation และ polymerization ซับซ้อนและเมทริกซ์อาหารต่าง ๆ ในขณะที่เกือบไปพัฒนาโพรโทคอสำหรับโพลีทั้งหมด มีบางแง่สำคัญ polyphenol วิจัยวิธีทั่วไป รีวิวดีมากและหนังสือมีในเรื่องนี้ ดังนั้นเฉพาะสรุปย่อจะครอบคลุมที่นี่ [32-35]ก่อนสกัดโพลี ตัวอย่างที่ประกอบด้วยสารเหล่านี้ต้องรวบรวม จอง และจัดเตรียมอย่างถูกต้อง โดยทั่วไปความเข้าใจตัวอย่าง (เช่น พืช อาหาร ของเหลวชีวภาพ) รวบรวมต้องแสดงถึงสระว่ายน้ำจริง ต้องดำเนินการดูแลเพื่อลดการสูญเสียสารที่น่าสนใจในระหว่างการขนส่งและเก็บรักษาตัวอย่าง หลีกเลี่ยงของโพลีเป็นภาษาแม่ ตัวอย่างมักจะแห้ง แช่แข็ง หรือ lyophilized ก่อนสกัดเนื่องจากเนื้อหาความชื้นหรือน้ำสูงช่วยกิจกรรมของเอนไซม์ [33] (10 รูป) ความร้อน และแสงไฟ และออกซิเจนอาจมีผลต่อองค์ประกอบ polyphenolic ในหลายกรณี ดังนั้น การอบแห้งอุณหภูมิสูงควรหลีกเลี่ยงมากที่สุด มักจะมีเพิ่มสารต้านอนุมูลอิสระเช่น butylated hydroxytoluene (บาท) และกรดแอสคอร์บิคให้ตัวอย่างเพื่อหลีกเลี่ยงการเกิดออกซิเดชันของโพลีฟีน ตัวอย่างก่อนการรักษาอาจทำได้ โดยการกรองและ centrifugation ด้วย [33] (10 รูป)วิธีสกัดต่าง ๆ มากมีการแตกตัวอย่าง 32-34] สำหรับส่วนใหญ่ของพืชที่เป็นต้นกำเนิดอาหาร ตัวอย่าง ตัวทำละลายสกัดเช่นพาร์ทิชันของเหลว/ของเหลว และของแข็ง/ของเหลวสกัดบ่อยพนักงานในห้องปฏิบัติการ ลักษณะของโพลีฟีนอทำค่อนข้าง hydrophilic ฟรีดังนั้นโพลีฟีน aglycones, glycosides และ oligomers สกัดโดยใช้น้ำ โพลาร์อินทรีย์เช่นเมทานอล เอทานอล acetonitrile และอะซิโตน หรือส่วนผสมของน้ำ บางครั้งบางส่วนของเหลวแบ่งพาร์ติชัน ด้วยหรือสารทำละลายเช่นเอทิล acetate ขึ้นอยู่กับการละลายของโพลีฟีนเป้าหมาย นอกจากนี้ สิ่งสำคัญคือ pH ของตัวทำละลายสกัด สำหรับโพลี สกัดส่วนใหญ่ดำเนินการภายใต้เงื่อนไขที่เปรี้ยว เพราะจะมีเสถียรภาพมากขึ้นโดยทั่วไปในค่า pH ที่ต่ำ และเงื่อนไขเปรี้ยวช่วยโพลีพักกลาง ดัง พร้อมแยกเป็นอินทรีย์ ทำเช่นนี้อ่อนแอต่ำ หรือกรดความเข้มข้นของกรดที่แรงใช้ ความเข้มข้นกรดสูงอาจทำให้เกิดไฮโตรไลซ์ glycosides หรือ acylglycosides และอาจทำ ให้ภาพแตกต่างกันของโพรไฟล์เป็น polyphenol บนมืออื่น ๆ โพลีฟีนไม่อยู่ในรูปอิสระ กรดฟีนอกรด ferulic และ lignans ในธัญพืชมีมักจะถูกผูกไว้กับวัสดุโครงสร้าง ไฮโตรไลซ์โดยใช้กรด หรือด่างออก phenolics เหล่านี้ซึ่งสารอาหาร 2010, 21240จะแบ่งออกเป็นเอทิล acetate หรือเอ็นบิวทานอ [8-10] บางครั้ง ดำเนินการมิไฮโตรไลซ์รับ aglycones เอนไซม์เช่น-glucosidase หรือกรดแรงเช่น 2 – 4 M HCl ที่อุณหภูมิสูงเช่น refluxing สิ่งนี้จำเป็น โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อรูป