In this article, we have introduced

In this article, we have introduced a novel germ cell transplantation technique for use in fish. These experiments have combined the following biological characteristics of living organisms to build an effective method: (i) newly hatched fish embryos are immunologically immature; (ii) germ cells can seek out and migrate to gonads; (iii) fish spermatogonia differentiate into eggs as well as sperm; and (iv) although triploid fish are sterile, their somatic cells are normal. This transplantation procedure is both simple and rapid, enabling us to transplant into 30–50 newly hatched recipients in an hour.

Recently, successful transplantation of spermatogonia into the testes of adult recipients has been performed in tilapia (Lacerda et al. 2006, 2010, 2012), pejerrey (Majhi et al. 2009) and zebrafish (Nóbrega et al. 2010). If these techniques can become applicable to the production of donor-derived eggs, they would also be useful in the creation of surrogate broodstock and preservation of genetic resources in fish. Furthermore, the development of methods for the in vitro culture of spermatogonia in several fish species could improve the efficiency of germ cell transplantation because donor cells could be amplified in vitro prior to use (Hong et al. 2004; Shikina et al. 2008; Shikina and Yoshizaki 2010). Other improvements include our identification of a cell surface protein that is predominantly expressed in rainbow trout ASG (Nagasawa et al. 2010), which could enable the enrichment of ASG from fish testes using specific antibody-mediated flow cytometry or magnetic cell sorting. Finally, we recently developed a simple flow cytometry protocol to enrich ASG using light scattering properties (Kise et al. 2012). We predict that these research efforts will lead to rapid advances in novel developmental biotechnology for aquacultural and conservation applications.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในบทความนี้ เราได้แนะนำเทคนิคการปลูกนวนิยายเจิร์มเซลล์สำหรับใช้ในปลา การทดลองนี้ได้รวมลักษณะทางชีวภาพของสิ่งมีชีวิตในการสร้างวิธีที่มีประสิทธิภาพ: (i) เพิ่งฟักปลาตัวอ่อนจะสามารถอ่อน (ii) สามารถค้นหา และย้ายไปต่อมบ่งเพศ เซลล์จมูก (iii) ปลา spermatogonia แยกเป็นไข่เป็นสเปิร์ม และ (iv) ถึงแม้ว่าปลา triploid หมัน มาติกเซลล์เป็นปกติ ขั้นตอนการปลูกนี้จะทั้งง่าย และรวด เร็ว ทำให้เราเปลี่ยนเป็น 30 – 50 เพิ่งฟักผู้รับในชั่วโมงเมื่อเร็ว ๆ นี้ spermatogonia สำเร็จปลูกถ่ายลงในอัณฑะของผู้ใหญ่รับมีการดำเนินการในปลานิล (Lacerda et al. 2006, 2010, 2012), pejerrey (Majhi et al. 2009) และปลาม้าลาย (Nóbrega et al. 2010) ถ้าเทคนิคเหล่านี้สามารถใช้ได้กับการผลิตไข่ที่มีผู้บริจาคมา พวกเขายังจะมีประโยชน์ในการสร้างตัวแทนพ่อแม่พันธุ์และการอนุรักษ์ทรัพยากรพันธุกรรมในปลา นอกจากนี้ การพัฒนาวิธีการเพาะของ spermatogonia ในปลาหลายชนิดสามารถปรับปรุงประสิทธิภาพของการปลูกถ่ายเซลล์เชื้อโรคเนื่องจากอาจจะขยายผู้บริจาคเซลล์ในหลอดทดลองก่อนใช้ (Hong et al. 2004 Shikina et al. 2008 Shikina และ Yoshizaki 2010) การปรับปรุงอื่น ๆ รวมถึงการระบุของเราโปรตีนผิวเซลล์ที่ส่วนใหญ่แสดงในเรนโบว์เทราท์ ASG (หมอนวดน้ำมันเย็ด et al. 2010), ซึ่งอาจช่วยให้เพิ่มคุณค่าของ ASG จากอัณฑะปลาใช้กระแสสื่อแอนติบอดีเฉพาะตรวจวิเคราะห์เซลล์หรือเซลล์แม่เหล็กเรียงลำดับ ในที่สุด เราเพิ่งพัฒนาโพรโทคอการตรวจวิเคราะห์เซลล์ไหลง่ายแก่ ASG ใช้คุณสมบัติแสง scattering (คิเซะบีชพา et al. 2012) เราคาดว่า ความพยายามวิจัยเหล่านี้จะนำไปสู่ความก้าวหน้าอย่างรวดเร็วในด้านเทคโนโลยีชีวภาพพัฒนาการนวนิยายสำหรับ aquacultural และอนุรักษ์ประยุกต์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในบทความนี้เราได้นำเทคนิคการปลูกถ่ายเซลล์สืบพันธุ์นวนิยายสำหรับการใช้งานในปลา การทดลองนี้ได้รวมลักษณะทางชีวภาพต่อไปของสิ่งมีชีวิตที่จะสร้างวิธีที่มีประสิทธิภาพ: (i) ตัวอ่อนที่เพิ่งฟักปลาที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะภูมิคุ้มกัน; (ii) เซลล์สืบพันธุ์สามารถหาและโยกย้ายไปยังอวัยวะเพศ; (iii) spermatogonia ปลาแตกต่างในไข่เช่นเดียวกับสเปิร์ม; และ (iv) แม้ว่าปลา triploid เป็นหมัน, เซลล์ร่างกายของพวกเขาเป็นเรื่องปกติ ขั้นตอนการปลูกนี้มีทั้งง่ายและรวดเร็วทำให้เราสามารถปลูกลงใน 30-50 ผู้รับฟักออกมาใหม่ในอีกหนึ่งชั่วโมง.

