DISCUSSIONTo date it is not possibl

DISCUSSION
To date it is not possible to produce the valuable Monascus pigments comprised of only one single color component (e.g.,
yellow, orange, red) by fermentation, even though this is desirable. However, the data presented in this paper show that a careful metabolism regulation is a valid approach to produce Monascus pigments mixtures comprised of one predominant color component. In addition, Monascus Pigments comprised of dominant components presenting different color characteristics can be obtained through the selection of pH and nitrogen source. Fermentations performed at low pH (pH 2.5 and 4.0) provided intracellular extracts comprised mainly of orange pigments independently of the nitrogen source employed (Figs. 1 and 2). We can conclude that pigments metabolism at low pH is independent of the type of nitrogen source. It has been widely accepted that orange pigments are the first biosynthetic product and the other pigments derive from the orange ones (3e5). Our data agree that the intracellular and extracellular pigments composition and concentration largely depend on the activity of orange pigments that are transformed into red pigments, yellow pigments, red pigments derivatives or other kind of pigments under some specific fermentation conditions. When the extracellular pH was maintained at low values such as pH 2.5 and 4.0, the amount of intracellular red pigments produced by the reaction between orange pigments and ammonium was limited. As a result, even when ammoniumwas utilized as nitrogen source, the intracellular orange pigments were the dominant component (Figs.1 and 2). In addition, the secretion of orange pigments into the broth, the reaction with an eNH2 unit of amino acids and the transformation of orange pigments
into yellow pigments were also suppressed. Therefore, extracellular red pigments derivatives were not produced at low pH, despite the presence of extracellular organic nitrogen sources (Figs. 1 and 2). In other words, when the fermentation was performedat low pH with any of the three nitrogen sources, the activityof the intracellular orange pigments were suppressed to such an extent that the orange pigments accumulated while other pigments concentration did not change significantly. Consequently the intracellular extracts contained mainly orange pigments and presented
an absorbance with a maximum at approximately 471 nm. However, a change of pH to levels closer to neutral modify the
extent of transformation of orange pigments into red ones and the secretion of orange pigments to the broth. In fact at pH 6.5, orange pigments were not detected when the fermentationwas performed with ammonium or peptone (Fig. 4B, lanes 7 and 8, e and f). The formation of red pigments by amination of orange pigments through reaction with a NH3 unit may cause a competition with the synthesis of glutamine, which is then utilized to synthesize other amino acids by transamination. As a consequence, the transformation of orange pigments