Transitions of these phases are gra

Transitions of these phases are gradual and successive, and
are controlled independently of fl oral transition. Moreover,
this maturation process can be extended to fl owers.
Trichomes on successive fl owers also decrease as shoot
maturation proceeds, and the change of trichome distribution
is very similar to that of leaves. The function of SPL10 ,
SPL11 and SPL2 seems to synchronize lateral organ development
with shoot maturation during the reproductive phase.
Taking the function of SBP-box genes broadly, they control
the phase transition of lateral organs, not only in the vegetative
phase, but also throughout development.
FUL and phase transition
FUL expression was reduced in the cauline leaves of
35S:SPL10SRDX plants, while its expression in 35S:mSPL10/11/2
rosette leaves increased. One possibility is that FUL is regulated
by SPL10 , SPL11 and SPL2 . Supporting this, the expression
profi le of FUL is similar to those of SPL10 and SPL11 ,
with a 0.67 correlation value in the ATTED-II database.
Moreover, microarray data demonstrated that the FUL
mRNA level was reduced in miR156b -overexpressing plants,
while expression of AP1 and CAL , homologous genes of FUL ,
was not altered (GEO accession No. GSE2079). These data
suggest that at least one of the SBP-box proteins regulates
FUL expression. In addition, FUL has a GTAC sequence in its
promoter that is recognized by SBP-box proteins, although
the AP1 promoter also contains the sequence ( Cardon et al.
1997 , Lännenpää et al. 2004 , Brikenbihl et al. 2005, Kropat
et al. 2005 , Liang et al. 2008 ). It is still unknown whether
Arabidopsis SPLs regulate AP1 expression in planta. In other
plants, homologous genes of FUL are putative targets of
SBP-box proteins, such as BpSPL1 in silver birch ( Betula
pendula ) and LeSPL-CNR in tomato ( Solanum lycopersicum )
( Lännenpää et al. 2004 , Manning et al. 2006 ). These data
indicate that SPL10, SPL11 and SPL2 might regulate FUL
expression directly. However, ful mutants affect trichome
distribution in the vegetative phase, while SPL10/11/2 did
not. FUL may be regulated by other SBP-box proteins, such
as SPL3, in the vegetative phase. Very recently it has been
shown that SPL3 and SPL9 directly regulate FUL expression
in the vegetative phase ( Wang et al. 2009 , Yamaguchi et al.
2009 ). Nevertheless, it is still possible that SPL10/11/2
control FUL expression directly in the reproductive phase.
SBP-box genes control phase transition; therefore, it is
plausible that FUL plays a role in the process. The wide
cauline leaves and slightly reduced apical dominance of
ful mutants may represent a delayed developmental phase
in the reproductive phase. In addition, it has been reported
that FUL acts with SUPRESSOR OF OVEREXPRESSION
OF CONSTANS 1 (SOC1) to prevent fl oral reversion, aerial
rosette formation and indeterminate growth ( Melzer et al.
2008 ). The infl orescence of ful soc1 double mutants reverted
to a vegetative phase state, which supports the hypothesis
that FUL controls phase transition. ful soc1 showed reduced
apical dominance as observed in 35S:SPL10/11/2SRDX and
35S:miR156/157 plants. It remains to be elucidated whether
the reduced apical dominance phenotype of 35S:miR156/157
and 35S:SPL10/11/2SRDX plants was due to a reduction of
FUL activity and whether SPL10 , SPL11 and SPL2 regulate
shoot development via the FUL pathway.
Finally, SBP-box transcription factors and miR156 are
found in many plant species, including mosses, ferns,
gymnosperms, monocots and dicots ( Zhang et al. 2006 ,
Willmann and Poethig 2007 ). Their evolutionary conservation,
especially SPL10-like proteins, implies an important
function in plant development. Further understanding of
the function of SBP-box genes in Arabidopsis might shed
light on the developmental mechanism of all plants.
Materials and Methods
Plant materials and growth conditions
Arabidopsis ( A. thaliana , Col-0 accession) was used for transient
expression assays and for generating transgenic plants.
