- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
There have been numerous attempts t
There have been numerous attempts to use antagonistic fungi
to control RKNs, but biocontrol agents were initially demonstrated to display lower efficacies than chemical nematicides
against RKNs, preventing the use of only bioagents for nematode
control (Saikia et al., 2013). Thereafter, several studies on the
combination treatments with various practices (soil solarization,
chemical nematicides and biological agents) were conducted to
effectively control RKNs (Anastasiadis et al., 2008; Huang et al.,
2014). Based on the present research, the combination ofS. racemosumand P. lilacinus completely counteracted the negative
impacts of the nematode and was thus as equally effective as
the chemical treatment with fosthiazate. To date, it is the first
proposed method to control plant parasitic nematodes in China
with the combined use of two different fungi. Our results indicate
that the combined use of S. racemosum and P. lilacinus is a
promising strategy for the biological control of RKNs in protected
agricultural systems.
Numerous biological agents have been used to control RKNs. To
date,P. lilacinushas been one of the most effective fungi for the
biological control of plant parasitic nematode populations under
various conditions (Anastasiadis et al., 2008; Cannayane and
Sivakumar, 2001; Kiewnick and Sikora, 2006). According to the
results from the present study,P. lilacinusnegatively affected egg
hatching ofM. incognita. This result is consistent with the results
ofAnastasiadis et al. (2008), who reported that the application of
P. lilacilusbefore tomato transplantation resulted in an 18% reduction in egg hatching. These results imply that the introduction of
antagonistic microorganisms may induce long-term soil suppression of RKN populations (Westphal, 2005). Under field conditions,
the incubation of soil with P. lilacinusbefore planting has been
noted to allow for the sporulation of vegetative colonies and establish fungal population for longer time (Culbreath et al., 1986),
increasing the chances for the infection of eggs. However, inconsistent results have been reported concerning the time when this fungus is best applied under greenhouse or field conditions.
Anastasiadis et al. (2008)observed that the introduction ofP. lilacinus 16 d before transplanting was sufficient to protect cucumber
plants against RKN in commercial greenhouses, whileKiewnick
and Sikora (2006)reported that the application ofP. lilacinus6d
before the transplantation could be effective for RKN control. In
the present study, the combined application of P. lilacinusandS.
racemosum1 d before transplanting was effective at reducing the
population ofM. incognita. The reason for these various reported
times may be attributed to the differences in the materials used
as carriers, which can affect the production of fungal propagules
(1998). In addition, soil physical characteristics and soil fungi stasis
can contribute to variations in the activities of fungi (Hutchinson
et al., 1999).
In the present study, we observed variability in the effect of S.
racemosum, which has been previously reported under field conditions (Huang et al., 2014; Li et al., 2012; Sun et al., 1999). Based on
our previously published work,S. racemosumused alone or combined with avemerctin could be effective to decrease the severity
of nematodes (Huang et al., 2014). In addition, Sun et al. (1999)
reported that all the isolates of S. racemosumobtained from soil
were effective at colonizing eggs ofM. incognita.However, the
same level of efficacy was not observed at higher densities of the
nematode (Sun et al., 2008). On susceptible cucumber plants, less
effect of this fungus was observed at higherM. incognitadensities
compared to lower densities.S. racemosummay colonize the nematode eggs in the soil before hatching so that they can prevent the
nematode from penetration and reduce juveniles invaded in the
roots (Dallemole-Giaretta et al., 2012). Consequently, the control
effect of biological agents may vary according to the nematode
density in the soil.
The present study demonstrated thatB. cereuscells caused a
significantly lower egg hatching rate and significantly higher
concentration-dependent mortality of J2 than the untreated control, suggesting that there are extracellular nematicidal substances
in the filtrate. Previous studies have reported that extracellular
proteins from the supernatant ofB. cereus cultures are active
against RKNs (Csuzi, 1978; Xiao et al., 2012). However, the direct
inoculation of a single biocontrol agent into the soil often leads
to poor activity. Integrated approaches that enhance the activity
of biocontrol agents by combining their application with organic
amendments and soil solarization are more efficient in controlling
soilborne pathogens (Xiao et al., 2012). To our knowledge, the
antimicrobic activity ofP. lilacinusagainst RKNs is less effective
on juveniles than eggs (Holland et al., 1999). Several action mechanisms ofP. lilacinushave been suggested for the biological control
of plant-parasitic nematodes. The main mechanism of action is
direct infection during the egg stage (29). In addition,P. lilacinus
was observed to produce leucinotoxins, chitinases, proteases and
acetic acid to promote the infection (Khan et al., 2004; Park
et al., 2004). In contrast, S. racemosumhas been reported to kill
juveniles as well as to destroy eggs of RKNs (Huang et al., 2014;
Li et al., 2012; Sun et al., 2008). As described in previous in vitro
experiments, S. racemosum metabolites inhibited egg hatching
and reduced the development ofM. incognita, Heterodera glycines
andBursaphelenchus xylophilus(Li et al., 2012; Sun et al., 2008).
Under field conditions, the secondary metabolites produced byS.
racemosumhave been demonstrated to significantly decrease the
reproduction of M. incognitaand stimulate plant vigor (Huang
et al., 2014; Sun et al., 2005). Based on our results, the reduction
of the gall index caused by the treatment with the combination
ofP. lilacinusandS. racemosummay be attributed to their direct
parasitism on nematode eggs. In addition, this treatment can also
possibly induce the systemic resistance of plant (Hashem and
Abo-Elyousr, 2011; Sikora et al., 2007). The fungi ofS. racemosum
can also directly penetrate all stages of the nematode after the formation of mycelium (Kiewnick and Sikora, 2006; Sun et al., 2008).
A number of plant species, including cucumber, tomato and eggplant, have been demonstrated to permit the extensive colonization ofP. lilacinusandS. racemosumin their rhizospheres and are
considered to be good hosts for these fungi (Boone et al., 2005;
Sun et al., 1999, 2008). Therefore, the combination of P. lilacinus
andS. racemosummay increase the reliability and efficacy of the
control ofMeloidogynespp. and provide long-term protection to a
host plant againstMeloidogynespp. In addition to nematode control, the soil drenching withP. lilacinusandS. racemosumimproved
the development of the cucumber plants. Therefore, soil drenching
before transplantation imparted a competitive advantage toP.
lilacinus and S. racemosum in relation to protection against M
to control RKNs, but biocontrol agents were initially demonstrated to display lower efficacies than chemical nematicides
against RKNs, preventing the use of only bioagents for nematode
control (Saikia et al., 2013). Thereafter, several studies on the
combination treatments with various practices (soil solarization,
chemical nematicides and biological agents) were conducted to
effectively control RKNs (Anastasiadis et al., 2008; Huang et al.,
2014). Based on the present research, the combination ofS. racemosumand P. lilacinus completely counteracted the negative
impacts of the nematode and was thus as equally effective as
the chemical treatment with fosthiazate. To date, it is the first
proposed method to control plant parasitic nematodes in China
with the combined use of two different fungi. Our results indicate
that the combined use of S. racemosum and P. lilacinus is a
promising strategy for the biological control of RKNs in protected
agricultural systems.
Numerous biological agents have been used to control RKNs. To
date,P. lilacinushas been one of the most effective fungi for the
biological control of plant parasitic nematode populations under
various conditions (Anastasiadis et al., 2008; Cannayane and
Sivakumar, 2001; Kiewnick and Sikora, 2006). According to the
results from the present study,P. lilacinusnegatively affected egg
hatching ofM. incognita. This result is consistent with the results
ofAnastasiadis et al. (2008), who reported that the application of
P. lilacilusbefore tomato transplantation resulted in an 18% reduction in egg hatching. These results imply that the introduction of
antagonistic microorganisms may induce long-term soil suppression of RKN populations (Westphal, 2005). Under field conditions,
the incubation of soil with P. lilacinusbefore planting has been
noted to allow for the sporulation of vegetative colonies and establish fungal population for longer time (Culbreath et al., 1986),
increasing the chances for the infection of eggs. However, inconsistent results have been reported concerning the time when this fungus is best applied under greenhouse or field conditions.