into red pigments also depends on the availability of intracellular ammonia. It has also been reported that the permeability of uncharged amines is pH-dependent and it is very high at neutral pH (35). These mechanisms may be responsible for the significant production of red pigments when ammonium was the nitrogen source at pH 6.5 (Fig. 4A, line 7, a and b) and for the absence of red pigments in the fermentation performed with peptone at the same pH (Fig. 4A, lane 9, a and b). The same mechanisms may be also responsible for the higher production of red pigments observed at low pH when ammonium rather than peptone and nitrate was the nitrogen sources (Fig. 4A, lines 1e6, a and b). This hypothesis was further confirmed by the disappearance of orange pigments and the increase of intracellular red pigments (Fig. 6B, lines 2 and 6) or extracellular red pigments
derivatives (Fig. 5C2) observed after pH change in the two-stage fermentation with ammonium and peptone as nitrogen sources. The secretion of orange pigments to the broth and the reaction with a eNH2 unit of amino acids require a pH close to neutral and the presence of amino acids. As a consequence of the unsuitable pH, no extracellular red pigments derivatives were formed whenpeptone was utilized as a nitrogen source at low pH (Fig. 1C3 and 2C3), while as a result of the lower concentration of amino acids, ammonium provided much lower extracellular red pigments than
peptone at pH 6.5 (Fig. 3A2 and B2). For the same reasons in twostage fermentations, after the change of pH, peptone provided a larger amount of extracellular red pigments derivatives than nitrate and ammonium (Fig. 5A2, B2 and C2).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สนทนาถึงมันจะไม่สามารถผลิตเม็ดสี Monascus มีคุณค่าประกอบด้วยคอมโพเนนต์เดียวสีเดียว (เช่นyellow, orange, red) by fermentation, even though this is desirable. However, the data presented in this paper show that a careful metabolism regulation is a valid approach to produce Monascus pigments mixtures comprised of one predominant color component. In addition, Monascus Pigments comprised of dominant components presenting different color characteristics can be obtained through the selection of pH and nitrogen source. Fermentations performed at low pH (pH 2.5 and 4.0) provided intracellular extracts comprised mainly of orange pigments independently of the nitrogen source employed (Figs. 1 and 2). We can conclude that pigments metabolism at low pH is independent of the type of nitrogen source. It has been widely accepted that orange pigments are the first biosynthetic product and the other pigments derive from the orange ones (3e5). Our data agree that the intracellular and extracellular pigments composition and concentration largely depend on the activity of orange pigments that are transformed into red pigments, yellow pigments, red pigments derivatives or other kind of pigments under some specific fermentation conditions. When the extracellular pH was maintained at low values such as pH 