glycosylationซับซ้อนมาก และเมื่อเป็นเอกสารอ้างอิงมาตรฐานของ polyphenol glycosidesไม่สามารถใช้งาน ไฮโตรไลซ์สามารถทำโพรไฟล์ chromatographic ระหว่างแยก และการช่วยเหลือนับและโครงสร้างรหัสของโพลีฟีน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตามที่กล่าวข้างต้นแม้ว่าโพลีฟีนแบ่งปันคุณลักษณะฟีนอลที่ใช้กันทั่วไปเนื่องจากความหลากหลายทางโครงสร้าง, phytochemicals เหล่านี้แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญในคุณสมบัติทางเคมีกายภาพของพวกเขา เนื่องจากความซับซ้อนทางเคมีและเกิดขึ้นบ่อยของโพลีฟีนในพืชการสกัดการแยกตัวและการวิเคราะห์ของโพลีฟีนยังคงเป็นความท้าทายเช่นเคยแม้จะมีความก้าวหน้าล่าสุดในการใช้เครื่องมือใหม่ ความท้าทายคือการคูณเมื่อซับซ้อนไกลโคซิเลและพอลิเมอรูปแบบและการฝึกอบรมอาหารต่างๆได้รับการพิจารณา ในขณะที่มันเป็นไปไม่ได้เกือบที่จะพัฒนาโปรโตคอลสำหรับการโพลีฟีนทั้งหมดที่มีบางวิธีการทั่วไปที่สำคัญของการวิจัยเหล่านี้มีโพลีฟีน ความคิดเห็นที่ดีมากและหนังสือที่มีอยู่ในเรื่องนี้เท่านั้นดังนั้นสรุปสั้น ๆ จะได้รับการคุ้มครองที่นี่ [32-35]
ก่อนโพลีฟีนจะสกัดตัวอย่างที่มีสารประกอบเหล่านี้จะต้องเก็บลิขสิทธิ์และจัดทำอย่างถูกต้อง เป็นที่เข้าใจกันโดยทั่วไปว่ากลุ่มตัวอย่าง (เช่นพืชอาหารของเหลวทางชีวภาพ) ที่เก็บรวบรวมจะต้องเป็นตัวแทนของสระว่ายน้ำที่เกิดขึ้นจริง การดูแลจะต้องดำเนินการเพื่อลดการสูญเสียของสารที่น่าสนใจในระหว่างการขนส่งและการเก็บรักษาตัวอย่าง เพื่อหลีกเลี่ยงการย่อยสลายของโพลีฟีนพื้นเมืองกลุ่มตัวอย่างมักจะแห้งแช่แข็งหรือแห้งก่อนที่จะสกัดเพราะมีความชื้นสูงหรือปริมาณน้ำเอนไซม์ช่วย [33] (รูปที่ 10) ทำความร้อนและการสัมผัสกับแสงและออกซิเจนอาจมีผลต่อองค์ประกอบโพลีฟีในหลายกรณี; ดังนั้นการอบแห้งที่อุณหภูมิสูงควรหลีกเลี่ยงให้มากที่สุดเท่าที่เป็นไปได้ สารต้านอนุมูลอิสระเช่น butylated hydroxytoluene (BHT) และวิตามินซีมักจะมีการเพิ่มตัวอย่างเพื่อหลีกเลี่ยงการเกิดออกซิเดชันของโพลีฟีน ตัวอย่างการรักษาก่อนอาจจะทำโดยการกรองและการปั่นเป็นอย่างดี [33] (รูปที่ 10)
หลายวิธีการสกัดที่แตกต่างกันที่มีอยู่สำหรับประเภทที่แตกต่างกันของกลุ่มตัวอย่าง [32-34] สำหรับส่วนใหญ่ของพืชที่มีถิ่นกำเนิดอาหารการสกัดสารตัวทำละลายเช่นของเหลว / แบ่งของเหลวและการสกัดของแข็ง / ของเหลวมีการจ้างงานมากที่สุดในห้องปฏิบัติการ ธรรมชาติฟีนอลโพลีฟีนที่ทำให้พวกเขาค่อนข้างชอบน้ำจึงโพลีฟีนฟรีรวมทั้ง aglycones, ไกลโคไซด์และ oligomers ถูกสกัดโดยใช้น้ำตัวทำละลายอินทรีย์ขั้วโลกเช่นเมทานอลเอทานอล acetonitrile และอะซิโตนหรือส่วนผสมของน้ำ สารสกัดจากของเหลวจะถูกแบ่งพาร์ติชันบางครั้งก็มีตัวทำละลายเช่นเอทิลอะซิเตทขึ้นอยู่กับการละลายของโพลีฟีนเป้าหมาย นอกจากนี้ที่สำคัญคือค่า pH ของตัวทำละลายในการสกัด สำหรับโพลีฟีนการสกัดสารส่วนใหญ่จะดำเนินการภายใต้เงื่อนไขที่เป็นกรดเพราะพวกเขามักจะมีเสถียรภาพมากขึ้นในค่า pH ต่ำและสภาพที่เป็นกรดจะช่วยให้โพลีฟีนจะอยู่ที่เป็นกลางจึงสกัดพร้อมเป็นตัวทำละลายอินทรีย์ นี้จะกระทำโดยใช้กรดอ่อนหรือความเข้มข้นต่ำของกรด ความเข้มข้นของกรดสูงอาจทำให้เกิดการย่อยสลายของไกลโคไซด์หรือ acylglycosides จึงอาจให้ภาพที่แตกต่างของรูปโพลีฟีนพื้นเมือง ในมืออื่น ๆ ที่ไม่ได้โพลีฟีนทั้งหมดที่มีอยู่ในรูปแบบฟรี กรดฟีนอลเช่นกรด ferulic และ lignans ในเมล็ดมักจะผูกพันกับวัสดุโครงสร้าง ย่อยด้วยกรดหรือด่างเผยแพร่ฟีนอลเหล่านี้ที่
Nutrients 2010 2
1240
จะแบ่งเป็นอะซิเตทเอทิลหรือ n-butanol [8-10] บางครั้งการย่อยเจตนาจะดำเนินการ
เพื่อให้ได้ aglycones กับเอนไซม์เช่น-glucosidase หรือกรดเช่น 2-4 M HCl ที่
อุณหภูมิสูงเช่นกรด นี้เป็นสิ่งจำเป็นโดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อรูปแบบ glycosylation
มีความซับซ้อนมากและเมื่อวัสดุอ้างอิงมาตรฐานของไกลโคไซด์โพลีฟีนที่
สามารถใช้งานได้ การย่อยสามารถลดความซับซ้อนรายละเอียดโครมาในระหว่างการแยกและการช่วยเหลือ
ปริมาณและการตรวจสอบโครงสร้างของโพลีฟีน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตามที่กล่าวไว้ข้างต้น ถึงแม้ว่าโพลีฟีนอลใช้คุณลักษณะทั่วไป เนื่องจากความหลากหลายของโครงสร้าง phytochemicals เหล่านี้แตกต่างกันอย่างมากในการเปรียบเทียบคุณสมบัติ เนื่องจากสารเคมีที่ซับซ้อนและบ่อยครั้งที่เกิดขึ้นของโพลีฟีนในพืช , การสกัด การแยก จำแนก และการวิเคราะห์ของโพลีฟีนยังคงเป็นความท้าทายที่เคยแม้จะมีความก้าวหน้าล่าสุดในเครื่องมือใหม่ ความท้าทายมากขึ้นเมื่อ glycosylation ซับซ้อนและรูปแบบพอลิเมอร์เมทริกซ์และอาหารต่าง ๆเป็นสำคัญ ขณะที่มันเป็นไปไม่ได้เกือบที่จะพัฒนาโปรโตคอลทั้งหมด โพลีฟีนอล มีบางทั่วไปวิธีการเหล่านี้สำคัญด้านงานวิจัยระหว่าง .รีวิวที่ดีมาก และหนังสือที่มีอยู่ในเรื่องนี้ ดังนั้นเพียงสรุปสั้น ๆ จะครอบคลุมที่นี่ [ 32-35 ] .
ก่อนจะแยกสารประกอบโพลีฟีนอล ตัวอย่างเหล่านี้จะถูกรวบรวมไว้และเตรียมอย่างถูกต้อง มันเป็นที่เข้าใจกันโดยทั่วไปว่า ตัวอย่าง เช่น , พืช , อาหาร , ของเหลวชีวภาพ ) เก็บต้องเป็นตัวแทนสระว่ายน้ำที่เกิดขึ้นจริงการดูแลจะต้องถ่ายเพื่อลดการสูญเสียของสารที่น่าสนใจระหว่างการขนส่งและเก็บรักษาตัวอย่าง เพื่อหลีกเลี่ยงการสลายตัวของฟีนอลพื้นเมืองตัวอย่างมักจะแห้งแช่แข็งหรือแห้งก่อน เพราะความชื้นสูงหรือน้ำสกัดเนื้อหากิจกรรมเอนไซม์เอดส์ [ 33 ] ( รูปที่ 10 )