2.2. Experimental methodologyExperi

2.2. Experimental methodology
Experiments were designed and operated in dual mode viz., biomass
growth phase (BGP, mixotrophic) followed by salinity stress
induced lipid induction phase (LIP, autotrophic). In BGP, microalgae
were grown mixotrophically in culture-tub (working volume,
40 L; depth, 10 cm; surface area, 0.23 m2) and maintained as an
open-pond system. The culture-tub was fed with domestic sewage
(COD, 400 mg/l; TDS, 750 mg/l; nitrates, 115 mg/l) with additional
supplementation of carbon (500 mg glucose/l) and nutrients
(500 mg NaNO3/l; 500 mg Na2PO4/l) to accelerate algal biomass
growth by adjusting pH to 8.2. After 8 days of growth period, the
cultures were harvested by siphoning wastewater from the tub.
The dewatered culture was used as inoculum for the second phase
(LIP) of the experiments at where, three levels of sodium chloride
viz., 0.5, 1.0 and 2.0 g NaCl/l along with a control condition without
NaCl were operated to assess the influence of natural stress (NS).
Prior to start-up, 20 ml of microalgal biomass (2.14 g/l) was inoculated
to 160 ml of tap water and closed with cotton plugs. Before
inoculation, the pH was adjusted to 8.2 using 3 N NaOH. LIP-NS
condition was operated with tap water alone. Experiments were
carried out under 12 h (light):12 h (dark). In the light phase, flasks
were mounted on a temperature controlled shaking incubator
(120 rpm) in the presence of a fluorescent light (0.074 mol/m2 s).
In dark phase, the light source was turned off to facilitate dark conditions
while the rest of the operating conditions remained same.
After LIP, the resulting biomass was separated by centrifugation
(5000 rpm; 5 min at 28 C) and the algal biomass pellet was subjected
to solar drying followed by blending in to powder form.
The blended powder was further disrupted using sonicator
(20 kHz) for 30 min (Power Sonic 410) and the extracted lipid
was used for analysis. All the experiments were carried out in triplicates
and the results presented here represent an average of three
independent operations.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2 การทดลองวิธีทดลองออกแบบ และดำเนินการในสองโหมดชีวมวล viz.,ระยะเจริญเติบโต (ปอนด์ mixotrophic) ตาม ด้วยเค็มความเครียดไขมันอาจเหนี่ยวนำเฟส (LIP, autotrophic) ในปอนด์ microalgaeได้เติบโตในวัฒนธรรมอ่างอาบน้ำ (ทำเสียง mixotrophically40 L ความลึก 10 ซม พื้นที่ผิว 0.23 m2) และยังคงอยู่เป็นระบบบ่อเปิด วัฒนธรรมอ่างอาบน้ำไม่เลี้ยงกับสิ่งโสโครก(COD, 400 mg/l TDS, 750 mg/l nitrates, 115 mg/l) ด้วยเพิ่มเติมแห้งเสริมคาร์บอน (กลูโคส 500 mg/l) และสารอาหาร(NaNO3/l 500 มิลลิกรัม 500 มิลลิกรัม Na2PO4/l) เพื่อเร่งชีวมวล algalเจริญเติบโต