2.5 and 4.0, the amount of intracellular red pigments produced by the reaction between orange pigments and ammonium was limited. As a result, even when ammoniumwas utilized as nitrogen source, the intracellular orange pigments were the dominant component (Figs.1 and 2). In addition, the secretion of orange pigments into the broth, the reaction with an eNH2 unit of amino acids and the transformation of orange pigmentsเป็นเม็ดสีเหลืองก็ยังไว้ก่อน ดังนั้น อนุพันธ์ extracellular สีแดงไม่ผลิตที่ pH ต่ำ แม้มีสถานะของแหล่งไนโตรเจนอินทรีย์ extracellular (Figs. 1 และ 2) ในคำอื่น ๆ เมื่อหมักมีค่า pH ต่ำสุดที่ performedat กับแหล่งไนโตรเจน 3, activityof สีส้ม intracellular ได้ระงับไปเช่นขนาดที่สะสมเม็ดสีส้มในขณะที่อื่น ๆ สีเข้มข้นได้ไม่เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ ดังนั้นสารสกัดจาก intracellular อยู่สีส้มส่วนใหญ่ และนำเสนอabsorbance ที่มากที่สุดที่ประมาณ 471 nm อย่างไรก็ตาม การเปลี่ยนแปลงของ pH ระดับใกล้กลางมีการปรับเปลี่ยนการขอบเขตของการเปลี่ยนแปลงของสีส้มเป็นคนสีแดงและหลั่งของสีส้มไปซุป ในความเป็นจริงที่ pH 6.5 สีส้มไม่ตรวจพบเมื่อทำการ fermentationwas กับแอมโมเนียหรือ peptone (Fig. 4B ถนนหนทางที่ 7 และ 8, e และ f) การก่อตัวของเม็ดสีแดงโดย amination สีส้มผ่านปฏิกิริยากับ NH3 หน่วยอาจทำให้เกิดการแข่งขันกับสังเคราะห์ glutamine ที่แล้วต้องใช้สังเคราะห์กรดอะมิโนอื่น ๆ โดย transamination ผล การเปลี่ยนแปลงของสีส้มเป็นสีแดงยังขึ้นอยู่กับความพร้อมของแอมโมเนีย intracellular มันยังได้รายงานว่า permeability ของ uncharged amines เป็นขึ้นอยู่กับค่า pH และความสูงมากที่ค่า pH เป็นกลาง (35) กลไกเหล่านี้อาจจะรับผิดชอบสำหรับการผลิตที่สำคัญของสีแดงเมื่อแอมโมเนียเป็นแหล่งไนโตรเจนที่ pH 6.5 (Fig. 4A สาย 7 ตัว และ b) และ สำหรับการขาดงานของสีแดงในการหมักที่ทำ ด้วย peptone ที่ pH เดียว (Fig. 4A เลน 9 และ b) ได้ กลไกเดียวกันอาจจะยังรับผิดชอบสำหรับการผลิตเม็ดสีแดงที่พบที่ pH ต่ำเมื่อแอมโมเนียมากกว่า peptone และใช้ไนเตรทเป็นแหล่งไนโตรเจนสูง (Fig. 4A, 1e6 บรรทัด ตัว และ b) ได้ สมมติฐานนี้ถูกยืนยัน โดยการสูญหายของสีส้มและสีแดง intracellular (Fig. 6B บรรทัดที่ 2 และ 6) หรือเม็ดสีแดง extracellular เพิ่มเพิ่มเติมตราสารอนุพันธ์ (Fig. 5C 2) สังเกตหลังจากที่มีการเปลี่ยนแปลง pH ในหมักสองกับแอมโมเนียและ peptone เป็นแหล่งไนโตรเจน หลั่งของสีส้มในซุปและปฏิกิริยากับหน่วย eNH2 ของกรดอะมิโนจำเป็นต้องมีค่า pH เป็นกลางและสถานะของกรดอะมิโน เป็นลำดับ pH ไม่เหมาะสม อนุพันธ์ extracellular สีแดงไม่ได้ก่อตั้ง whenpeptone ถูกใช้เป็นแหล่งไนโตรเจนที่ต่ำ pH (Fig. 1C 3 และ 2 C 3), ในขณะที่เป็นผลมาจากความเข้มข้นต่ำของกรดอะมิโน แอมโมเนียให้เม็ดสีแดง extracellular มากต่ำกว่าpeptone ที่ pH 6.5 (Fig. 3A2 และ B2) เหตุผลเดียวในการหมักแหนม twostage หลังจากการเปลี่ยนแปลงของ pH, peptone มีจำนวนมากของ extracellular แดงสีอนุพันธ์ไนเตรตและแอมโมเนีย (Fig. 5A2, B2 และ C2)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การอภิปราย
วันที่มันเป็นไปไม่ได้ที่จะผลิตเชื้อราที่มีสีเดียว สี ประกอบด้วย ส่วนประกอบ ( เช่น
