clutch with the aid of a magnifying

clutch with the aid of a magnifying lens. An untreated control
set was maintained under similar physicochemical conditions.
Oviposition deterrence was determined from the number of
egg clutches obtained and number of eggs deposited by the
parasite per clutch. A randomsampling of 30 egg clutches was
made for counting process. The experiment was repeated for
three times (n=90). Oviposition deterrence index (ODI) was
calculated using the following equation:
ODI ¼ ðNC− NAÞ=ðNC þ NAÞ
where NC is the number of egg clutches or eggs laid by the
control parasite and NA is the number of egg clutches and
number of eggs laid by treated parasites. This index ranged
from around zero for any deterrent effect on oviposition to
approximately 1 for complete deterrence. Significant differences
of ODI between the number of eggs laid by the control
and treated parasites were analyzed using a chi-square test on
the actual data, under the null hypothesis that the total number
of eggs was distributed evenly between the egg clutches of
treated and control groups.
Reduction in hatching percentage (% H) was calculated
using the following equation (Kumar et al. 2012):
% H ¼ fðHC−HAÞ=HCg  100
where HC is the hatching rate in the control group, and HA
is the hatching rate in the azadirachtin-treated groups.
Effect of ALE treatment on egg
Effect of ALE on hatching
Gravid female parasites were scraped from the infected fish
and immediately released into a 100-ml glass beaker. Each
beaker contained one parasite and was kept undisturbed for
egg laying. If the egg clutch was found, the spent out parasites
was removed from the beaker. To understand the effect of
azadirachtin on embryonic development, eggs at different
incubation periods of 30, 40, 50, 60, 70, and 80 min were
put under static exposure to 120 and 250-ppm ALE for
10 min. After exposure, the eggs inside the glass beakers were
placed in an aquarium. The aquarium was maintained with
proper aeration, and development of eggs was observed regularly
with the aid of a magnifying lens after the glass beakers
being taken out from the aquarium. After each observation,
the beakers were returned to the aquarium bath for further
incubation. An untreated control set was maintained under
similar physicochemical conditions. The viability of the
eggs in terms of hatching percentage was determined
through counting of empty egg shells with longitudinal
hatching furrow

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กระเป๋าคลัทช์ ด้วยเลนส์แว่นขยาย ตัวควบคุมที่ได้รับการรักษาชุดถูกรักษาไว้ภายใต้เงื่อนไขทางเคมีกายภาพที่คล้ายคลึงกำหนดจากจำนวนผ่าน ovipositionไข่กระเป๋าถือที่ได้รับและจำนวนของไข่ฝากไว้โดยการปรสิตต่อคลัทช์ ถูก randomsampling ของกระเป๋าถือไข่ 30สำหรับกระบวนการนับได้ การทดลองซ้ำสำหรับครั้งที่ 3 (n = 90) Oviposition ผ่านดัชนีจาก)คำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้:จาก¼ ðNC− NAÞ = ðNC þ NAÞNC อยู่จำนวนกระเป๋าถือไข่หรือไข่ที่วางโดยการควบคุมปรสิตและนาเป็นจำนวนกระเป๋าถือไข่ และจำนวนไข่ที่วาง โดยรักษาปรสิต ดัชนีนี้โจมตีระยะไกลจากศูนย์ประมาณสำหรับ oviposition การผลเกิดประมาณ 1 สำหรับสมบูรณ์ผ่าน ความแตกต่างกันของจากระหว่างจำนวนไข่ที่วางไว้ โดยการควบคุมและรักษาปรสิตได้วิเคราะห์โดยใช้การทดสอบไคสแควร์บนข้อมูลแท้จริง ภายใต้สมมติฐานว่างที่จำนวนรวมไข่กระจายเท่า ๆ กันระหว่างไข่ clutches ของได้รับการรักษา และกลุ่มควบคุมคำนวณการลดเปอร์เซ็นต์ของ H ฟักใช้สมการต่อไปนี้ (Kumar et al. 2012):% H ¼ fðHC−HAÞ = HCg 100อัตราการฟักไข่ในกลุ่มควบคุม และ HA HCมีอัตราการฟักไข่ในกลุ่มถือว่า azadirachtinผลการรักษาไข่ ALEผลของ ALE ในการฟักไข่ปรสิต gravid หญิงถูกขูดปลาติดเชื้อและทันทีที่นำออกใช้ลงในบีกเกอร์แก้ว 100 มล. แต่ละบีกเกอร์ประกอบด้วยปรสิตหนึ่ง และถูกเก็บไว้มีสำหรับไข่ที่วาง ถ้าหนีบไข่พบ การใช้จ่ายออกปรสิตถูกเอาออกจากบีกเกอร์ เข้าใจผลกระทบของazadirachtin พัฒนาตัวอ่อน ไข่ที่แตกต่างกันมีระยะเวลาบ่ม 30, 40, 50, 60, 70 และ 80 นาทีใส่ใต้ ALE 120 และ 250 ppm สำหรับคงแสง10 นาที หลังจากสัมผัส ไข่ภายในบีกเกอร์แก้วได้วางปลา พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำกรุงด้วยอากาศที่เหมาะสม และการพัฒนาของไข่ที่ถูกตรวจสอบอย่างสม่ำเสมอด้วยความช่วยเหลือของเลนส์แว่นขยายหลังบีกเกอร์แก้วถูกนำออกจากพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำ หลังจากการสังเกตแต่ละกเกอร์ถูกส่งกลับไปอาบน้ำสัตว์น้ำสำหรับเพิ่มเติมกกไข่ ชุดควบคุมได้รับการรักษาถูกรักษาไว้ภายใต้สภาพทางเคมีกายภาพคล้ายคลึงกัน ในเชิงของการกำหนดในแง่ของเปอร์เซ็นต์การฟักไข่ผ่านเปลือกไข่ที่ว่างเปล่ากับยาวนับฟักไข่ตีนกา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