SALK_033647, which was previously described ( Mitsuda and
Ohme-Takagi 2008 ), was obtained from the Arabidopsis
Biological Resource Center ( Alonso et al. 2003 ). FLAG_295G12,
FLAG_422H07 and FLAG_245C09 were obtained from the
Institut National de la Recherche Agronomique and were in
the Ws background ( Samson et al. 2002 ). Plants were grown
at 22 ° C under long-day conditions (16 h light and 8 h dark).
RNA analysis
Total RNA was prepared with the RNeasy Plant Mini Kit
(Qiagen, Hilden, Germany) from juvenile leaves (third and
fourth leaf) of 10-day-old plants, adult leaves (seventh to
ninth leaves) of 4-week-old plants, and roots, cauline leaves,
infl orescence stems, fl owers and fruits of 5-week-old plants.
After treatment with DNase I, fi rst-strand cDNA was
synthesized by reverse transcription. PCR was performed
with gene-specifi c primer pairs (Supplementary Table S2).
This generated the full-length coding sequences, except for
TUB8 and PP2AA3 , which were used as internal controls
( Czechowski et al. 2005 ). Quantitative real-time reverse
transcription–PCR (RT–PCR) was performed as described
previously ( Mitsuda et al. 2005 ) with appropriate primers
(Supplementary Table S2).
GUS assay
The 1.9 and 1.8 kb upstream regions from the translation
initiation codon of SPL10 and SPL11 genes, respectively,
were amplifi ed from genomic DNA with the appropriate
primers (Supplementary Table S2), and fused with the GUS
reporter gene to generate ProSPL10:GUS and ProSPL11:GUS .
The GUS assay was performed as described previously
( Mitsuda et al. 2005 ).

Transitions of these phases are gradual and successive, and
are controlled independently of fl oral transition. Moreover,
this maturation process can be extended to fl owers.
Trichomes on successive fl owers also decrease as shoot
maturation proceeds, and the change of trichome distribution
is very similar to that of leaves. The function of SPL10 ,
SPL11 and SPL2 seems to synchronize lateral organ development
with shoot maturation during the reproductive phase.
Taking the function of SBP-box genes broadly, they control
the phase transition of lateral organs, not only in the vegetative
phase, but also throughout development.
 FUL and phase transition
FUL expression was reduced in the cauline leaves of
35S:SPL10SRDX plants, while its expression in 35S:mSPL10/11/2
rosette leaves increased. One possibility is that FUL is regulated
by SPL10 , SPL11 and SPL2 . Supporting this, the expression
profi le of FUL is similar to those of SPL10 and SPL11 ,
with a 0.67 correlation value in the ATTED-II database.
Moreover, microarray data demonstrated that the FUL
mRNA level was reduced in miR156b -overexpressing plants,
while expression of AP1 and CAL , homologous genes of FUL ,
was not altered (GEO accession No. GSE2079). These data
suggest that at least one of the SBP-box proteins regulates
FUL expression. In addition, FUL has a GTAC sequence in its
promoter that is recognized by SBP-box proteins, although
the AP1 promoter also contains the sequence ( Cardon et al.
1997 , Lännenpää et al. 2004 , Brikenbihl et al. 2005, Kropat
et al. 2005 , Liang et al. 2008 ). It is still unknown whether
Arabidopsis SPLs regulate AP1 expression in planta. In other
plants, homologous genes of FUL are putative targets of
SBP-box proteins, such as BpSPL1 in silver birch ( Betula
pendula ) and LeSPL-CNR in tomato ( Solanum lycopersicum )
( Lännenpää et al. 2004 , Manning et al. 2006 ). These data
indicate that SPL10, SPL11 and SPL2 might regulate FUL
expression directly. However, ful mutants affect trichome
distribution in the vegetative phase, while SPL10/11/2 did
not. FUL may be regulated by other SBP-box proteins, such
as SPL3, in the vegetative phase. Very recently it has been
shown that SPL3 and SPL9 directly regulate FUL expression
in the vegetative phase ( Wang et al. 2009 , Yamaguchi et al.
2009 ). Nevertheless, it is still possible that SPL10/11/2
control FUL expression directly in the reproductive phase.
 SBP-box genes control phase transition; therefore, it is
plausible that FUL plays a role in the process. The wide
cauline leaves and slightly reduced apical dominance of
ful mutants may represent a delayed developmental phase
in the reproductive phase. In addition, it has been reported
that FUL acts with SUPRESSOR OF OVEREXPRESSION
OF CONSTANS 1 (SOC1) to prevent fl oral reversion, aerial
rosette formation and indeterminate growth ( Melzer et al.
