DISCUSSION The present study demons

DISCUSSION
The present study demonstrates that Acinetobacter sp. Y1 can remove ammonium effectively. The maximum removal rate by the strain is twice higher than that by Alcaligenes faecalis No. 4 under
the same NH4 þ-N load (about 100 mg/L) (6). Furthermore, for Bacillus sp. LY (16) and Pseudomonas alcaligenes AS-1 (17), the ammonium removal rates were just 0.43 mg-N/L/h and 1.15 mg-N/ L/h, respectively, which were significantly lower than that of the present study. TN was removed by 87.8% from the medium in 22 h, indicating the heterotrophic nitrogen removal capability by Acinetobacter sp. Y1. A few intermediates were observed in the nitrifi- cation process, possibly due to the fast conversion to the downstream products such as nitrogen. However, accumulation of nitrite has been reported during ammonium oxidation by Bacillus methylotrophicus L7 (18), Alcaligenes faecalis C16 (19) and Marinobacter sp. F6 (20), while production of both nitrite and nitrate were found for Rhodococcus sp. CPZ24 (21). The concentration of TN was slightly higher than that of NH4 þ-N after 12 h. The nitrogen released from bacteria decay might be responsible for this phenomenon (7,22). Similar results have been found for Pseudomonas stutzeri YZN-001 (23) and Acinetobacter sp. Y16 (22).
Many researches indicated that heterotrophic nitrifier utilizes and converts NH4 þ-N with certain carbon sources during the growing phase (6). The carbon sources favoring heterotrophic nitrification are not unique for different organisms. Citrate is commonly used as an organic substrate for heterotrophic nitrifi- cation by some heterotrophic microorganisms such as Alcaligenes faecalis No. 4. Suitable carbon source for Providencia rettgeri strain YL and Pseudomonas sp. AS-1 was acetate compared to citrate (24). However, there is no convincing explanation about the dependency of heterotrophic nitrification on carbon source. Potentially, the most important factor in determining heterotrophic nitrification might be carbon source (25). Organisms may perform heterotrophic nitrificationeaerobic denitrification via different mechanisms on different carbon sources (18). Among the tested carbon sources, organic acids with simple structure appear to be more efficient than saccharides. A possible reason is that the organic acids could be used directly while the saccharides must be changed to simpler compounds firstly (26). Denitrification could regenerate alkalinity and increase pH. Utilization of pyruvate, citrate and acetate made the media more alkaline, suggesting the possibility of denitrification. The carbon sources that made the media alkaline supported nitrification whereas the others that made the media acidic did not. It has been reported that alkaline environment was favorable to heterotrophic nitrification because free ammonia (NH3), not NH4 þ, was required by AMO and more available in alkaline condition (27). However, Brierley and Wood (25) think this was not solely affected by pH.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สนทนา การศึกษาปัจจุบันแสดงให้เห็นว่า Acinetobacter sp. Y1 สามารถเอาแอมโมเนียได้อย่างมีประสิทธิภาพ อัตราสูงสุดลบ ด้วยสายพันธุ์เป็นสองระดับโดย Alcaligenes faecalis เลขที่ 4 ภายใต้โหลดþ N NH4 เดียว (เกี่ยวกับ 100 mg/L) (6) นอกจากนี้ สำหรับ sp.