In the laboratory, the soils were t

In the laboratory, the soils were thoroughly mixed, sieved through a 2 mm sieve to separate stones, and aliquots (about 2/3) of each soil type were autoclaved for 3 h at 121 °C at 2 bars of pressure. The mixture containing the carrier material (peat, sand, and perlite) was steam-sterilized by the producer.
2.3. Plant material and growth conditions
The plants were grown in a greenhouse in plastic rose pots with raised bottoms and a volume of 4.2 dm3. The pots were placed on saucers (22 cm diameter) and filled with the same amount of each soil type (ca. 4.0 kg). To avoid possible interaction between ions during radiocesium transport by AM fungi (Gyuricza et al., 2008), no mineral fertilizers such as potassium (K) or phosphorus (P) were applied to the soil. The crops used in the pot experiment were cucumber (Cucumis sativus L. cultivar ‘Melen F1’), perennial ryegrass (Lolium multiflorum, variety ‘Corvus’), sunflower (Helianthus spp.), and quinoa (Chenopodium quinoa Willd), and were supplied by Weibulls Horto AB, Sweden. There were 40 pots (5 × AM+, 5 × AM− = 10 × 4 crops) for each soil type, which gave a total 120 pots (40 × 3 soil types). Before seeding, inoculum material containing live arbuscular mycorrhizal fungi (5–10 AMF propagules/g inoculum) was applied to the soil (treatment AM+) in the proportion 1 part inoculum material to 100 parts soil, according to the manufacturer's advice. Inoculum material was then mixed with the upper 2–3 cm of soil and the pots were supplied with distilled water as required. Plants were randomly seeded by hand within the pot area (ryegrass and quinoa 10 per pot; cucumber and sunflower 2 seeds per pot), and were weeded and watered as required.
The climatic conditions in the greenhouse were a 16 h daytime and 8 h nighttime cycle; a light intensity (photosynthetically active radiation) of 110–140 μmol m−2 s−1; daytime temperature of 20 °C and nighttime temperature of 15 °C; and, relative air humidity of 70%. To compensate for an increase in daylight, the light intensity was reduced to between 70 and 110 μmol m−2 s−1 after about 11 weeks. The plants were grown for 16–20 weeks, depending on the crop: cucumber fruits were ready for harvest after 8–9 weeks from planting; ryegrass after first (1st) and second (2nd) cut; and sunflower and quinoa after ripening of the seeds. From different treatments, the same crop was harvested at the same time in both treatments. After harvest, plants were air-dried to constant weight and aboveground parts divided in seeds and remaining parts. Seeds of sunflower and quinoa were sieved with a 4 and 2 mm sieve, and the remaining parts were milled. Both seeds and remaining parts were analysed for 137Cs activity.
2.4. Quantification of AM fungal colonization
For AM fungi colonization, approximately 25–50 g fresh weight of root was randomly dug from selected plants (soils) and stored in a freezer at −40 °C before staining. Then, these samples were immersed in 20% potassium hydroxide for 1 d, washed in tap water, and acidified with 1% hydrochloric acid. After this, the roots were stained with 0.05% trypan blue in a 14:1:1 lactic acid:glycerol:water solution for one day, and then rinsed in a de-staining solution (14:1:1 lactic acid:glycerol:water) until no visual blue staining remained. For examination, the roots were spread onto glass slides and the appearance of fungal infections was visually recorded under a binocular microscope. The rate of mycorrhizal infection frequency in the roots was graded as 0 = no infection; 1 = sign of infection; 2 = moderate infection; and, 3 = abundant infection.
2.5. Radiometry and data treatment
Soil and whole plant samples were air-dried prior to analyses and plants were cut into

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในห้องปฏิบัติการดินถูกผสมอย่างทั่วถึงร่อนผ่านตะแกรง 2 มม. จะแยกก้อนหินและ aliquots (ประมาณ 2/3) ของแต่ละชนิดของดินถูกเบาเป็นเวลา 3 ชั่วโมงที่ 121 องศาเซลเซียสที่ 2 บาร์ของความดัน ที่มีส่วนผสมของวัสดุที่ผู้ให้บริการ (พีท, ทรายและ perlite) เป็นไอน้ำฆ่าเชื้อโดยผู้ผลิต.