Anastasiadis et al. (2008)observed that the introduction ofP. lilacinus 16 d before transplanting was sufficient to protect cucumber
plants against RKN in commercial greenhouses, whileKiewnick
and Sikora (2006)reported that the application ofP. lilacinus6d
before the transplantation could be effective for RKN control. In
the present study, the combined application of P. lilacinusandS.
racemosum1 d before transplanting was effective at reducing the
population ofM. incognita. The reason for these various reported
times may be attributed to the differences in the materials used
as carriers, which can affect the production of fungal propagules
(1998). In addition, soil physical characteristics and soil fungi stasis
can contribute to variations in the activities of fungi (Hutchinson
et al., 1999).
In the present study, we observed variability in the effect of S.
racemosum, which has been previously reported under field conditions (Huang et al., 2014; Li et al., 2012; Sun et al., 1999). Based on
our previously published work,S. racemosumused alone or combined with avemerctin could be effective to decrease the severity
of nematodes (Huang et al., 2014). In addition, Sun et al. (1999)
reported that all the isolates of S. racemosumobtained from soil
were effective at colonizing eggs ofM. incognita.However, the
same level of efficacy was not observed at higher densities of the
nematode (Sun et al., 2008). On susceptible cucumber plants, less
effect of this fungus was observed at higherM. incognitadensities
compared to lower densities.S. racemosummay colonize the nematode eggs in the soil before hatching so that they can prevent the
nematode from penetration and reduce juveniles invaded in the
roots (Dallemole-Giaretta et al., 2012). Consequently, the control
effect of biological agents may vary according to the nematode
density in the soil.
The present study demonstrated thatB. cereuscells caused a
significantly lower egg hatching rate and significantly higher
concentration-dependent mortality of J2 than the untreated control, suggesting that there are extracellular nematicidal substances
in the filtrate. Previous studies have reported that extracellular
proteins from the supernatant ofB. cereus cultures are active
against RKNs (Csuzi, 1978; Xiao et al., 2012). However, the direct
inoculation of a single biocontrol agent into the soil often leads
to poor activity. Integrated approaches that enhance the activity
of biocontrol agents by combining their application with organic
amendments and soil solarization are more efficient in controlling
soilborne pathogens (Xiao et al., 2012). To our knowledge, the
antimicrobic activity ofP. lilacinusagainst RKNs is less effective
on juveniles than eggs (Holland et al., 1999). Several action mechanisms ofP. lilacinushave been suggested for the biological control
of plant-parasitic nematodes. The main mechanism of action is
direct infection during the egg stage (29). In addition,P. lilacinus
was observed to produce leucinotoxins, chitinases, proteases and
acetic acid to promote the infection (Khan et al., 2004; Park
et al., 2004). In contrast, S. racemosumhas been reported to kill
juveniles as well as to destroy eggs of RKNs (Huang et al., 2014;
Li et al., 2012; Sun et al., 2008). As described in previous in vitro
experiments, S. racemosum metabolites inhibited egg hatching
and reduced the development ofM. incognita, Heterodera glycines
andBursaphelenchus xylophilus(Li et al., 2012; Sun et al., 2008).
Under field conditions, the secondary metabolites produced byS.
racemosumhave been demonstrated to significantly decrease the
reproduction of M. incognitaand stimulate plant vigor (Huang
et al., 2014; Sun et al., 2005). Based on our results, the reduction
of the gall index caused by the treatment with the combination
ofP. lilacinusandS. racemosummay be attributed to their direct
parasitism on nematode eggs. In addition, this treatment can also
possibly induce the systemic resistance of plant (Hashem and
Abo-Elyousr, 2011; Sikora et al., 2007). The fungi ofS. racemosum
can also directly penetrate all stages of the nematode after the formation of mycelium (Kiewnick and Sikora, 2006; Sun et al., 2008).