คัดลี (16) และ alcaligenes Pseudomonas เป็น-1 (17), อัตราการกำจัดแอมโมเนีย เพียง 0.43 มิลลิกรัม-N/L/h และ 1.15 มิลลิกรัม-N / L/h ตามลำดับ ซึ่งถูกมากต่ำกว่าที่ศึกษาอยู่ TN ถูกเอาออก โดย 87.8% จากสื่อใน 22 h แสดงความสามารถในการกำจัดไนโตรเจน heterotrophic โดย Acinetobacter sp. Y1 ตัวกลางกี่ถูกสังเกตในกระบวนการ nitrifi cation อาจเนื่องมาจากการแปลงผลิตภัณฑ์ปลายน้ำเช่นไนโตรเจนอย่างรวดเร็ว อย่างไรก็ตาม สะสมของไนไตรต์ได้รับรายงานระหว่างแอมโมเนียเกิดออกซิเดชันโดยคัด methylotrophicus หมายเลข L7 (18), Alcaligenes faecalis C16 (19) และ Marinobacter sp. F6 (20), ในขณะที่ผลิตของไนไตรต์และไนเตรตถูกพบ Rhodococcus sp. CPZ24 (21) ความเข้มข้นของ TN เป็นเล็กน้อยสูงกว่าของ NH4 þ N หลังจาก 12 h ไนโตรเจนออกจากแบคทีเรียผุอาจรับผิดชอบ (7,22) ปรากฏการณ์นี้ พบผลลัพธ์ที่คล้ายกันสำหรับ Pseudomonas stutzeri YZN-001 (23) และ Acinetobacter sp. Y16 (22)งานวิจัยมากมายระบุว่า nitrifier heterotrophic ใช้ และแปลง NH4 þ N กับแหล่งคาร์บอนบางระยะเติบโต (6) แหล่งคาร์บอนนความการอนาม็อกซ์ heterotrophic ไม่ซ้ำกันสำหรับสิ่งมีชีวิตที่แตกต่างกัน ซิเตรตโดยทั่วไปใช้เป็นพื้นผิวการอินทรีย์ heterotrophic nitrifi cation โดยจุลินทรีย์บาง heterotrophic เช่น Alcaligenes faecalis เลข 4 แหล่งคาร์บอนเหมาะสำหรับ Providencia rettgeri ต้องใช้ YL และ Pseudomonas sp.เป็น 1 acetate เทียบกับซิเตรต (24) ได้ อย่างไรก็ตาม มีอธิบายไม่น่าเชื่อถือเกี่ยวกับการพึ่งพาของการอนาม็อกซ์ heterotrophic บนแหล่งคาร์บอน อาจ ปัจจัยสำคัญในการกำหนดการอนาม็อกซ์ heterotrophic อาจเป็นแหล่งคาร์บอน (25) สิ่งมีชีวิตอาจทำ heterotrophic nitrificationeaerobic denitrification ผ่านกลไกต่าง ๆ ในแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกัน (18) ระหว่างแหล่งทดสอบคาร์บอน กรดอินทรีย์ที่ มีโครงสร้างอย่างง่ายจะ มีประสิทธิภาพมากกว่า saccharides เป็นเหตุผลที่เป็นไปได้ที่กรดอินทรีย์สามารถใช้ได้โดยตรงขณะ saccharides ต้องเปลี่ยนเป็นสารประกอบที่ง่ายก่อน (26) Denitrification สามารถสร้างสภาพด่าง และเพิ่มค่า pH การใช้ประโยชน์ของ pyruvate ซิเตรต และ acetate ทำสื่อเพิ่มอัลคาไลน์ การแนะนำของ denitrification แหล่งคาร์บอนที่ทำสื่อด่างสนับสนุนการอนาม็อกซ์ โดยผู้อื่นที่ทำสื่อเปรี้ยวไม่ มีรายงานว่า อัลคาไลน์ผมควรการอนาม็อกซ์ heterotrophic เนื่องจากฟรีแอมโมเนีย (NH3), ไม่ NH4 þ เป็นต่อ โดย AMO และอื่น ๆ อีกมากมายในสภาพด่าง (27) อย่างไรก็ตาม Brierley และไม้ (25) คิดว่า นี้เป็นแต่เพียงผู้เดียวเช่น pH

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อภิปรายการศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าเอสพี Acinetobacter
Y1 สามารถลบแอมโมเนียได้อย่างมีประสิทธิภาพ อัตราสูงสุดโดยการกำจัดความเครียดเป็นสองเท่าสูงกว่าโดย Alcaligenes faecalis ฉบับที่ 4
ภายใต้เดียวกันNH4 โหลด TH-N (ประมาณ 100 มิลลิกรัม / ลิตร) (6) นอกจากนี้สำหรับเชื้อ Bacillus sp LY (16) และ Pseudomonas Alcaligenes AS-1 (17) อัตราการกำจัดแอมโมเนียมเป็นเพียง 0.43 mg-N / L / ชั่วโมงและ 1.15 mg-N / L / ชั่วโมงตามลำดับซึ่งมีนัยสำคัญต่ำกว่าของการศึกษาปัจจุบัน . เทนเนสซีถูกลบออกโดย 87.8% จากสื่อใน 22 ชั่วโมงแสดงให้เห็นความสามารถในการกำจัดไนโตรเจน heterotrophic โดย Acinetobacter SP Y1 ตัวกลางบางคนตั้งข้อสังเกตในกระบวนการไอออนบวก nitrifi- อาจจะเป็นเพราะการแปลงอย่างรวดเร็วไปยังผลิตภัณฑ์ปลายน้ำเช่นไนโตรเจน แต่การสะสมของไนไตรท์ได้รับการรายงานในระหว่างการเกิดออกซิเดชันแอมโมเนียมโดย Bacillus methylotrophicus L7 (18), Alcaligenes faecalis C16 (19) และ Marinobacter SP F6 (20) ขณะที่การผลิตของทั้งสองไนไตรท์และไนเตรทที่พบสำหรับ Rhodococcus SP CPZ24 (21) ความเข้มข้นของเทนเนสซีเล็กน้อยสูงกว่าþ NH4-N หลังจาก 12 ชั่วโมง ไนโตรเจนปล่อยออกมาจากการสลายตัวของเชื้อแบคทีเรียที่อาจจะมีความรับผิดชอบสำหรับปรากฏการณ์นี้ (7,22) ผลที่คล้ายกันได้รับการพบเชื้อ Pseudomonas stutzeri YZN-001 (23) และ Acinetobacter SP Y16 (22).