สีเหลือง , สีส้ม , สีแดง ) โดยการหมัก ถึงแม้จะพึงปรารถนา อย่างไรก็ตาม ข้อมูลที่นำเสนอในบทความนี้ว่า การควบคุมเมแทบอลิซึมให้ระมัดระวังเป็นวิธีการที่ถูกต้องในการผลิตเชื้อราสีผสมประกอบด้วยหนึ่งโดดสีส่วนประกอบนอกจากนี้ เชื้อราสีประกอบด้วยเด่นส่วนประกอบเสนอลักษณะสีต่าง ๆได้ผ่านการคัดเลือก และแหล่งไนโตรเจน fermentations แสดงที่ pH ต่ำ ( pH 2.5 และ 4.0 ) ให้สารสกัดเซลล์ประกอบด้วยส่วนใหญ่ของสีส้มเป็นอิสระจากแหล่งไนโตรเจนที่ใช้ ( Figs 1 และ 2 )เราสามารถสรุปได้ว่าสีเมแทบอลิซึมที่ pH ต่ำเป็นอิสระจากชนิดของแหล่งไนโตรเจน มันได้รับการยอมรับอย่างกว้างขวาง ว่า สี ส้ม เป็นครั้งแรก การผลิต และสีอื่น ๆ ได้มาจากคนสีส้ม ( 3e5 )เรายอมรับว่า ข้อมูลและส่วนประกอบภายในเซลล์ที่มีสีและความเข้มข้นส่วนใหญ่ขึ้นอยู่กับกิจกรรมของส้มสีที่เปลี่ยนเป็นสี แดง สี เหลือง แดง สี อนุพันธ์ หรือชนิดอื่น ๆของเม็ดสีภายใต้เงื่อนไขบางอย่างโดยเฉพาะ เมื่อ pH เหมาะสมไว้ที่ค่าต่ำ เช่น pH 2.5 และ 4.0ปริมาณของเม็ดสีในเซลล์สีแดงที่ผลิตโดยปฏิกิริยาระหว่างสี ส้ม และน้ำมีจำกัด ผลคือ เมื่อ ammoniumwas ใช้เป็นแหล่งไนโตรเจน , สีส้มภายในเซลล์เป็นองค์ประกอบเด่น ( มะเดื่อ 1 และ 2 ) นอกจากนี้การหลั่งสารสีส้มลงในน้ำซุปปฏิกิริยากับหน่วย enh2 กรดอะมิโนและเปลี่ยนสีเป็นสีเหลืองส้ม
ถูกปราบปราม ดังนั้น , ที่มีสีแดงและไม่ผลิตที่ pH ต่ำ แม้จะมีการแสดงตนของและอินทรีย์ไนโตรเจน ( Figs 1 และ 2 ) ในคำอื่น ๆเมื่อหมักได้ performedat ต่ำ pH กับใด ๆของไนโตรเจน 3 แหล่งการ activityof สีส้มภายในเซลล์ถูกระงับไปเช่นขอบเขตที่ส้มสีอื่น ๆสีความเข้มข้นสะสมในขณะที่ไม่ได้เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ สารสกัดจากเซลล์เม็ดสีส่วนใหญ่จึงมีสีส้มและนำเสนอ
มีการดูดกลืนแสงที่มีสูงสุดที่ประมาณ 471 nm . อย่างไรก็ตาม การเปลี่ยนแปลงของ pH ในระดับที่ใกล้ชิด เพื่อปรับเปลี่ยน
เป็นกลางขอบเขตของการเปลี่ยนแปลงสีสีส้มเป็นสีแดง และหลั่งสารสี ส้ม น้ำซุป ในความเป็นจริงที่ pH 6.5 , สีส้มไม่พบเมื่อ fermentationwas ใช้แอมโมเนียหรือเปปโตน ( ภาพที่ 4B เส้นทาง 7 และ 8 , E และ F )การก่อตัวของเม็ดสีสีแดงโดยอาหารทิพย์สีส้มผ่านปฏิกิริยากับ nh3 หน่วยอาจจะทำให้เกิดการแข่งขันกับการสังเคราะห์กรดซึ่งเป็นที่ใช้ในการสังเคราะห์กรดอะมิโนอื่น ๆโดยทรานแอมิเนชัน . อย่างไรก็ดี การเปลี่ยนแปลงสี ส้ม เป็นสีแดงยังขึ้นอยู่กับความพร้อมของแอมโมเนียภายในเซลล์ .มีรายงานว่า การซึมผ่านของไม่มีประจุไฟฟ้าเอมีนเป็น pH ขึ้น และก็มีสูงมากที่ pH เป็นกลาง ( 35 ) กลไกเหล่านี้อาจจะรับผิดชอบในการผลิต ที่สำคัญสีแดงเมื่อแอมโมเนียเป็นแหล่งไนโตรเจนที่พีเอช 6.5 ( ภาพที่ 4 เส้น 7 , A และ B ) และไม่มีสีแดงในการหมักตามลำดับที่ pH เดียวกัน ( รูปที่ 4 ซอย 9A และ B ) กลไกเดียวกันอาจจะยังรับผิดชอบสำหรับการผลิตที่สูงขึ้นของสีแดงสีเบสต่ำ เมื่อแอมโมเนียและไนเตรทมากกว่าเปปโตนเป็นแหล่งไนโตรเจน ( รูปที่ 4 , สาย 1e6 , A และ B ) สมมติฐานนี้ยังได้รับการยืนยันโดยการหายตัวไปของเม็ดสีส้มและเพิ่มเซลล์ของสีแดงสี ( เส้นภาพบน 2 และ 6 ) พบว่า สารสีแดง
หรืออนุพันธ์ ( รูปที่ 5c2 ) สังเกตหลังจากด่างในการหมักแบบสองขั้นตอนด้วยแอมโมเนียมและเปปโตนเป็นแหล่งไนโตรเจน การหลั่งสารสี ส้ม น้ำซุปและปฏิกิริยากับหน่วย enh2 กรดอะมิโนมี pH ใกล้กับเป็นกลางและการปรากฏตัวของกรดอะมิโน ผลที่ตามมาของ pH ไม่เหมาะสมไม่พบว่ามี whenpeptone อนุพันธ์สารสีแดงใช้เป็นแหล่งไนโตรเจนที่พีเอชต่ำ ( ภาพที่ 1c3 และตรวจสอบ โดยเป็นผลจากการลดความเข้มข้นของกรดอะมิโน แอมโมเนียให้ต่ำลงและสารสีแดงกว่า
เปปโตนที่ pH 6.5 ( รูปที่ 3a2 และ B2 ) ด้วยเหตุผลเดียวกันใน 2 ขั้นตอน fermentations หลังการเปลี่ยนแปลงของค่าพีเอชเปปโตนให้ปริมาณสารสีแดงขนาดใหญ่ที่มีอนุพันธ์กว่าไนเตรทและแอมโมเนีย ( รูปที่ 5a2 , B2 และ C2 )