2.3 พืชและการเจริญเติบโตเงื่อนไข
เป็นพันธุ์ไม้ที่ปลูกในเรือนกระจกในกระถางพลาสติกเพิ่มขึ้นด้วยพื้นยกขึ้นและปริมาณ 4.2 dm3 หม้อถูกวางไว้บนจานรอง (22 ซม. เส้นผ่าศูนย์กลาง) และเต็มไปด้วยจำนวนเดียวกันของแต่ละชนิดของดิน (แคลิฟอร์เนียได้ 4.0 กิโลกรัม) เพื่อหลีกเลี่ยงการมีปฏิสัมพันธ์ที่เป็นไปได้ระหว่างไอออนในระหว่างการขนส่งโดย radiocesium am เชื้อรา (gyuricza และคณะ. 2008)ไม่มีปุ๋ยแร่ธาตุเช่นโพแทสเซียม (k) หรือฟอสฟอรัส (P) มีนำไปใช้กับดิน พืชที่ใช้ในการทดลองหม้อเป็นแตงกวา (cucumis หญ้าฝรั่นลิตร. พันธุ์ 'Melen f1'), ryegrass ยืนต้น (lolium multiflorum หลากหลาย 'corvus'), ดอกทานตะวัน (Helianthus spp.) และ quinoa (Chenopodium quinoa เทพา) และเป็น จัดทำโดย weibulls Horto ข, สวีเดน มี 40 หม้อ (5 × น. ได้5 × am-= 10 × 4 พืช) กับชนิดของดินแต่ละที่ให้รวม 120 หม้อ (40 × 3 ประเภทดิน) ก่อนที่จะก่อตัวเป็นวัสดุที่มีเชื้อสดเชื้อรา arbuscular mycorrhizal (5-10 AMF propagules / g เชื้อ) ถูกนำไปใช้ดิน (การรักษา am) ในวัสดุเชื้อส่วนสัดส่วน 1 ถึงดิน 100 ส่วนตามคำแนะนำของผู้ผลิตวัสดุที่ได้รับการผสมเชื้อแล้วกับบน 2-3 ซม. ของดินและกระถางที่ให้มาพร้อมกับน้ำกลั่นตามที่ต้องการ พืชเมล็ดสุ่มด้วยมือภายในบริเวณหม้อ (ryegrass และ quinoa 10 ต่อหม้อ; แตงกวาและดอกทานตะวันที่ 2 เมล็ดต่อหม้อ) และได้รับการกำจัดวัชพืชและรดน้ำตามที่ต้องการ
สภาพภูมิอากาศในเรือนกระจกที่เป็นเวลากลางวัน 16 ชั่วโมงและ 8 ชั่วโมง. กลางคืนวงจรความเข้มของแสง (รังสีที่ใช้งานสังเคราะห์) ของ 110-140 ไมโครโมลเมตร-2 s-1; อุณหภูมิกลางวัน 20 องศาเซลเซียสและอุณหภูมิกลางคืน 15 องศาเซลเซียสและความชื้นในอากาศญาติของ 70% เพื่อชดเชยการเพิ่มขึ้นในเวลากลางวัน, ความเข้มของแสงที่เหลืออยู่ระหว่าง 70 และ 110 ไมโครโมลเมตร-2 s-1 หลังจากนั้นประมาณ 11 สัปดาห์ เป็นพันธุ์ไม้ที่ปลูก 16-20 สัปดาห์ขึ้นอยู่กับพืช:ผลไม้แตงกวาก็พร้อมสำหรับการเก็บเกี่ยวหลังจาก 8-9 สัปดาห์นับจากการปลูก; ryegrass หลังแรก (1) และครั้งที่สอง (2nd) ตัดและดอกทานตะวันและ quinoa หลังจากการสุกของเมล็ด จากการรักษาที่แตกต่างกันของพืชเดียวกันเก็บเกี่ยวในเวลาเดียวกันในการรักษาทั้ง หลังการเก็บเกี่ยวพืชถูกอากาศแห้งให้น้ำหนักคงที่และส่วนเหนือพื้นดินแบ่งออกเป็นเมล็ดและชิ้นส่วนที่เหลือเมล็ดของดอกทานตะวันและ quinoa ถูกร่อนด้วย 4 และ 2 มม. ตะแกรงและส่วนที่เหลือได้รับการขัดสี ทั้งเมล็ดและส่วนที่เหลือถูกนำมาวิเคราะห์เพื่อ 137cs กิจกรรม.