2008 ). The infl orescence of ful soc1 double mutants reverted
to a vegetative phase state, which supports the hypothesis
that FUL controls phase transition. ful soc1 showed reduced
apical dominance as observed in 35S:SPL10/11/2SRDX and
35S:miR156/157 plants. It remains to be elucidated whether
the reduced apical dominance phenotype of 35S:miR156/157
and 35S:SPL10/11/2SRDX plants was due to a reduction of
FUL activity and whether SPL10 , SPL11 and SPL2 regulate
shoot development via the FUL pathway.
 Finally, SBP-box transcription factors and miR156 are
found in many plant species, including mosses, ferns,
gymnosperms, monocots and dicots ( Zhang et al. 2006 ,
 Willmann and Poethig 2007 ). Their evolutionary conservation,
especially SPL10-like proteins, implies an important
function in plant development. Further understanding of
the function of SBP-box genes in Arabidopsis might shed
light on the developmental mechanism of all plants.
 Materials and Methods
 Plant materials and growth conditions
 Arabidopsis ( A. thaliana , Col-0 accession) was used for transient
expression assays and for generating transgenic plants.
SALK_033647, which was previously described ( Mitsuda and
Ohme-Takagi 2008 ), was obtained from the Arabidopsis
Biological Resource Center ( Alonso et al. 2003 ). FLAG_295G12,
FLAG_422H07 and FLAG_245C09 were obtained from the
Institut National de la Recherche Agronomique and were in
the Ws background ( Samson et al. 2002 ). Plants were grown
at 22 ° C under long-day conditions (16 h light and 8 h dark).
 RNA analysis
 Total RNA was prepared with the RNeasy Plant Mini Kit
(Qiagen, Hilden, Germany) from juvenile leaves (third and
fourth leaf) of 10-day-old plants, adult leaves (seventh to
ninth leaves) of 4-week-old plants, and roots, cauline leaves,
infl orescence stems, fl owers and fruits of 5-week-old plants.
After treatment with DNase I, fi rst-strand cDNA was
synthesized by reverse transcription. PCR was performed
with gene-specifi c primer pairs (Supplementary Table S2).
This generated the full-length coding sequences, except for
TUB8 and PP2AA3 , which were used as internal controls
( Czechowski et al. 2005 ). Quantitative real-time reverse
transcription–PCR (RT–PCR) was performed as described
previously ( Mitsuda et al. 2005 ) with appropriate primers
(Supplementary Table S2).
 GUS assay
 The 1.9 and 1.8 kb upstream regions from the translation
initiation codon of SPL10 and SPL11 genes, respectively,
were amplifi ed from genomic DNA with the appropriate
primers (Supplementary Table S2), and fused with the GUS
reporter gene to generate ProSPL10:GUS and ProSPL11:GUS .
The GUS assay was performed as described previously
( Mitsuda et al. 2005 ).