A number of plant species, including cucumber, tomato and eggplant, have been demonstrated to permit the extensive colonization ofP. lilacinusandS. racemosumin their rhizospheres and are
considered to be good hosts for these fungi (Boone et al., 2005;
Sun et al., 1999, 2008). Therefore, the combination of P. lilacinus
andS. racemosummay increase the reliability and efficacy of the
control ofMeloidogynespp. and provide long-term protection to a
host plant againstMeloidogynespp. In addition to nematode control, the soil drenching withP. lilacinusandS. racemosumimproved
the development of the cucumber plants. Therefore, soil drenching
before transplantation imparted a competitive advantage toP.
lilacinus and S. racemosum in relation to protection against M
0/5000
มีความพยายามมากมายเพื่อใช้ต่อต้านเชื้อราควบคุม RKNs แต่ biocontrol ตัวแทนก็เริ่มแสดงเพื่อแสดง efficacies ต่ำกว่า nematicides เคมีต่อ RKNs ป้องกันการใช้เฉพาะ bioagents นีมาโทดาควบคุม (Saikia et al., 2013) หลังจากนั้น หลายการศึกษาชุดรักษา ด้วยวิธีต่าง ๆ (solarization ดินnematicides เคมีและชีวภาพแทน) ได้ดำเนินการRKNs (Anastasiadis et al., 2008 ควบคุมได้อย่างมีประสิทธิภาพ หวง et al.,2014) ขึ้นอยู่กับการวิจัยปัจจุบัน ofs ที่ชุดบ่งการ racemosumand P. lilacinus counteracted ลบทั้งหมดผลกระทบของนีมาโทดา และจึงมีประสิทธิภาพที่เท่าเทียมกันเป็นการรักษาทางเคมีกับ fosthiazate วันที่ เป็นครั้งแรกนำเสนอวิธีการควบคุมพืช nematodes เสียงฟู่เหมือนกาฝากในประเทศจีนด้วยการใช้รวมของเชื้อราแตกต่างกันสอง แสดงผลของเรารวมใช้ S. racemosum P. lilacinus ว่าเป็นกลยุทธ์ในการควบคุมของ RKNs ในสัญญาป้องกันระบบเกษตรตัวแทนทางชีวภาพมากมายได้ถูกใช้ในการควบคุม RKNs ให้วัน P. lilacinushas รับหนึ่งของเชื้อราที่มีประสิทธิภาพสูงสุดสำหรับการโรงงานเสียงฟู่เหมือนกาฝากนีมาโทดาประชากรภายใต้การควบคุมทางชีวภาพเงื่อนไขต่าง ๆ (Anastasiadis et al., 2008 Cannayane และSivakumar, 2001 Kiewnick และ Sikora, 2006) ตามผลจากการศึกษาปัจจุบัน ไข่ P. lilacinusnegatively ที่ได้รับผลกระทบฟัก ofM incognita ผลลัพธ์นี้จะสอดคล้องกับผลการofAnastasiadis et al. (2008), ผู้รายงานว่า ใช้ปลูกมะเขือเทศ P. lilacilusbefore ให้ลดลง 18% การฟักไข่ ผลลัพธ์เหล่านี้นัยว่าแนะนำต่อต้านจุลินทรีย์อาจก่อให้เกิดการปราบปรามดินระยะยาวของประชากร RKN (Westphal, 2005) ภายใต้ฟิลด์เงื่อนไขได้รับการบ่มเพาะวิสาหกิจของดินปลูก P. lilacinusbeforeตั้งข้อสังเกตเพื่อให้สามารถ sporulation ของอาณานิคมผักเรื้อรัง และสร้างประชากรเชื้อราเวลานาน (Culbreath et al., 