คว้าด้วยความช่วยเหลือของแว่นขยายที่ ตัวควบคุมการรับการรักษา
ชุดถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้เงื่อนไขทางเคมีกายภาพที่คล้ายกัน.
วางไข่ยับยั้งถูกกำหนดจากจำนวนที่
เงื้อมมือไข่ที่ได้รับและจำนวนของไข่ฝากโดย
ปรสิตต่อคลัทช์ randomsampling 30 เงื้อมมือไข่ถูก
สร้างขึ้นมาเพื่อกระบวนการนับ การทดลองซ้ำ
สามครั้ง (n = 90) ดัชนีวางไข่ยับยั้ง (ODI) คือการ
คำนวณโดยใช้สมการต่อไป:
ODI ¼ðNC-ภูมิพลอดุลยเดช = DNC Þภูมิพลอดุลยเดช
ที่ NC คือจำนวนของเงื้อมมือไข่หรือไข่ที่วางไว้โดย
ปรสิตควบคุมและการ NA คือจำนวนของเงื้อมมือไข่และ
จำนวนไข่วาง ได้รับการรักษาจากปรสิต ดัชนีนี้อยู่ในช่วง
จากทั่วศูนย์สำหรับผลยับยั้งใด ๆ เกี่ยวกับการวางไข่ไป
ประมาณ 1 สำหรับการป้องปรามที่สมบูรณ์ ความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญ
ของ ODI ระหว่างจำนวนวางไข่โดยการควบคุม
และปรสิตได้รับการรักษาที่ถูกวิเคราะห์โดยใช้การทดสอบไคสแควร์บน
ข้อมูลที่แท้จริงภายใต้สมมติฐานว่าจำนวน
ของไข่ได้รับการกระจายอย่างสม่ำเสมอระหว่างเงื้อมมือไข่ของ
การควบคุมการปฏิบัติและ . กลุ่ม
ลดฟักร้อยละ (% H) ที่คำนวณ
โดยใช้สมการต่อไป (Kumar et al, 2012.)
H% ¼fðHC-ทรงเอชซีจี =? 100
ที่ HC เป็นอัตราการฟักในกลุ่มควบคุมและ HA
เป็นอัตราการฟักในกลุ่ม azadirachtin-ได้รับการรักษา.
ผลของการรักษาเบียร์ไข่
ผลของเบียร์ในการฟักไข่
ปรสิตหญิง Gravid ถูกคัดลอกมาจากปลาที่ติดเชื้อ
และปล่อยออกมาในทันที บีกเกอร์แก้ว 100 มล แต่ละ
ถ้วยแก้วที่มีอยู่หนึ่งปรสิตและถูกเก็บไว้ไม่ถูกรบกวนสำหรับ
วางไข่ ถ้าคลัทช์ไข่พบที่ใช้ออกปรสิต
ถูกลบออกจากถ้วยแก้ว เพื่อให้เข้าใจถึงผลกระทบของ
azadirachtin เกี่ยวกับการพัฒนาของตัวอ่อนไข่ที่แตกต่างกัน
ระยะเวลาฟักตัว 30, 40, 50, 60, 70, และ 80 นาทีถูก
วางอยู่ภายใต้การเปิดรับแสงคงที่เอ 120 และ 250 ppm สำหรับ
10 นาที หลังจากได้รับไข่ภายในบีกเกอร์แก้วถูก
วางไว้ในตู้ปลา พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำที่ถูกเก็บรักษาไว้ด้วย
การเติมอากาศที่เหมาะสมและการพัฒนาของไข่ก็สังเกตเห็นอย่างสม่ำเสมอ
ด้วยความช่วยเหลือของเลนส์แว่นขยายหลังจากที่บีกเกอร์แก้ว
ถูกนำออกจากตู้ปลา หลังจากที่แต่ละสังเกต
บีกเกอร์ที่ถูกส่งกลับไปยังห้องอาบน้ำพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำสำหรับต่อ
การบ่ม ชุดควบคุมได้รับการรักษาก็ยังคงอยู่ภายใต้
เงื่อนไขทางเคมีกายภาพที่คล้ายกัน ศักยภาพของ
ไข่ในแง่ของเปอร์เซ็นต์การฟักไข่ถูกกำหนด
ผ่านการนับเปลือกไข่ยาวว่างเปล่ากับ
ร่องฟัก