หลายงานวิจัยชี้ให้เห็นว่า nitrifier heterotrophic ใช้และแปลง NH4 TH-N กับแหล่งคาร์บอนบางอย่างในช่วงการเจริญเติบโต (6) แหล่งที่มาของความนิยมคาร์บอนไนตริฟิเค heterotrophic ไม่ซ้ำกันสำหรับสิ่งมีชีวิตที่แตกต่างกัน ซิเตรตเป็นที่นิยมใช้เป็นสารตั้งต้นอินทรีย์ heterotrophic ไอออนบวก nitrifi- จากจุลินทรีย์ heterotrophic บางอย่างเช่น Alcaligenes faecalis ลำดับที่ 4. แหล่งคาร์บอนเหมาะสำหรับ Providencia ความเครียด rettgeri YL และ Pseudomonas SP AS-1 acetate เมื่อเทียบกับซิเตรต (24) แต่มีความเชื่อไม่มีคำอธิบายเกี่ยวกับการขึ้นของไนตริฟิเค heterotrophic แหล่งคาร์บอน อาจเป็นปัจจัยที่สำคัญที่สุดในการพิจารณาไนตริฟิเค heterotrophic อาจจะมีแหล่งคาร์บอน (25) สิ่งมีชีวิตที่อาจดำเนินการ heterotrophic nitrificationeaerobic denitrification ผ่านกลไกที่แตกต่างกันเกี่ยวกับแหล่งที่มาที่แตกต่างกันคาร์บอน (18) ท่ามกลางแหล่งคาร์บอนทดสอบกรดอินทรีย์ที่มีโครงสร้างที่เรียบง่ายดูเหมือนจะมีประสิทธิภาพมากขึ้นกว่านํ้าตาล เหตุผลที่เป็นไปได้คือกรดอินทรีย์สามารถนำมาใช้โดยตรงในขณะที่นํ้าตาลจะต้องเปลี่ยนไปเป็นสารที่เรียบง่ายในตอนแรก (26) Denitrification สามารถงอกใหม่และเพิ่มความเป็นด่างค่า pH การใช้ประโยชน์จากไพรูซิเตรตและอะซิเตททำสื่อด่างมากขึ้นแสดงให้เห็นความเป็นไปได้ของ denitrification แหล่งคาร์บอนที่ทำให้อัลคาไลน์สื่อสนับสนุนไนตริฟิเคขณะที่คนอื่นที่ทำให้สื่อที่เป็นกรดไม่ได้ มันได้รับรายงานว่าสภาพแวดล้อมที่เป็นด่างเป็นประโยชน์กับไนตริฟิเค heterotrophic เพราะแอมโมเนียฟรี (NH3) ไม่ NH4 TH, ที่ถูกต้องโดย AMO และอื่น ๆ อยู่ในสภาพที่อัลคาไลน์ (27) อย่างไรก็ตาม Brierley ไม้ (25) คิดนี้ไม่ได้รับผลกระทบ แต่เพียงผู้เดียวโดยค่า pH

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าการอภิปราย
y1 Acinetobacter sp . สามารถเอาแอมโมเนียได้อย่างมีประสิทธิภาพ สูงสุดที่อัตราการบำบัดโดยความเครียดเป็นสองเท่า สูงกว่าโดย Alcaligenes faecalis หมายเลข 4 สังกัดเดียวกัน NH4 þ