2.4 ปริมาณของการล่าอาณานิคมของเชื้อรา am
เพื่อ am เชื้อราอาณานิคมประมาณ 25-50 กรัมน้ำหนักสดของรากถูกขุดสุ่มเลือกจากพืช (ดิน) และเก็บไว้ในช่องแช่แข็งที่ -40 องศาเซลเซียสก่อนที่จะย้อมสี แล้วตัวอย่างเหล่านี้ถูกแช่อยู่ใน 20% โพแทสเซียมไฮดรอกไซเป็นเวลา 1 วันล้างในน้ำประปาและกรดกรดไฮโดรคลอ 1% หลังจากนี้รากถูกย้อมด้วยสีฟ้า 0.05% ทริแพนใน 14:01:01 กรดแลคติก: กลีเซอรอล: การแก้ปัญหาน้ำวันหนึ่งและล้างแล้วในการแก้ปัญหาที่ de-ย้อมสี (14:01:01 กรดแลคติก: กลีเซอรอล: น้ำ) จนกระทั่งไม่มีการย้อมสีฟ้ายังคงมองเห็น สำหรับการตรวจสอบ,รากกระจายลงบนสไลด์แก้วและลักษณะของการติดเชื้อราที่ถูกบันทึกไว้สายตาภายใต้กล้องจุลทรรศน์กล้องสองตา อัตราความถี่การติดเชื้อในราก mycorrhizal ได้คะแนนเป็น 0 = การติดเชื้อไม่มี 1 = สัญญาณของการติดเชื้อ 2 การติดเชื้อปานกลาง. และ 3 = การติดเชื้อมากมาย
2.5 radiometry และการรักษาข้อมูล
ดินและพืชทั้งตัวอย่างถูกอากาศแห้งก่อนที่จะมีการวิเคราะห์และพืชที่ถูกตัดเป็น <2 มิลลิเมตรชิ้นผลไม้แตงกวาวิเคราะห์บนพื้นฐานน้ำหนักสด นอกเหนือไปจากการเก็บเกี่ยวส่วนเหนือพื้นดินรากถูกขุดออกมาในการพิจารณาการกระจาย radiocesium ภายในโรงงาน รากถูกล้างในน้ำประปาอากาศแห้งและวิเคราะห์ 137cs กิจกรรมแกมมา spectrometry ด้วยเครื่องตรวจจับ hpge คู่กับระบบวิเคราะห์แบบหลายช่องสัญญาณถูกใช้ในการกำหนดกิจกรรม 137cs ในดินและพืช ระบบได้รับการสอบเทียบกับแหล่งที่มาของมาตรฐานที่ใช้ในการศึกษาเปรียบเทียบระหว่างและในที่เหมาะสม (60 และ 35 มล. ) ภาชนะมาตรฐานผลลัพธ์ทั้งหมดที่มีการสลายการแก้ไขวันที่ของการสุ่มตัวอย่าง (เก็บเกี่ยว) และอัตราส่วนความเข้มข้น 137cs (CR) จะถูกคำนวณเป็น 137cs bq น้ำหนักกิโลกรัม 1dry (DW) ในโรงงานหาร 137cs bq กิโลกรัม 1DW ในดิน ข้อมูลที่ถูกวิเคราะห์โดย 2 ตัวอย่าง t-test ด้วย Minitab (© 2010 Minitab inc.) ซอฟต์แวร์เพื่อประเมินความแตกต่างในกิจกรรม 137cs ระหว่างการรักษาที่ระดับ 0.05.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในห้องปฏิบัติการ ในดินเนื้อปูนได้อย่างละเอียด ผสม sieved ผ่านตะแกรง 2 มม.เพื่อแยกหิน และ aliquots (ประมาณ 2/3) ของดินแต่ละชนิดถูก autoclaved สำหรับ h 3 ที่ 121 ° C ที่ความดัน 2 แท่ง ส่วนผสมที่ประกอบด้วยการขนส่งวัสดุ (พรุ ทราย และ perlite) ถูกอบ sterilized โดยโปรดิวเซอร์