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

Transitions of these phases are gradual and successive, andare controlled independently of fl oral transition. Moreover,this maturation process can be extended to fl owers.Trichomes on successive fl owers also decrease as shootmaturation proceeds, and the change of trichome distributionis very similar to that of leaves. The function of SPL10 ,SPL11 and SPL2 seems to synchronize lateral organ developmentwith shoot maturation during the reproductive phase.Taking the function of SBP-box genes broadly, they controlthe phase transition of lateral organs, not only in the vegetativephase, but also throughout development. FUL and phase transitionFUL expression was reduced in the cauline leaves of35S:SPL10SRDX plants, while its expression in 35S:mSPL10/11/2rosette leaves increased. One possibility is that FUL is regulatedby SPL10 , SPL11 and SPL2 . Supporting this, the expressionprofi le of FUL is similar to those of SPL10 and SPL11 ,with a 0.67 correlation value in the ATTED-II database.Moreover, microarray data demonstrated that the FULmRNA level was reduced in miR156b -overexpressing plants,while expression of AP1 and CAL , homologous genes of FUL ,was not altered (GEO accession No. GSE2079). These datasuggest that at least one of the SBP-box proteins regulatesFUL expression. In addition, FUL has a GTAC sequence in itspromoter that is recognized by SBP-box proteins, althoughthe AP1 promoter also contains the sequence ( Cardon et al.1997 , Lännenpää et al. 2004 , Brikenbihl et al. 2005, Kropatet al. 2005 , Liang et al. 2008 ). It is still unknown whetherArabidopsis SPLs regulate AP1 expression in planta. In otherplants, homologous genes of FUL are putative targets ofSBP-box proteins, such as BpSPL1 in silver birch ( Betulapendula ) and LeSPL-CNR in tomato ( Solanum lycopersicum )( Lännenpää et al. 2004 , Manning et al. 2006 ). These dataindicate that SPL10, SPL11 and SPL2 might regulate FULexpression directly. However, ful mutants affect trichomedistribution in the vegetative phase, while SPL10/11/2 didnot. FUL may be regulated by other SBP-box proteins, suchas SPL3, in the vegetative phase. Very recently it has beenshown that SPL3 and SPL9 directly regulate FUL expressionin the vegetative phase ( Wang et al. 2009 , Yamaguchi et al.2009 ). Nevertheless, it is still possible that SPL10/11/2control FUL expression directly in the reproductive phase. SBP-box genes control phase transition; therefore, it isplausible that FUL plays a role in the process. The widecauline leaves and slightly reduced apical dominance offul mutants may represent a delayed developmental phasein the reproductive phase. In addition, it has been reportedthat FUL acts with SUPRESSOR OF OVEREXPRESSIONOF CONSTANS 1 (SOC1) to prevent fl oral reversion, aerialrosette formation and indeterminate growth ( Melzer et al.2008 ). The infl orescence of ful soc1 double mutants revertedto a vegetative phase state, which supports the hypothesisthat FUL controls phase transition. ful soc1 showed reducedapical dominance as observed in 35S:SPL10/11/2SRDX and35S:miR156/157 plants. It remains to be elucidated whetherthe reduced apical dominance phenotype of 35S:miR156/157and 35S:SPL10/11/2SRDX plants was due to a reduction ofFUL activity and whether SPL10 , SPL11 and SPL2 regulateshoot development via the FUL pathway. Finally, SBP-box transcription factors and miR156 arefound in many plant species, including mosses, ferns,gymnosperms, monocots and dicots ( Zhang et al. 2006 , Willmann and Poethig 2007 ). Their evolutionary conservation,especially SPL10-like proteins, implies an importantfunction in plant development. Further understanding ofthe function of SBP-box genes in Arabidopsis might shedlight on the developmental mechanism of all plants. Materials and Methods Plant materials and growth conditions Arabidopsis ( A. thaliana , Col-0 accession) was used for transientexpression assays and for generating transgenic plants.SALK_033647, which was previously described ( Mitsuda andOhme-Takagi 2008 ), was obtained from the ArabidopsisBiological Resource Center ( Alonso et al. 2003 ). FLAG_295G12,FLAG_422H07 and FLAG_245C09 were obtained from theInstitut National de la Recherche Agronomique and were inthe Ws background ( Samson et al. 2002 ). Plants were grownat 22 ° C under long-day conditions (16 h light and 8 h dark). RNA analysis Total RNA was prepared with the RNeasy Plant Mini Kit(Qiagen, Hilden, Germany) from juvenile leaves (third andfourth leaf) of 10-day-old plants, adult leaves (seventh toninth leaves) of 4-week-old plants, and roots, cauline leaves,infl orescence stems, fl owers and fruits of 5-week-old plants.After treatment with DNase I, fi rst-strand cDNA wassynthesized by reverse transcription. PCR was performedwith gene-specifi c primer pairs (Supplementary Table S2).This generated the full-length coding sequences, except forTUB8 and PP2AA3 , which were used as internal controls( Czechowski et al. 2005 ). Quantitative real-time reversetranscription–PCR (RT–PCR) was performed as describedpreviously ( Mitsuda et al. 2005 ) with appropriate primers(Supplementary Table S2). GUS assay The 1.9 and 1.8 kb upstream regions from the translationinitiation codon of SPL10 and SPL11 genes, respectively,were amplifi ed from genomic DNA with the appropriateprimers (Supplementary Table S2), and fused with the GUSreporter gene to generate ProSPL10:GUS and ProSPL11:GUS .The GUS assay was performed as described previously( Mitsuda et al. 2005 ).