- N โหลด ( ประมาณ 100 mg / L ) ( 6 ) นอกจากนี้ สำหรับ Bacillus sp . ly ( 16 ) และ Pseudomonas Alcaligenes as-1 ( 17 ) , แอมโมเนียม เอาราคาแค่ 0.43 มิลลิกรัมไนโตรเจน / ลิตร / ชั่วโมงและ 1.15 มิลลิกรัมไนโตรเจน / ลิตรต่อชั่วโมงตามลำดับ ซึ่งน้อยกว่าที่ของการศึกษาปัจจุบัน TN ถูกลบออกจาก 87.8 จากสื่อใน 22 ชั่วโมง แสดงแบบโดยการกำจัดไนโตรเจนใน Acinetobacter sp . y1 . ไม่กี่ผลิตภัณฑ์ที่พบใน nitrifi - กระบวนการประจุบวก อาจจะเนื่องจากการเปลี่ยนแปลงอย่างรวดเร็วในผลิตภัณฑ์ปลายน้ำ เช่น ไนโตรเจน อย่างไรก็ตามการสะสมของไนไตรท์ได้รับการรายงานระหว่างแอมโมเนียออกซิเดชันโดย Bacillus methylotrophicus L7 ( 18 ) , Alcaligenes faecalis c16 ( 19 ) และ marinobacter sp . F6 ( 20 ) , ในขณะที่การผลิตของไนไตรต์และไนเตรต พบเพื่อ rhodococcus sp . cpz24 ( 21 ) ความเข้มข้นของไนโตรเจนสูงกว่าที่ของ NH4 þ - หลังจาก 12 ชั่วโมงโดยอัตราการปลดปล่อยไนโตรเจนจากการสลายตัวของแบคทีเรีย อาจจะรับผิดชอบต่อปรากฏการณ์นี้ ( 7,22 ) ผลที่คล้ายกันได้รับพบ Pseudomonas stutzeri yzn-001 ( 23 ) และ Acinetobacter sp . y16 ( 22 ) .
หลายงานวิจัยพบว่าใช้แบบไนทริฟายเออร์และแปลง NH4 þ - กับบางแหล่งคาร์บอนในช่วงระยะเจริญเติบโต ( 6 )แหล่งคาร์บอนนิยมแบบปริมาณ ไม่เฉพาะสำหรับสิ่งมีชีวิตที่แตกต่างกัน ซิเตรตเป็นที่นิยมใช้เป็นวัสดุอินทรีย์แบบ nitrifi - บวก โดยบางแบบ เช่น จุลินทรีย์ Alcaligenes faecalis หมายเลข 4 แหล่งคาร์บอนที่เหมาะสมสำหรับ rettgeri Pseudomonas sp . สายพันธุ์ YL Providencia และ as-1 เป็นอะซิเตตเทียบกับซิเตรต ( 24 ) อย่างไรก็ตามไม่มีที่ให้คำอธิบายเกี่ยวกับการไนตริฟิเคชั่นแบบแหล่งคาร์บอน อาจ , ปัจจัยที่สำคัญที่สุดในการกำหนดปริมาณแบบอาจเป็นแหล่งคาร์บอน ( 25 ) สิ่งมีชีวิตอาจดำเนินการผ่านกลไกต่าง ๆ nitrificationeaerobic แบบน้ำในแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกัน ( 18 ) ในการทดสอบแหล่งคาร์บอนกรดอินทรีย์ที่มีโครงสร้างง่าย ๆ ที่ปรากฏจะมีประสิทธิภาพมากขึ้นกว่าโพลีแซคคาร์ไรด์ . เหตุผลที่เป็นไปได้คือ กรดอินทรีย์ที่สามารถใช้โดยตรงในขณะที่ไรด์ต้องเปลี่ยนง่ายกว่าสารประกอบแรก ( 26 ) ดีไนตริฟิเคชันสามารถสร้างความเป็นด่าง และเพิ่มความเข้มข้นการใช้ไพรูเวทซิเตรตและอะซิเตทให้สื่อเป็นด่างมากขึ้นแนะนำความเป็นไปได้ของน้ำ . แหล่งคาร์บอนที่ทำให้สื่อรองรับปริมาณด่างและคนอื่น ๆที่ทำให้สื่อเปรี้ยวไม่ได้ มันได้รับรายงานว่าด่างเป็นมงคล เพราะแบบปริมาณแอมโมเนีย ( NH4 nh3 ) ฟรี ไม่þถูกบังคับใช้โดยโม่และใช้ได้มากขึ้นในสภาวะด่าง ( 27 ) อย่างไรก็ตามไบรเออร์ลี่ย์และไม้ ( 25 ) คิดว่าเรื่องนี้ไม่เพียงมีผลต่อ
.