2.3 สภาพวัสดุและเจริญเติบโตของพืช
พืชที่ปลูกในเรือนกระจกในกระถางกุหลาบพลาสติกกับพื้นยกขึ้นและมีปริมาณ 4.2 dm3 กระถางที่วางบน saucers (22 ซม.เส้นผ่าศูนย์กลาง) และถูกกรอกข้อมูล ด้วยยอดเงินเดียวกันของดินแต่ละชนิด (ca. 4.0 กิโลกรัม) เพื่อหลีกเลี่ยงการโต้ตอบได้ระหว่างประจุระหว่างขนส่ง radiocesium โดยเชื้อรา AM (Gyuricza et al., 2008), ปุ๋ยไม่มีแร่ธาตุเช่นโพแทสเซียม (K) หรือฟอสฟอรัส (P) ถูกนำไปใช้กับดิน พืชที่ใช้ในทดลองหม้อมีแตงกวา (Cucumis sativus L. cultivar 'Melen F1'), ryegrass เพเรนเนียล (Lolium แดง หลากหลาย 'นกกา'), ทานตะวัน (Helianthus โอ), และ quinoa (Chenopodium quinoa Willd), และได้จัดทำ โดย Weibulls Horto AB สวีเดน มี 40 หม้อ (5 × AM 5 × AM− = 10 × 4 พืช) สำหรับแต่ละชนิดของดิน ซึ่งให้รวม 120 หม้อ (40 × 3 ดินชนิด) ก่อนปลูก วัสดุ inoculum ประกอบด้วยสด arbuscular mycorrhizal เชื้อรา (5–10 AMF propagules/g inoculum) ใช้ดิน (รักษา AM) ในสัดส่วน 1 ส่วนวัสดุ inoculum ในดิน 100 ส่วน ตามคำแนะนำของผู้ผลิต วัสดุ inoculum ได้แล้วผสมกับ cm กิตด้านบนของดิน และกระถางมีให้กับน้ำกลั่นตามต้องการ พืชถูกสุ่ม seeded ด้วยมือภายในบริเวณหม้อ (ryegrass และ quinoa 10 ต่อหม้อ แตงกวาและดอกทานตะวัน 2 seeds ต่อหม้อ), และ weeded และผู้ตามที่ต้องการ
เงื่อนไข climatic ในเรือนกระจกมีกับ 16 h เวลากลางวันและ 8 h ค่ำคืนวงจร ความเข้มแสงที่ (photosynthetically active รังสี) ของ 110–140 μmol m−2 s−1 อุณหภูมิ 20 ° C และอุณหภูมิ 15 ° C ค่ำคืนกลางวัน ก ความชื้นสัมพัทธ์อากาศ 70% ในการชดเชยการเพิ่มขึ้นตามฤดูกาล ความเข้มแสงถูกลดระหว่าง 70 และ 110 μmol m−2 s−1 ประมาณ 11 สัปดาห์หลังจากนั้น พืชมีโต 16–20 สัปดาห์ ขึ้นอยู่กับพืชผล: 8–9 สัปดาห์จากปลูก หลังจากได้พร้อมสำหรับการเก็บเกี่ยวผลไม้แตงกวา ryegrass หลังจากครั้งแรก (1) สอง (2) ตัด และ ทานตะวันและ quinoa หลัง ripening ของเมล็ดด้วย จากการรักษาต่าง ๆ พืชเดียวกันถูกเก็บเกี่ยวในเวลาเดียวกันในการรักษาทั้ง หลังการเก็บเกี่ยว พืชถูก air-dried น้ำหนักคงที่และส่วน aboveground แบ่งเมล็ดและส่วนที่เหลือ เมล็ดทานตะวันและ quinoa ได้ sieved กับ 4 และ 2 มม.ตะแกรง และส่วนที่เหลือที่ปลาย เมล็ดและส่วนที่เหลือถูก analysed สำหรับกิจกรรม 137Cs.