โดยการปรับ pH 8.2 หลังจากวันที่ 8 ของรอบระยะเวลาการเจริญเติบโต การวัฒนธรรมมีการเก็บเกี่ยว โดยการยักย้ายถ่ายเทน้ำเสียจากอ่างน้ำวัฒนธรรม dewatered ใช้เป็น inoculum สำหรับระยะที่สอง(ปาก) ของการทดลองที่ตำแหน่ง สามระดับของโซเดียมคลอไรด์viz., 0.5, 1.0 และ 2.0 g NaCl/l พร้อมกับตัวควบคุมโดยไม่ต้องNaCl ได้ดำเนินการประเมินอิทธิพลของธรรมชาติความเครียด (NS)ก่อนที่จะเริ่มต้น ปริมาณ 20 ml ของชีวมวล microalgal (2.14 g/l) inoculatedถึง 160 ml ของน้ำประปา และปิด ด้วยผ้าฝ้ายปลั๊ก ก่อนที่จะinoculation, pH ถูกปรับปรุงให้ใช้ 3 N NaOH 8.2 ลิ NSเงื่อนไขถูกหยอด ด้วยน้ำประปาเพียงอย่างเดียว การทดลองได้ดำเนินการภายใต้ 12 h (ไฟ): 12 h (มืด) ในระยะอ่อน น้ำถูกติดตั้งบนที่อุณหภูมิควบคุมงก ๆ บ่มเพาะวิสาหกิจ(120 รอบต่อนาที) ในต่อหน้าของแสงเรืองแสง (0.074 โมล/m2 s)ในขั้นตอนมืด สว่างถูกปิดมืดเพื่อในขณะที่เหลือเงื่อนไขปฏิบัติยังคงเหมือนกันหลังจาก LIP ชีวมวลได้ถูกคั่น ด้วย centrifugation(5000 รอบต่อนาที 5 นาทีที่ 28 C) และเม็ดชีวมวล algal ถูกยัดเยียดพลังงานแสงอาทิตย์ให้แห้งตาม ด้วยผสมในแบบฟอร์มผงผงผสมต่อระหว่างสองวันใช้ sonicator(20 kHz) 30 นาที (พลังงานเสียง 410) และกระบวนการแยกใช้สำหรับการวิเคราะห์ ทดลองทั้งหมดได้ดำเนินการใน triplicatesและผลลัพธ์ที่แสดงที่นี่หมายถึงค่าเฉลี่ยของ 3การดำเนินการที่เป็นอิสระ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 วิธีการทดลอง
การทดลองได้รับการออกแบบและดำเนินการในสองโหมด ได้แก่ . ชีวมวล
ระยะการเจริญเติบโต (BGP, mixotrophic) ตามด้วยความเครียดความเค็ม
เหนี่ยวนำเฟสเหนี่ยวนำไขมัน (LIP, autotrophic) ใน BGP, สาหร่าย
ที่ปลูก mixotrophically ในวัฒนธรรมอ่างอาบน้ำ (ปริมาณการทำงาน
40 ลิตรลึก 10 ซมพื้นที่ผิว 0.23 m2) และการบำรุงรักษาเป็น
ระบบเปิดบ่อ วัฒนธรรมอ่างถูกเลี้ยงด้วยน้ำเสียชุมชน
(COD, 400 mg / l; TDS, 750 mg / l; ไนเตรต, 115 มิลลิกรัม / ลิตร) ด้วยการเติม
เสริมคาร์บอน (500 มิลลิกรัมกลูโคส / ลิตร) และสารอาหาร
(500 มิลลิกรัม NaNO3 / l; 500 มิลลิกรัม Na2PO4 / ลิตร) เพื่อเร่งชีวมวลสาหร่าย
เจริญเติบโตโดยการปรับค่า pH 8.2 หลังจาก 8 วันของระยะเวลาการเจริญเติบโตของ
วัฒนธรรมที่ได้รับการเก็บเกี่ยวโดยดูดน้ำเสียจากอ่าง.
วัฒนธรรม dewatered ถูกใช้เป็นหัวเชื้อสำหรับขั้นตอนที่สอง
(LIP) ของการทดลองที่ที่สามระดับของโซเดียมคลอไรด์
ได้แก่ ., 0.5, 1.0 และ 2.0 กรัมโซเดียมคลอไรด์ / ลิตรพร้อมกับสภาพที่ควบคุมได้โดยไม่ต้อง
เข้ารับการผ่าตัดโซเดียมคลอไรด์ในการประเมินอิทธิพลของความเครียดตามธรรมชาติ (NS).
ก่อนที่จะเริ่มต้นขึ้น 20 มิลลิลิตรของชีวมวลสาหร่าย (2.14 กรัม / ลิตร) ได้รับเชื้อ
ถึง 160 มิลลิลิตรของน้ำประปา และปิดด้วยปลั๊กฝ้าย ก่อนที่จะ
ฉีดวัคซีนค่าพีเอชได้รับการปรับเปลี่ยนให้ใช้ 8.2 3 N NaOH LIP-NS
สภาพได้รับการดำเนินการกับน้ำประปาได้เพียงอย่างเดียว การทดลอง
ดำเนินการต่ำกว่า 12 ชั่วโมง (แสง): 12 ชั่วโมง (เข้ม) ในช่วงแสงขวด
ถูกติดตั้งอยู่บนการควบคุมอุณหภูมิสั่นศูนย์บ่มเพาะ
(120 รอบต่อนาที) ในที่ที่มีแสงเรืองแสง (0.074 mol / m2 s).