เมื่อเร็ว ๆ นี้ประสบความสำเร็จของการปลูก spermatogonia เข้าไปในอัณฑะของผู้รับผู้ใหญ่ที่ได้รับการดำเนินการในปลานิล (Lacerda et al. 2006 2010 2012) pejerrey (จี้ et al. 2009) และ zebrafish (Nobrega et al. 2010) ถ้าเทคนิคเหล่านี้จะกลายเป็นที่ใช้บังคับกับการผลิตของไข่ที่ได้มาจากที่พวกเขายังจะเป็นประโยชน์ในการสร้างตัวแทนพ่อแม่พันธุ์และการอนุรักษ์ทรัพยากรพันธุกรรมในปลา นอกจากนี้การพัฒนาวิธีการสำหรับการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองของ spermatogonia ในปลาหลายชนิดสามารถปรับปรุงประสิทธิภาพของการปลูกถ่ายเซลล์สืบพันธุ์เพราะผู้บริจาคเซลล์อาจจะขยายในหลอดทดลองก่อนที่จะใช้ (Hong et al, 2004. Shikina et al, 2008. Shikina และ Yoshizaki 2010) การปรับปรุงอื่น ๆ ได้แก่ บัตรประจำตัวของโปรตีนเซลล์ผิวที่แสดงความเด่นในเรนโบว์เทราท์ ASG (Nagasawa et al. 2010) ซึ่งสามารถเปิดใช้งานการเพิ่มปริมาณของ ASG จากอัณฑะปลาไหลโดยใช้แอนติบอดีสื่อกลางที่เฉพาะเจาะจงหรือเซลล์ภูมิคุ้มกันแม่เหล็กเรียงลำดับของเรา สุดท้ายเราเพิ่งพัฒนาไหลง่ายภูมิคุ้มกันโปรโตคอลเพื่อเพิ่ม ASG โดยใช้คุณสมบัติการกระเจิงของแสง (Kise et al. 2012) เราคาดการณ์ว่าการวิจัยเหล่านี้จะนำไปสู่ความก้าวหน้าอย่างรวดเร็วในด้านเทคโนโลยีชีวภาพการพัฒนานวนิยายสำหรับการใช้งานเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำและการอนุรักษ์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในบทความนี้เราได้แนะนำเทคนิคใหม่สำหรับใช้ในการปลูกถ่ายเซลล์สืบพันธุ์ของปลา การทดลองเหล่านี้ได้รวมคุณลักษณะทางชีววิทยาของสิ่งมีชีวิต เพื่อสร้างวิธีที่มีประสิทธิภาพต่อไปนี้ : ( i ) ปลาตัวอ่อนฟักใหม่เป็น immunologically อ่อน ; ( 2 ) เซลล์สืบพันธุ์สามารถหา และโยกย้ายให้อยู่หมัด ( 3 ) spermatogonia ปลาแยกเป็นไข่รวมทั้งอสุจิ และ ( 4 ) แม้ว่าปลาทริพลอยด์ปลอดเชื้อ เซลล์ร่างกายของพวกเขาเป็นปกติ การขั้นตอนนี้มีทั้งง่ายและรวดเร็ว ช่วยให้เราสามารถเปลี่ยนเป็น 30 – 50 ฟักใหม่ผู้รับในอีกหนึ่งชั่วโมงเมื่อเร็วๆ นี้ ที่ประสบความสำเร็จในการปลูกถ่ายของ spermatogonia อัณฑะของผู้รับผู้ใหญ่ได้รับการปฏิบัติในปลานิล ( lacerda et al . 2006 , 2010 , 2012 ) , pejerrey ( majhi et al . 2009 ) และปลาม้าลาย ( N ó brega et al . 2010 ) ถ้าเทคนิคเหล่านี้สามารถกลายเป็นใช้ได้กับการผลิตของผู้บริจาคที่ได้ไข่ พวกเขาจะยังเป็นประโยชน์ในการสร้าง และรักษาทรัพยากรพันธุกรรมสำหรับเลี้ยงปลาใน นอกจากนี้ การพัฒนาวิธีการในเนื้อเยื่อของอัณฑะในปลาหลายสามารถปรับปรุงประสิทธิภาพของการปลูกถ่ายเซลล์เชื้อโรค เพราะเซลล์อาจจะขยายในหลอดทดลองก่อนใช้ ( Hong et al . 2004 ; shikina et al . 2008 ; และ shikina yoshizaki 2010 ) การปรับปรุงอื่น ๆรวมถึงการจำแนกของพื้นผิวเซลล์โปรตีนที่เด่นแสดงออกในปลาเทราท์ ASG ( นากาซาว่า et al . 2010 ) ซึ่งจะช่วยเสริม ASG จากปลาอัณฑะโดยใช้แอนติบอดีที่เฉพาะเพื่อการไหล ( หรือแม่เหล็กเซลล์เรียงลำดับ สุดท้ายเราเพิ่งพัฒนาง่ายไหล ( พิธีสารเพื่อเพิ่ม ASG ใช้แสงคุณสมบัติการกระเจิง ( คิ et al . 2012 ) เราเดาว่า ความพยายามในงานวิจัยนี้จะนำไปสู่ความก้าวหน้าอย่างรวดเร็วในการพัฒนาใหม่และการประยุกต์ใช้เทคโนโลยีชีวภาพ aquacultural อนุรักษ์