The feeding protocol used for H. huso larval rearing fromhatching to
the juvenile stage is summarized in Fig. 1. In brief, larvae were fed by a
mixture of Artemia nauplii (EG, INVE, Belgium) and Daphnia sp. from12
to 25 dph (199.2–432.5 degree days post hatch, ddph) (500–800
nauplii/larvae/day). A short co-feeding phase based on Cladocerans
and a compound diet (BioMar, Denmark; D1—particle size = 0.5 mm)
was conducted from 25 to 30 dph (432.5–534 ddph), whereas from
this age onward, fish were fed only with the inert feed (BioMar,
Denmark; D2—particle size = 0.8 mm) at a feeding rate of 30 and
20% of stocked fish biomass respectively. The compound diet was
given to larvae from 4-6 times per day and feed ration and particle
size were progressively adjusted for fish size from 25 to 50 dph
(432.5–906.5 ddph).
Proximate composition (dry matter) of live prey (Artemia nauplii
and Daphnia sp.) was determined in 3 samples per type of live prey.
Crude protein was determined by the Kjeldahl method (N × 6.25)
using an automatic Kjeldahl system (Behrotest WD 40, Germany) and
crude fat content was determined by Soxhlet method (Folch et al.,
1957). Total protein and lipid content in Artemia were 65.6 ± 1.4%
and 15.1 ± 0.2%, respectively, whereas Daphnia sp. contained 52.6 ±
1.9% of proteins and 11.1 ± 0.1% of lipids. The proximate composition
of compound diets (D1 and D2) was 63 and 58% of total protein, 11
and 15% of total lipids, and 11.6 and 11.5% total carbohydrate respectively
(data provided by feed manufacturer).
2.2. Fish growth measurements and sampling schedule
In order to determine larval growth in weight (BW) and total length
(TL), fish (n = 40)were daily sampled randomly prior to feeding in the
morning using a pipette with a large opening from hatching to 18 dph
(306 ddph), whereas samples were collected every 2 days from 18 to
50 dph (306–906.5 ddph). Sampled larvae were sacrificed with an
overdose of tricaine methanosulphonate (MS-222, Sigma-Aldrich,
โปรโตคอลที่ใช้สำหรับการป้อนนม fromhatching กระเพื่อมน้อยๆเกี่ยวกับตัวอ่อน huso h กับเวทีเยาวชน
ซึ่งจะช่วยให้สามารถสรุปได้ในรูป 1 . ในบทสรุป,ลูกน้ำเป็นอาหารโดย
การผสมผสานของ artemia nauplii (เช่น inve ,เบลเยียม)และ daphnia sp .จาก 12
ถึง 25 dph ( 199.2 - 432.5 องศาวันที่ทำการไปรษณีย์แฮทช์, ddph )( 500 - 800
nauplii /ลูกน้ำ/วัน) ขั้นตอนในระยะทางสั้นๆเพื่อไปร่วมการป้อนนมที่ใช้ cladocerans
และอาหารผสม( biomar เดนมาร์กD 1 - ขนาด อนุภาค = 0.5 มม.)
เป็นผู้ดำเนินการตั้งแต่ 25 ถึง 30 dph ( 432.5 - 534 ddph )ในขณะที่จาก
อายุนี้เป็นต้นไป,ปลาเป็นอาหารเท่านั้นพร้อมด้วยที่จะเคลื่อนไหวให้อาหาร( biomar ,
เดนมาร์ก; D 2 - ขนาด อนุภาค = 0.8 มม.)ที่อัตราการป้อนนมของ 30 และ
20% ของปลาจากชีวมวลจัดให้บริการอย่างครบครันตามลำดับ. การรับประทานอาหารที่ผสมเป็น
ซึ่งจะช่วยให้ลูกน้ำจาก 4-6 4-6 ครั้งต่อวันและให้อาหารสัตว์ขนาดเล็กและเสบียงกรัง
มีขนาดกลางได้รับการปรับเพิ่มขึ้นสำหรับปลาขนาดตั้งแต่ 25 ถึง 50 dph
( 432.5 - 906.5 ddph )..
ใกล้ชิดการเขียน(แห้งเรื่อง)ของชีวิต( artemia nauplii
และ daphnia sp .)ได้กำหนดใน 3 ตัวอย่างต่อ ประเภท ของสดเป็นเหยื่อ.
น้ำมันดิบโปรตีนมีกำหนดโดย kjeldahl วิธีการ( N × 6.25 )
การใช้ระบบอัตโนมัติ kjeldahl ( behrotest ด้วยรถขับเคลื่อนสี่ทิศทาง 40 ,เยอรมนี)และ
ไขมันนำเข้าน้ำมันดิบมีกำหนดโดยใช้วิธีการ soxhlet ( folch et al .
1957 ) เนื้อหา( lipid โปรตีนและทั้งหมดใน artemia ± 1.4 เป็น 65.6 และ 15.1%
± 0.2% ตามลำดับขณะที่ daphnia sp .มีอยู่ 52.6 ±
1.9% ของโปรตีนและ 11.1 ± 0.1% ของไขมัน การเขียนเรียงความใกล้ชิดที่
ของอาหารผสม( D 1 และ D 2 )เป็น 63 และ 58% ของปริมาณโปรตีนสูง 11
และ 15% ของไขมันทั้งหมดและ 11.6 และ 11คาร์โบไฮเดรตรวม 5% ตามลำดับ
(ข้อมูลจากผู้ผลิตอาหารสัตว์)..
2.2 ปลาการขยายตัวการวัดและกำหนดตารางเวลาการสุ่มตัวอย่าง
ซึ่งจะช่วยในการตรวจสอบเกี่ยวกับตัวอ่อนเติบโตในน้ำหนัก( BW )และความยาวโดยรวม
( TL ),ปลา( N = 40 )ได้ทุกวันแบบสุ่มตัวอย่างก่อนที่จะใส่ใน
ช่วงเช้าโดยใช้หลอดเล็กสำหรับดูดของเหลวพร้อมด้วยขนาดใหญ่เปิดจากการแรเงาทับ: 18 dph
( 306 ddph )ในขณะที่ตัวอย่างได้จากการเก็บข้อมูลทุก 2 วันตั้งแต่วันที่ 18 ถึง 50
dph ( 306-906.5 ddph ) ลูกน้ำตัวอย่างมีถวายด้วย
การกินยามากเกินขนาดของ tricaine methanosulphonate ( MS -222 sigma-aldrich
การแปล กรุณารอสักครู่..