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

คลัช ด้วยความช่วยเหลือของแว่นขยายเลนส์ การรักษาควบคุมกำหนดไว้ภายใต้เงื่อนไขทางกายภาพและทางเคมีที่คล้ายคลึงกันวางไข่ป้องปรามถูกกำหนดจากจำนวนไข่ที่ได้ และจำนวนไข่ ได้ฝากด้วยปรสิตต่อคลัช มีแบบ 30 เงื้อมมือไข่ให้นับ กระบวนการ และทำการทดลองซ้ำ สำหรับสามครั้ง ( n = 90 ) ดัชนีการป้องปรามการวางไข่ ( ODI ) คือคำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้¼ ODI ð NC − na Þ = ð NC þÞ naที่ NC คือจำนวนไข่ ได้ไข่ด้วยหรือควบคุมพยาธินาเป็นจำนวนไข่ ได้ และจำนวนของไข่โดยการรักษาปรสิต นี้มีค่าดัชนีจากรอบ ๆศูนย์ใดมีผลต่อการวางไข่เพื่อยับยั้งประมาณ 1 เพื่อป้องปรามที่สมบูรณ์ ความแตกต่างของ ODI ระหว่างจำนวนของไข่โดยการควบคุมและรับการรักษาปรสิต วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้การทดสอบไคสแควร์ข้อมูลที่แท้จริง ภายใต้สมมุติฐานว่า จำนวนในของไข่คือไข่กระจายระหว่างเงื้อมมือของทดลองและกลุ่มควบคุมในการลดเปอร์เซ็นต์ ( % H ) คือ การคำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้ ( Kumar et al . 2555 ) :% H ¼ F ð HC −ฮาÞ = HCG 100ที่แสดงเป็นอัตราการฟักในกลุ่มควบคุม และฮาคืออัตราการฟักในสารรักษากลุ่มผลกระทบของเอล ในการรักษาไข่ผลของวิธีการที่เบียร์ปรสิตหญิงตั้งครรภ์ถูกขูดจากปลาที่ติดเชื้อและทันทีที่ปล่อยลงในแก้วบีกเกอร์ 100 ml . แต่ละบีกเกอร์มีพยาธิที่ถูกเก็บไว้โดยสำหรับวางไข่ . ถ้าไข่คว้าพบปรสิตที่ใช้ออกถูกลบออกจากบีกเกอร์ . เพื่อให้เข้าใจผลกระทบของสารในการพัฒนาตัวอ่อน ไข่ที่แตกต่างกันบ่มระยะเวลา 30 , 40 , 50 , 60 , 70 และ 80 นาทีนำแสงคงที่ 120 และ 250 ppm แต่สำหรับ10 นาทีหลังจากการเปิดรับแสง ไข่แก้วบีกเกอร์มีภายในอยู่ในพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำ ตู้ปลาไว้ด้วยการเติมอากาศที่เหมาะสม และการพัฒนาของไข่ที่พบเป็นประจำด้วยความช่วยเหลือของเลนส์แก้วบีกเกอร์หลังถูกนำออกมาจากพิพิธภัณฑ์ หลังจากที่แต่ละสังเกตในบีกเกอร์กลับไปพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำอาบน้ำต่อไปการบ่ม ชุดควบคุมที่ไม่เก็บรักษาภายใต้สภาพทางกายภาพและทางเคมีที่คล้ายคลึงกัน ชีวิตของไข่ในแง่ของการฟักออกถูกกำหนดผ่านนับจากเปลือกไข่ที่ว่างเปล่ากับตามยาวพันธุ์ฟัก