2.4 นับของอาณานิคมเชื้อรา AM
สำหรับ AM เชื้อราสนาม ประมาณ 25–50 กรัมสดน้ำหนักของรากโดยการสุ่มขุดจากเลือกพืช (ดินเนื้อปูน) และเก็บไว้ในตู้แช่ที่ −40 ° C ก่อนย้อมสี แล้ว ตัวอย่างเหล่านี้ถูกแช่อยู่ใน 20% โพแทสเซียมไฮดรอกไซด์สำหรับ 1 d ล้างในน้ำประปา และ acidified กับกรดไฮโดรคลอริก 1% หลังจากนี้ รากถูกสี ด้วย 0.05% trypan บลูใน 14: โซลูชันที่ 1:1 แล็กติกกรด: กลีเซอร: น้ำหนึ่งวัน และ rinsed ในโซลูชัน de-staining (14:1:1 แล็กติกกรด: กลีเซอร: น้ำ) จนกระทั่งสีน้ำเงินไม่ภาพย้อมสีก่อนหน้า ตรวจสอบ รากไม่แผ่ลงบนกระจกสไลด์ และบันทึกลักษณะของการติดเชื้อราภายใต้กล้องจุลทรรศน์ส่องทางไกลมองเห็น อัตราความถี่ mycorrhizal ติดเชื้อในรากถูกแบ่งแยกเป็น 0 =ไม่ติด 1 =ความติด 2 =ติดเชื้อปานกลาง และ 3 =อุดมสมบูรณ์เชื้อ.
2.5 Radiometry และข้อมูล
ดินและตัวอย่างพืชทั้งหมดมี air-dried ก่อนที่จะวิเคราะห์ และต้นไม้ถูกตัดเป็น < มม. 2 ชิ้น: ผลไม้แตงกวาได้ analysed ตามน้ำหนักสด นอกจากการเก็บเกี่ยวส่วน aboveground รากที่ขุดออกสำหรับการกำหนด radiocesium กระจายภายในโรงงาน รากถูกล้างในน้ำประปา อากาศแห้ง และ analysed 137Cs กิจกรรม แกมมา-spectrometry กับ HPGe จับควบคู่กับระบบวิเคราะห์หลายช่องถูกใช้เพื่อกำหนดกิจกรรม 137Cs ในดินและพืช ระบบถูกปรับเทียบกับฉบับมาตรฐานที่ใช้ศึกษา inter-comparative และที่เหมาะสม (35 และ 60 ml) บรรจุภัณฑ์มาตรฐาน ผลลัพธ์ทั้งหมดผุแก้ไขวันที่ของการสุ่มตัวอย่าง (เก็บเกี่ยว) และอัตราส่วนความเข้มข้น 137Cs (CR) ได้คำนวณ ตามน้ำหนัก kg−1dry นโต้ 137Cs (dw) ในโรงงานหาร 137Cs นโต้ kg−1dw ดิน ข้อมูลถูก analysed โดย t-ทดสอบ 2 ตัวอย่างซอฟต์แวร์ปัจจัย (© 2010 ปัจจัย Inc.) เพื่อประเมินความแตกต่างในกิจกรรม 137Cs ระหว่างความสำคัญของระดับ 0.05

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในห้องทดลอง,ที่ดินได้อย่างทั่วถึงแบบผสม,อบแห้งด้วย 2 มม.ตะแกรงเพื่อแยกเอาหินขว้าง aliquots (เกี่ยวกับ 2/3 2/3 2/3 )ของแต่ละ ประเภท มีดิน autoclaved สำหรับ 3 ชั่วโมงที่ 121 ° C ที่ 2 บาร์ของความดัน. การผสมผสานกันระหว่างที่ประกอบด้วยวัสดุเชื่อมต่อในที่ผู้ให้บริการ(โอเลแอนเดอร์สันและหาดทราย perlite grey )ก็ไปฆ่าเชื้อได้ทั้งใบโดยผู้ผลิต.
