ก่อนที่จะแยกวิเคราะห์ทางสถิติ สำหรับแต่ละทำตามข้อมูลแปรรูป 20 พารามิเตอร์ การผสมแบบจำลองวิเคราะห์ของต่างคาโนวา)เงื่อนไขที่รวมถึงรัน (บล็อกสุ่มผล) และแอนติบอดีจากการวิเคราะห์ความแปรปรวน หมายถึงเรขาคณิตคาดการณ์สำหรับแต่ละแอนติบอดี พร้อมทางสถิติ ช่วงเป็นไปได้ (ช่วงความเชื่อมั่น 95%) สำหรับค่าเฉลี่ยแต่ละ เปรียบเทียบแผนของแอนตี้ได้ ดำเนินการภายในการวิเคราะห์ความแปรปรวน มีแสดงเปรียบเทียบเป็นอัตราส่วนของแอนตี้สองเปรียบเทียบ 25 อีก ด้วยช่วงความเชื่อมั่น 95% และค่า p อัตรานอกจากนี้ยังอาจจะตีความเป็นกลีบ เปลี่ยน อัตราส่วน 0.1 สอดคล้องลดลง 90% เช่นหมายถึงเรขาคณิตได้รับสำหรับแต่ละแอนตี้ฮิวเมไนซ์และ chimeric ควบคุม IMP731 สำหรับแอฟฟินิตี้ผูก (KD), แสดงในตาราง 4 มีค่าเฉลี่ย KD สำหรับ H5L70.2075nM ลดลงอย่างมีนัยสำคัญของ 92% (เช่นพับ 10 ลดลง) กับ p < มาก 0.0001 เมื่อเปรียบเทียบกับ 30 IMP731 IMP731 จัดแสดงค่าเฉลี่ย KD ของ 2.76nM Afucosylated H5L7BW จัดแสดงรวมเทียบเท่า เป็น fucosylated H5L7 กับ KD เรขาคณิตของ 0.2179nM มีไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญ (p = 0.1790)ปรับปรุงในสังเกตสำหรับ H5L7 โดย IMP731 แอฟฟินิตี้เป็นส่วนใหญ่ ขับเคลื่อน โดยความแตกต่างในการปิดราคาของแอนตี้ที่สำหรับความล่าช้า-3-เบาะแส-His6 แสดงในตาราง 5 มี จะมีประมาณ 85% ลดลง (เช่นเกือบ 10 เท่าลดลง) ใน kd สำหรับ H5L7 35 IMP731 ซึ่งมีความสำคัญสูงทางสถิติการเปรียบเทียบ ไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่าง afucosylated H5L7BW และ H5L7 (p = 0.4408) ตาราง 4: สถิติการประเมินสำหรับ KD fucosylated และ afucosylated แอนติ-ความล่าช้า-3 รูปแปรผันs ผูกกับรีคอมบิแนนต์ฮิวเมนความล่าช้า-3-พระหมายถึงเรขาคณิตสำหรับ KD (nM)หมายถึงไม่มีชุดทรงเรขาคณิตแอนติบอดีต่ำกว่า 95% CI บน 95% CIH5L7 GRITS42382 2.08E-10 1.89E-10 2.28E-10H5L7BW GRITS42760 2.18E-10 1.98E-10 2.40E-10IMP731 020909 2.76E-09 2.51E-09 3.04E-09เปรียบเทียบของ KDKD เปรียบเทียบอัตราส่วนต่ำกว่า 95% CI บน 95% CI P ค่าH5L7BW-H5L7 1.0502 0.97268 1.13389 0.179H5L7-1MP731 0.07736 0.0715 0.0837 < .00015ตาราง 5: สถิติการประเมินสำหรับ kd fucosylated และ afucosylated แอนติ-ความล่าช้า-3 รูปแปรผันs ผูกกับรีคอมบิแนนต์ฮิวเมนความล่าช้า-3-พระหมายถึงเรขาคณิตสำหรับ kd (1/s)หมายถึงไม่มีชุดทรงเรขาคณิตแอนติบอดีต่ำกว่า 95% CI บน 95% CIH5L7 GRITS42382 3.95E-03 3.16E-03 4.94E-03H5L7BW GRITS42760 4.41E-03 3.53E-03 5.51E-03IMP731 020909 2.75E-02 2.20E-02 3.44E-02เปรียบเทียบของ kdKD เปรียบเทียบอัตราส่วนต่ำกว่า 95% CI บน 95% CI P ค่าH5L7BW-H5L7 1.11715 0.81531 1.53073 0.4408H5L7-1MP731 0.15478 0.11157 0.21471 < .000110ตัวอย่างที่ 3: การประเมินเอพิโทปรวมความล่าช้า-3-พระของ รูปแปรผันs ฮิวเมไนซ์ 3 แอนติ-ความล่าช้าเมื่อเปรียบเทียบกับ chimeric แอนติบอดี IMP731 ใช้ ProteOnTM การทำการทดลองผูกเอพิโทปกับ H5L7 เพื่อประเมินว่าเอพิโทป 15 3 ความล่าช้าที่ binds IMP731 ที่อยู่ตาม humanisation นอกจากนี้ การรวม เอพิโทป รูปแปรผันs ฮิวเมไนซ์ fucosylated และ afucosylated นอกจากนี้ยังมีการเปรียบเทียบเอพิโทปผูกถูกประเมินโดยใช้ ProteOnTM XPR36 (BioRadTM) biosensor โดยเครื่อง ประเมินว่าแอนตี้แอนติ-ความล่าช้า-3 ไม่สามารถผูกเข้ากันกับความล่าช้า-3-พระในคอมเพล็กซ์ มีแอนติบอดีที่จับบนผิวชิ ProteOnTM IMP731 และไม่ใช่การแข่งขัน murine แอนติบอดี 20 17B4 