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

เปลี่ยนขั้นตอนเหล่านี้จะค่อยเป็นค่อยไปและต่อเนื่องและมีการควบคุมได้อย่างอิสระของการเปลี่ยนแปลงในช่องปากชั้น นอกจากนี้กระบวนการการเจริญเติบโตนี้สามารถขยายไปยังชั้น Owers. trichomes ใน Owers ชั้นต่อเนื่องนอกจากนี้ยังลดลงเมื่อยิงเงินการเจริญเติบโตและการเปลี่ยนแปลงของการกระจายtrichome จะคล้ายกับที่ของใบ ฟังก์ชั่นของ SPL10, SPL11 และ SPL2 ดูเหมือนว่าจะประสานการพัฒนาอวัยวะข้างที่มีการเจริญเติบโตยิงในระหว่างขั้นตอนการเจริญพันธุ์. การทำงานของยีน SBP กล่องกว้างพวกเขาควบคุมการเปลี่ยนเฟสของอวัยวะด้านข้างไม่เพียงแต่ในพืชเฟส แต่ยัง . การพัฒนาตลอด FUL และเฟสการเปลี่ยนแปลงการแสดงออกFUL ลดลงในใบ cauline ของ35S: พืช SPL10SRDX ในขณะที่การแสดงออกใน 35S: mSPL10 / 02/11 ดอกกุหลาบใบเพิ่มขึ้น หนึ่งเป็นไปได้คือการที่ถูกควบคุม FUL โดย SPL10, SPL11 และ SPL2 การสนับสนุนนี้แสดงออกprofi le ของ FUL คล้ายกับบรรดาของ SPL10 และ SPL11, มีค่าความสัมพันธ์ 0.67 ในฐานข้อมูล ATTED-II. นอกจากนี้ยังมีข้อมูลที่แสดงให้เห็นถึง microarray ว่า FUL ระดับ mRNA ลดลงใน miR156b -overexpressing พืชในขณะที่การแสดงออกของ AP1 และ CAL ยีนคล้ายคลึงกันของ FUL, ไม่ได้เปลี่ยนแปลง (GEO ภาคยานุวัติฉบับที่ GSE2079) ข้อมูลเหล่านี้ชี้ให้เห็นว่าอย่างน้อยหนึ่งของโปรตีน SBP กล่องควบคุมการแสดงออกFUL นอกจากนี้ FUL มีลำดับ GTAC ในของผู้ก่อการที่เป็นที่ยอมรับโดยโปรตีนSBP กล่องแม้ว่าโปรโมเตอร์AP1 ยังมีลำดับ (Cardon et al. 1997 Lännenpää et al. 2004 Brikenbihl et al. 2005 Kropat et al, . ปี 2005 เหลียง et al. 2008) มันยังคงเป็นที่รู้จักว่าArabidopsis SPLs ควบคุมการแสดงออก AP1 ในพืช ในอื่น ๆพืชยีนคล้ายคลึงกันของ FUL เป็นเป้าหมายสมมุติของโปรตีนSBP กล่องเช่น BpSPL1 ในเบิร์ชสีเงิน (Betula pendula) และ LeSPL-CNR มะเขือเทศ (Solanum lycopersicum) (Lännenpää et al. 2004 แมนนิ่ง et al. 2006) . ข้อมูลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 อาจควบคุม FUL แสดงออกโดยตรง แต่ส่งผลกระทบต่อการกลายพันธุ์ ful trichome กระจายในระยะการเจริญเติบโตในขณะที่ SPL10 / 2/11 ทำไม่ได้ FUL อาจถูกควบคุมโดยโปรตีนชนิดอื่น ๆ กล่อง SBP เช่นเป็นSPL3 ในระยะเจริญเติบโต เมื่อเร็ว ๆ นี้จะได้รับการแสดงให้เห็นว่าSPL3 และ SPL9 โดยตรงควบคุมการแสดงออก FUL ในขั้นตอนพืช (Wang et al. 2009 ยามากูชิ et al. 2009) แต่ก็ยังคงเป็นไปไม่ได้ที่ SPL10 / 02/11 ควบคุมการแสดงออก FUL โดยตรงในระยะสืบพันธุ์. ยีน SBP