ในขั้นตอนมืดแหล่งกำเนิดแสงที่ถูกปิดเพื่ออำนวยความสะดวกที่มืด
ในขณะที่ส่วนที่เหลือ . ของสภาพการดำเนินงานยังคงเหมือนเดิม
หลังจาก LIP ชีวมวลที่เกิดขึ้นถูกแยกออกโดยการหมุนเหวี่ยง
(5000 รอบต่อนาที;? 5 นาทีวันที่ 28 C) และเม็ดชีวมวลสาหร่ายยู่
. การอบแห้งพลังงานแสงอาทิตย์ตามด้วยการผสมในรูปแบบผง
ผสมผงเป็น เพิ่มเติมกระจัดกระจายใช้ Sonicator
(20 kHz) เป็นเวลา 30 นาที (พาวเวอร์โซนิค 410) และไขมันที่สกัดได้
ถูกนำมาใช้ในการวิเคราะห์ การทดสอบทั้งหมดได้ดำเนินการใน triplicates
และผลที่นำเสนอนี้เป็นตัวแทนของค่าเฉลี่ยของสาม
การดำเนินงานที่เป็นอิสระ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . การทดลองวิธีการ
ทดลองออกแบบและดำเนินการใน ได้แก่ โหมด dual , ระยะการเจริญเติบโตมวลชีวภาพ
( BGP , mixotrophic ) ตามด้วยการเหนี่ยวนำของความเค็มความเครียด
เฟส ( ริมฝีปากโตโทรฟ ) ใน BGP , สาหร่าย
ปลูก mixotrophically ในอ่างเพาะ ( การทำงานปริมาตร
40 ล. ลึก 10 ซม. พื้นที่ผิว , 0.23 m2 ) และยังคงเป็น
ระบบบ่อเปิดวัฒนธรรมกุซซี่ถูกเลี้ยงด้วย
สิ่งปฏิกูลจากชุมชน ( ซีโอดี 400 มก. / ล. , TDS , 750 มก. / ล. ไนเตรต , 115 มิลลิกรัม / ลิตร ) ด้วยการเสริมเพิ่มเติม
ของคาร์บอน ( 500 mg glucose / L ) และรัง
( 500 มก. NaNO3 500 มก. / ล. na2po4 / L ) เพื่อเร่งการเจริญเติบโตมวลชีวภาพ
สาหร่าย โดยการปรับ pH 8.2 . หลังจาก 8 วัน ระยะเวลาการเจริญเติบโต
วัฒนธรรมถูกเก็บเกี่ยวโดยดูดน้ำจากอ่าง
การ dewatered วัฒนธรรมใช้เป็นเชื้อสำหรับ
ระยะที่สอง ( ริมฝีปาก ) การทดลองที่ 3 ระดับของโซเดียม คลอไรด์
คือ 0.5 , 1.0 และ 2.0 กรัมต่อลิตร เกลือแกงพร้อมกับการควบคุมสภาพได้โดยไม่ต้องดำเนินการประเมิน
ที่มีอิทธิพลของความเครียดธรรมชาติ ( NS )
ก่อนที่จะเริ่ม 20 ml มวลชีวภาพของสาหร่าย ( 2.14 กรัม / ลิตร ) เป็นเชื้อ
160 มิลลิลิตรของน้ำและปิดปลั๊กฝ้ายก่อน
เชื้อปรับ pH 8.2 ใช้ 1 N NaOH lip-ns
เงื่อนไข ดำเนินการด้วยน้ำเพียงอย่างเดียว การทดลองดำเนินการภายใต้ 12
H ( แสง ) : 12 H ( มืด ) ในเฟสไฟติดบนขวด

( เขย่าควบคุมอุณหภูมิตู้ฟักไข่ 120 รอบต่อนาที ) ในการแสดงตนของแสงที่เรืองแสง ( 0.074 mol / M2 s )
ในความมืด เฟสแหล่งกำเนิดแสงเป็นปิดเพื่อความสะดวกในที่มืด
ในขณะที่ส่วนที่เหลือของเงื่อนไขยังคงเดียวกัน
หลังจากที่ริมฝีปาก ซึ่งแยกจากชีวมวล 3
( 5000 รอบต่อนาที 5 นาทีที่ 28  C ) และเม็ดชีวมวลสาหร่ายอบแห้งแสงอาทิตย์ภายใต้
ตามด้วยการผสมในผง
แบบฟอร์ม แป้งฝุ่นผสมเพิ่มเติมต้องใช้เครื่องเขย่าแบบเสียง