ถูกใช้เป็นตัวควบคุมในการทดสอบนี้แอนตี้จะทดสอบได้โดยใช้ชุด biotinylation Ez-ลิงค์-sulfo-NHS biotinylated แต่ละ biotinylated แอนติบอดีถูกจับบนเซลล์ขั้นตอนแยกต่างหากบนชิปที่ NLC neutravidin ใช้ในแนวตั้ง ฉีด หลังจากที่จับแอนติบอดี ผิวถูกบล็อก ด้วย biocytin ที่ 2.5 mg / ml ใช้ co -ฉีดโดยธรรมชาติการ ProteOn การเรียกใช้ซอฟต์แวร์สิ่งอำนวยความสะดวก ความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 ถูกฉีดผ่านแอนตี้ coupled ที่ 100nM ตามแอนตี้ biotinylated สหประชาชาติที่ 100nM กับฉีดทั้งถูกแนวนอนเพื่อให้ความล่าช้า-3-ของเขาและแอนตี้การข้ามทั้งหมด 6 neutravidin จับแอนตี้ วิเคราะห์ 5 ถูกเรียกใช้ ที่ 25° c และ ใน HBS EP ระบบ ProteOn XPR36 โปรตีนโต้เรย์ วิเคราะห์ข้อมูลที่ดำเนินการโดยใช้รายงานจุดที่ถ่ายหลังจากฉีดความล่าช้า-3-พระ และรายงานสถานที่ถ่ายหลังจากฉีด analyte แอนติบอดี biotinylated สหประชาชาติ การตอบสนองโดยรวมมี คำนวณ โดยลบคำตอบเห็น ด้วยผูกแอนติบอดีจากการตอบสนองที่เห็นด้วย ความล่าช้า 3 เบาะแส His6 ผูก การสั่นพ้องบวกค่าหน่วย (RU) หมายความ ว่า แอนติบอดี analyte ฉีด 10 มาผูกกับความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 complexed กับแอนติบอดี biotinylated บนจับ neutravidin พื้นผิว ส่อผูกที่ เอพิโทปs ไม่ใช่การแข่งขัน ไม่ตอบสนองหรือการตอบสนองเป็นค่าลบ หมายความ ว่า ฉีด analyte แอนติบอดีมาผูกกับความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 complexed กับการ แอนติบอดีใน biotinylated บนผิวจับ neutravidin แอนตี้บ่งบอกผูกที่แข่งขัน เอพิโทปs15 รูปแปรผันs ฮิวเมไนซ์แอนติ-ความล่าช้า-3 (fucosylated และ afucosylated) ไม่สามารถผูกกับมนุษย์ความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 ในคอมเพล็กซ์กับ IMP731 ตัวชี้ให้เห็นว่า เอพิโทปสำหรับความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 ใช้ร่วมกัน และจึง อยู่ 17B4 murine แอนติบอดีไม่สามารถผูกเข้ากับมนุษย์ความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 ในคอมเพล็กซ์กับ IMP731 substantiating ว่าแอนติบอดีนี้ไม่ใช่การแข่งขันสำหรับความล่าช้า 3 เบาะแส His6 ผูกกับ IMP731 ในทางกลับกัน แอนตี้ฮิวเมไนซ์จะผูกกับมนุษย์ความล่าช้า 3 เบาะแส-His6 ใน20 complex with 17B4.The results confirm that there has been no alteration in เอพิโทป between the chimeric IMP731 and the ฮิวเมไนซ์ รูปแปรผัน of IMP731 tested in this experiment. The experiment also shows that there is no difference between fucosylated and afucosylated antibodies for binding.25 Example 4: Binding analysis of แอนติ-LAG-3 ฮิวเมไนซ์ antibodies to recombinant cynomolgusmacaque and baboon LAG-3 ECD-His6 using the Biacore"T100The binding cross reactivity of แอนติ-LAG-3 ฮิวเมไนซ์ antibodies for both cynomolgus macaque (cyno) and baboon recombinant LAG-3 ECD-His6 (SEQ ID NOs 52 and 53, respectively) 30 was assessed using the BiacoreTM T100 (GE HealthcareTM)Protein A was immobilised on a CM5 chip by primary amine coupling. This surface was then used to capture the ฮิวเมไนซ์ antibodies. In-house generated recombinant cynomolgus macaque and baboon LAG-3 ECD-His6 were then passed over the captured antibodies and regeneration wascarried out using 50mM NaOH. LAG-3 ECD-His6 was passed over at 16, 4, 1, 0.25 and 0.0625nM. 