2.3 พลังไอน้ำสูง วัสดุปลูกและเงื่อนไขการขยายตัว
ตามมาตรฐานพันธุ์ไม้ที่ปลูกอยู่ในโรงเรือนที่อยู่ในหม้อพลาสติกขึ้นด้วยฐานยกขึ้นและระดับเสียงของ 4.2 DM 3 หม้อที่จะถูกจัดวางในจาน(เส้นผ่านศูนย์กลาง 22 ซม.)และใส่พร้อมด้วยเงินจำนวนเดียวกันของดินแต่ละ ประเภท ( CA 4.0 กก.). เพื่อหลีกเลี่ยงการเป็นไปได้ระหว่างไอออนในระหว่างการขนส่ง radiocesium โดยเห็ดเช้า( gyuricza et al . 2008 )ไม่มีปุ๋ยแร่ธาตุเช่นโปแตสเซียม( K )หรือฟอสฟอรัส( P )ซึ่งได้ถูกนำมาใช้ในการปรับปรุงดิน พืชที่ใช้ในการทดลองหม้อที่มีแตงกวา(แตงไทย sativus L cultivar ' melen F 1 ') ryegrass ต้นไม้ยืนต้น(ละมาน multiflorum ความหลากหลาย' corvus ')จากดอกทานตะวัน( helianthus พืช)และ quinoa ( chenopodium quinoa willd )และได้มาจาก weibulls horto AB สวีเดน มี 40 หม้อ( 5 × AM5 ×โมงเช้า - = 10 × 4 พืช)สำหรับ ประเภท ที่ดินแต่ละครั้งซึ่งทำให้ยอดรวมที่ 120 หม้อ( 3 ประเภท ที่ดิน 40 x ) ก่อนปลูกหญ้า, inoculum วัสดุประกอบด้วยสด arbuscular mycorrhizal เห็ด( 5 - 10 AMF Lanes propagules / G inoculum )ถูกนำไปใช้กับที่ดิน(การบำบัดเป็น)ในสัดส่วน 1 ส่วน inoculum วัสดุถึง 100 ส่วนดินตามที่ผู้ผลิตของคำแนะนำ.วัสดุ inoculum ถูกนำไปผสมกับซม.ด้านบน 2-3 2-3 2-3 ของดินและหม้อที่มีให้กับน้ำกลั่นตามที่ต้องการ มีพันธุ์ไม้แบบสุ่มคัดเลือกโดยมืออยู่ ภายใน บริเวณหม้อ( ryegrass และ quinoa 10 ต่อหม้อและแตงกวา 2 เมล็ดทานตะวันต่อหม้อ)และเป็นระคายเคืองและมีน้ำตามที่ต้องการ สภาพ ภูมิอากาศ ไม่เอื้ออำนวย
ในโรงเรือนที่เป็นช่วงเวลากลางคืนรอบ 16 ชั่วโมงในเวลากลางวันและ 8 ชั่วโมงความเข้มของแสง:(รังสีทำงาน photosynthetically )ของ 110-140 μmol m 2 S - 1 อุณหภูมิ ในช่วงเวลากลางวันของ 20 ° C และ อุณหภูมิ ในยามค่ำคืนของ C 15 °และความชื้นสัมพัทธ์ในอากาศ 70% . เพื่อเป็นการชดเชยให้เพิ่มความเข้มแสงในเวลากลางวันได้ลดลงเหลือระหว่าง 70 และ 110 μmol m 2 S - 1 หลังจากประมาณ 11 สัปดาห์ พันธุ์ไม้ที่ปลูกสำหรับ 16-20 16-20 16-20 สัปดาห์ขึ้นอยู่กับพืชผลไม้แตงกวามีพร้อมสำหรับการเก็บเกี่ยวหลังจากปลูก 8-9 8-9 8-9 สัปดาห์จาก ryegrass หลังจากครั้งแรก( 1 st )และที่สอง( 2 )ตัดและเมล็ดทานตะวันและ quinoa หลังจากเข้าไคลของเมล็ดพันธุ์ จากการบำบัดที่แตกต่างกันเหมือนกับพืชที่เก็บเกี่ยวในช่วงเวลาเดียวกันในการบำบัดทั้งสอง หลังจากการเก็บเกี่ยวพืชก็อากาศแห้งน้ำหนักคงที่และชิ้นส่วนป้ายสายโยงสลักแบ่งออกเป็นในส่วนที่เหลือและเมล็ดพันธุ์พืชเมล็ดพันธุ์ของ quinoa และเมล็ดทานตะวันอบแห้งมี 4 และ 2 มม.ตะแกรงและส่วนที่เหลือจะเป็นบด ทั้งเมล็ดพันธุ์และส่วนที่เหลือก็นำมาวิเคราะห์สำหรับ 137 CS กิจกรรม.