กล่องควบคุมการเปลี่ยนเฟส; จึงเป็นไปได้ว่า FUL มีบทบาทในกระบวนการ กว้างใบ cauline และลดลงเล็กน้อยยอดการปกครองของการกลายพันธุ์ful อาจจะเป็นขั้นตอนการพัฒนาล่าช้าในขั้นตอนการสืบพันธุ์ นอกจากนี้ยังได้รับรายงานว่ามีการกระทำ FUL SUPRESSOR การแสดงออกของConstans 1 (SOC1) เพื่อป้องกันการพลิกกลับในช่องปากชั้นอากาศก่อดอกกุหลาบและการเจริญเติบโตไม่แน่นอน(Melzer et al. 2008) orescence infl ของการกลายพันธุ์คู่ ful SOC1 หวนกลับไปยังรัฐที่ขั้นตอนพืชซึ่งสนับสนุนสมมติฐานว่าการเปลี่ยนแปลงขั้นตอนการควบคุมFUL SOC1 ful ลดลงแสดงให้เห็นว่ายอดการปกครองเป็นข้อสังเกตใน35S: SPL10 / 11 / 2SRDX และ35S: miR156 / 157 พืช ยังคงที่จะอธิบายว่าฟีโนไทป์ยอดการปกครองที่ลดลงของ 35S: miR156 / 157 และ 35S: SPL10 / 11 / 2SRDX พืชเป็นผลมาจากการลดลงของกิจกรรมFUL และไม่ว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 ควบคุม. การพัฒนาถ่ายผ่านทางเดิน FUL สุดท้าย , SBP กล่องถอดความปัจจัยและ miR156 จะพบในพืชหลายชนิดรวมทั้งมอสเฟิร์นพืชเมล็ดเปลือย, พืชใบเลี้ยงเดี่ยวและ dicots (Zhang et al. 2006 Willmann และ Poethig 2007) การอนุรักษ์วิวัฒนาการของพวกเขาโดยเฉพาะอย่างยิ่งโปรตีน SPL10 เหมือนนัยสำคัญฟังก์ชั่นในการพัฒนาโรงงาน ความเข้าใจต่อไปของการทำงานของยีน SBP กล่องใน Arabidopsis อาจหลั่งน้ำตาแสงในกลไกการพัฒนาของพืชทั้งหมด. วัสดุและวิธีการวัสดุอาคารและสภาวะการเจริญเติบโตArabidopsis (ก thaliana เทือกเขา-0 เข้า) ที่ใช้สำหรับการชั่วคราวการตรวจและการแสดงออกสร้างพืชดัดแปรพันธุกรรม. SALK_033647 ซึ่งได้รับการอธิบายไว้ก่อนหน้า (Mitsuda และOhme ทาคากิ-2008) ที่ได้รับจาก Arabidopsis ชีวภาพศูนย์วิทยบริการ (อลอนโซ่ et al. 2003) FLAG_295G12, FLAG_422H07 และ FLAG_245C09 ที่ได้รับจากสถาบันแห่งชาติde la Recherche Agronomique และอยู่ในพื้นหลังWs (แซมซั่น et al. 2002) พืชที่ปลูกวันที่ 22 ° C ภายใต้เงื่อนไขที่นานวัน (16 แสงชั่วโมงและ 8 ชั่วโมงเข้ม). การวิเคราะห์ RNA รวม RNA ถูกจัดทำขึ้นกับพืช RNeasy Mini Kit (Qiagen, ฮิลเดน, เยอรมนี) จากใบเด็กและเยาวชน (ที่สามและใบที่สี่) ของพืช 10 วันเก่าใบผู้ใหญ่ (เจ็ดใบที่เก้า) 4 สัปดาห์อายุพืชและรากใบ cauline, ลำต้น orescence infl, Owers ชั้นและผลไม้ของพืช 5 สัปดาห์เก่า. หลังจากการรักษาด้วย DNase ผมสาย cDNA สาระ-แรกถูกสังเคราะห์โดยถอดรหัสแบบย้อนกลับ PCR ได้ดำเนินการกับคู่ไพรเมอร์คยีนspecifi (เสริมตาราง S2). นี้สร้างลำดับการเข้ารหัสเต็มความยาวยกเว้นTUB8 และ PP2AA3 ซึ่งถูกนำมาใช้เป็นระบบการควบคุมภายใน(Czechowski et al. 