35 The binding curves were double referenced with buffer injection (i.e. OnM) and the data was fittedto the T100 analysis software using the 1:1 model. The run was carried out at 37°c using HBS-EP as the running buffer. H5L7, H5L7BW and IMP731 bind with comparable แอฟฟินิตี้ to both cynomolgus macaque and baboon recombinant LAG-3 ECD-His6. Data was generated from separate experiments, however chimeric antibody IMP731 was utilised as a control between experiments. This data indicates that both non-human primate recombinant LAG-3 orthologues bind to the 5 H5L7 derived antibodies with a 10 fold improvement in แอฟฟินิตี้ in comparison with humanrecombinant LAG-3 ECD-His6 (SEQ ID NO: 51) (H5L7: human LAG-3 0.208nM, cyno LAG-3 0.017nM and baboon LAG-3 0.022nM; H5L7BW human LAG-3 0.218nM, cyno LAG-3 0.021nM and baboon LAG-3 0.024nM). Whilst both non-human primate recombinant LAG-3 orthologues bind to IMP731 derived antibodies with an improvement in แอฟฟินิตี้ of approximately 100 fold in comparison with 10 human recombinant LAG-3 ECD-His6 (SEQ ID NO: 51) (IMP731: human LAG-3 2.76nM, cyno LAG-30.021nM and baboon LAG-3 0.019nM).Example 5: Binding profiles of H5L7BW, H5L7 and IMP731 to human LAG-3 expressing EL4 cells, and human primary activated CD3+ T cells15Human LAG-3 expressing EL4 cells were incubated with either IMP731, H5L7 or H5L7BW Alexa647-คอนจูเกตed antibodies at varying concentrations of up to 50pg/m1 for 30 minutes at room temperature. Cells were washed with FACS buffer (PBS+0.5% BSA) to remove unbound antibody.CD3+ T cells were prepared from PBMCs by negative selection using Untouched Human T 20 cell Dynal beads. CD3+ T cells were activated by incubation with immobilised แอนติ-CD3 and แอนติ- CD28 and soluble recombinant human IL-12 for 3 days at 37°C. Activated cells were incubated with Alexa 647-คอนจูเกตed antibodies of varying concentrations up to 3pg/ml for 30 minutes at room temperature. Cells were washed with FACS buffer (PBS+0.5% BSA).EL4 cells and CD3+ T cells were analysed by FACS using a Beckman Coulter FC 500 flow25 cytometer. FACS raw data were analysed using CXP Analysis software (Beckman Coulter). The datawas initially plotted on a forward-scatter versus side-scatter plot and the population of cells ofinterest were gated. This gated population was then plotted as a histogram displaying fluorescence intensity and the mean fluorescence intensity (MFI) calculated. MFI values were then plotted in GraphPad Prism 5 software to generate dose response curves.30 Binding profiles of H5L7BW, H5L7 and IMP731 to human LAG-3 expressing EL4 cells, andhuman primary activated CD3+ T cells are shown in Fig. 1. The three antibodies exhibited similar binding characteristics to human LAG-3 expressing EL4 cells (Fig. 1A) and activated human CD3+ T cells (Fig. 1B).35 Example 6: Assessment of the depleting activity of H5L7BW and H5L7 by antibody dependentcellular cytotoxicity (ADCC) in primary human T cells
การแปล กรุณารอสักครู่..