2.4 คำนวณปริมาณของการเป็นอาณานิคมเชื้อราเป็น
เป็นอาณานิคมเห็ดโมงเช้าประมาณ 25-50 น้ำหนักสด G ของรากเป็นแบบสุ่มขุดจากไม้ที่เลือก(ดิน)และจัดเก็บไว้ในช่องแช่แข็งที่ C ที่ 40 °ก่อนเกิดรอยเปื้อนควร แล้วตัวอย่างต่อไปนี้เป็นแทรกตัวอยู่ในโซดาไฟ,โปแตสเซียม 20% สำหรับ 1 D ล้างในน้ำและ acidified พร้อมด้วยกรดเกลือ 1% หลังจากนี้,ที่รากมีแต้มสีพร้อมด้วย 0.05% trypan สีฟ้าใน 14 : 1 : 1 เกี่ยวกับนมชนิดตะกั่วกรดแบบซีล:กลีซ - เออะริน:น้ำโซลูชันสำหรับวันเดียวแล้วล้างทำความสะอาดในที่ De - เกิดรอยเปื้อนควรโซลูชัน( 14 : 1 : 1 เกี่ยวกับนมกรด:กลีซ - เออะริน:น้ำ)จนกว่าจะไม่มี ภาพ สีฟ้าเกิดรอยเปื้อนควรอยู่ในเกณฑ์ดี สำหรับการตรวจสอบรากที่แพร่กระจายไปสู่กระดานลื่นกระจกและลักษณะที่ปรากฎของการติดเชื้อเชื้อราเป็นการตรวจสอบด้วยสายตาที่บันทึก ภายใต้ กล้องจุลทรรศน์กล้องส่องทางไกลที่ อัตราความถี่การติดเชื้อ mycorrhizal ในรากที่ได้รับเป็น 0 =ไม่มีการติดเชื้อ 1 =สัญญาณของการติดเชื้อ 2 =การติดเชื้อปานกลางและ 3 =การติดเชื้อมากมาย.
2.5 radiometry และข้อมูลการบำบัด
ตามมาตรฐานตัวอย่างโรงงานผลิตทั้งหมดและดินมีอากาศแห้งก่อนในการวิเคราะห์และพันธุ์ไม้ต่างๆก็ถูกตัดเป็นชิ้นเล็กๆมม.< 2 ผลแตงกวาเป็นวิเคราะห์บนพื้นฐานน้ำหนักสดใหม่ นอกจากนี้เพื่อไปยังส่วนพื้นที่ป้ายสายโยงสลักรากการเก็บเกี่ยวผลผลิตที่ได้ถูกขุดออกไปสำหรับการกำหนดการกระจาย radiocesium ภายใน โรงงานได้ รากที่ได้ล้างในน้ำอากาศแห้งและมีการวิเคราะห์สำหรับ 137 กิจกรรม CSแกมม่า - spectrometry กับอุปกรณ์ตรวจจับ hpge ประกอบกับระบบตัววิเคราะห์ความสมบูรณ์แบบมัลติแชนเนลที่ถูกใช้ในการกำหนด 137 กิจกรรม CS ในและพันธุ์ไม้ต่างๆที่ดิน ระบบที่ปรับแต่งได้กับแหล่งที่มามาตรฐานที่ใช้สำหรับการศึกษา( Inter - ความได้เปรียบและอยู่ในที่เหมาะสม( 60 และ 35 มล.)คอนเทนเนอร์ขนาดมาตรฐานทั้งหมดเป็นผลการแก้ไขฟันผุในวันที่ของการสุ่มตัวอย่าง(การเก็บเกี่ยวผลผลิต)และ 137 CS สมาธิอัตราส่วน( CR )โดยคำนวณเป็น 137 CS BQ กก. - 1 แห้งน้ำหนัก( DW )ในโรงงานโดยแบ่งออกเป็น 137 CS BQ กก. - 1 - ในดิน. ข้อมูลถูกวิเคราะห์โดย 2 - ตัวอย่าง T - การทดสอบด้วย minitab (© 2010 minitab , Inc .)ซอฟต์แวร์ในการประเมินความแตกต่างใน 137 กิจกรรม CS ระหว่างการบำบัดในระดับที่มีความสำคัญ 0.05 .

ที่