2005) ปริมาณเวลาจริงกลับถอดความ-PCR (RT-PCR) ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Mitsuda et al. 2005) ด้วยไพรเมอร์ที่เหมาะสม(เสริมตาราง S2). ทดสอบ GUS 1.9 และ 1.8 กิโลภูมิภาคต้นน้ำจากการแปลเริ่มต้นcodon ของ SPL10 และยีน SPL11 ตามลำดับเป็นเอ็ดamplifi จากดีเอ็นเอที่มีความเหมาะสมไพรเมอร์(เสริมตาราง S2) และผสมกับ GUS ยีนนักข่าวเพื่อสร้าง ProSPL10: GUS และ ProSPL11. GUS การวิเคราะห์กัสได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Mitsuda et al. 2005)

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

การเปลี่ยนขั้นตอนเหล่านี้จะค่อยเป็นค่อยไปและต่อเนื่อง และจะถูกควบคุมโดยอิสระของ FL
เปลี่ยนปาก โดย
กระบวนการบ่มนี้สามารถขยายไปยังฟลอริด้า ทาวเวอร์
ไตรโคมบนทาวเวอร์ยังลดลงต่อเนื่อง ด้วยการยิง

) และการเปลี่ยนรูปร่างจะคล้ายกับที่ของใบ การทำงานของ spl10
,และ spl11 spl2 ดูเหมือนว่าจะประสานการพัฒนาอวัยวะด้านข้างด้วยการยิงในระยะเจริญพันธุ์
ถ่ายการทำงานของยีนดังกล่าว กล่อง กว้าง พวกเขา ควบคุมการเปลี่ยนเฟส
ด้านข้างของอวัยวะที่ไม่เพียง แต่ในขั้นตอนการพัฒนา แต่ยังทั่วผัก
.
ครบระยะเปลี่ยน
ful การแสดงออกลดลงใน cauline
35s : spl10srdx ใบของพืชในขณะที่การแสดงออกใน 35s : mspl10 / 11 / 2
Rosette ใบเพิ่มขึ้น หนึ่งในความเป็นไปได้ที่สวยงามมีระเบียบ
โดย spl10 spl11 spl2 , และ . สนับสนุนนี้ การแสดงออก
Profi เลอ ของครบ เป็นคล้ายกับบรรดาของ spl10 และ spl11
กับ 0.67 , ค่าสหสัมพันธ์ใน atted-ii ฐานข้อมูล .
นอกจากนี้ microarray ข้อมูลแสดงให้เห็นว่าระดับ mRNA ลดลงใน mir156b ครบ
-
overexpressing พืชขณะที่การแสดงออกของยีนและ ap1 แคล โฮโมโลกัสของครบ
ไม่ได้เปลี่ยนแปลง ( Geo , การไม่ gse2079 ) ข้อมูลเหล่านี้
แนะนำว่าอย่างน้อยหนึ่งของโปรตีนดังกล่าว กล่องควบคุม
ful การแสดงออก นอกจากนี้ ful มีจีแทคลำดับใน
โปรโมเตอร์ที่เป็นที่ยอมรับโดย SBP กล่องโปรตีน แม้ว่า
ap1 โปรโมเตอร์ยังมีลำดับ ( คาร์ดอน et al .
1997 ผมและ nnenp ää et al . ปี 2004brikenbihl et al . 2005 kropat
et al . 2005 เหลียง et al . 2008 ) มันยังไม่เป็นที่แน่ชัดว่า
Arabidopsis spls ควบคุม ap1 การแสดงออกใน planta . ในพืชอื่น ๆ
, โฮโมโลกัสของยีนที่มีการแสดงออกดังกล่าว ครบเป้าหมาย
กล่องโปรตีน เช่น bpspl1 ในเบิร์ชสีเงิน ( betula
เพนดูลา ) และ lespl CNR ในมะเขือเทศ ( ไม่สามารถจะยอมรับได้ lycopersicum )
( L และ nnenp ää et al . 2004 , Manning et al . 2006 )
ข้อมูลเหล่านี้

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.