1986),เพิ่มโอกาสการติดเชื้อของไข่ อย่างไรก็ตาม ผลลัพธ์ไม่สอดคล้องกันมีการรายงานเกี่ยวกับเวลาเชื้อรานี้สุดใช้สภาวะเรือนกระจกหรือเขตข้อมูลAnastasiadis et al. (2008) สังเกตที่ ofP แนะนำ lilacinus d 16 ก่อน transplanting ก็เพียงพอเพื่อป้องกันปลิงพืชกับ RKN ในโรงเรือนการพาณิชย์ whileKiewnickและ Sikora (2006) รายงานว่า ofP แอพลิเคชัน lilacinus6dก่อนการปลูกอาจเป็นการควบคุม RKN ในศึกษาปัจจุบัน แอพลิเคชันรวมของ P. lilacinusandSracemosum1 d ก่อน transplanting มีประสิทธิภาพลดการofM ประชากร incognita รายงานสาเหตุต่าง ๆ เหล่านี้ครั้งอาจเกิดจากความแตกต่างของวัสดุที่ใช้เป็นสายการบิน ซึ่งสามารถมีผลต่อการผลิตเชื้อรา propagules(1998) ดิน ลักษณะทางกายภาพและดินเชื้อราดีสามารถนำไปสู่การเปลี่ยนแปลงในกิจกรรมของเชื้อรา (Hutchinsonร้อยเอ็ด al., 1999)ในการศึกษาปัจจุบัน เราสังเกตความแปรผันในผลของ s ได้racemosum ซึ่งมีการรายงานก่อนหน้านี้ภายใต้เงื่อนไขฟิลด์ (หวง et al., 2014 Li et al., 2012 ซันและ al., 1999) ขึ้นอยู่กับงานเผยแพร่ก่อนหน้านี้ S. racemosumused เพียงอย่างเดียว หรือรวมกับ avemerctin อาจมีผลลดความรุนแรงของ nematodes (หวง et al., 2014) นอกจากนี้ ซันและ al. (1999)รายงานว่า ทั้งหมดที่แยกของ S. racemosumobtained จากดินมีประสิทธิภาพที่ colonizing ofM ไข่ incognita อย่างไรก็ตาม การไม่มีสังเกตประสิทธิภาพระดับเดียวกันที่ความหนาแน่นสูงของการนีมาโทดา (Sun et al., 2008) ในการไวต่อแตงกวาพืช น้อยผลของเชื้อรานี้ถูกตรวจสอบที่ higherM incognitadensitiesเมื่อเทียบกับความหนาแน่นต่ำ S. racemosummay colonize ไข่นีมาโทดาในดินก่อนการฟักเพื่อให้พวกเขาสามารถป้องกันการนีมาโทดาจากการเจาะ และลด juveniles บุกในการราก (Dallemole Giaretta et al., 2012) ดังนั้น การควบคุมลักษณะพิเศษของตัวแทนทางชีวภาพอาจแตกต่างกันตามนีมาโทดาความหนาแน่นในดินปัจจุบันเรียนสาธิต thatB cereuscells ที่เกิดจากการลดอัตราการฟักไข่อย่างมีนัยสำคัญ และอย่างมีนัยสำคัญขึ้นอยู่กับความเข้มข้นการตายของ J2 กว่าตัวควบคุมไม่ถูกรักษา แนะนำว่า มีสาร nematicidal extracellularในการสารกรอง การศึกษาก่อนหน้านี้มีรายงานว่า extracellularโปรตีนจาก supernatant ofB วัฒนธรรม cereus ทำงานอยู่กับ RKNs (Csuzi, 1978 เสี่ยวเอส al., 2012) อย่างไรก็ตาม ตรงinoculation ของแทน biocontrol เดียวในดินมักจะนำกิจกรรมดี แนวทางบูรณาการที่ส่งเสริมกิจกรรมตัวแทน biocontrol โดยสมัครกับอินทรีย์แก้ไขและ solarization ดินมีประสิทธิภาพในการควบคุมโรค soilborne (เสี่ยว et al., 2012) ความรู้ของเรา การกิจกรรม antimicrobic ofP lilacinusagainst RKNs มีประสิทธิภาพน้อยบน juveniles กว่าไข่ (ฮอลแลนด์ et al., 1999) OfP กลไกการดำเนินการหลาย lilacinushave ได้แนะนำสำหรับการควบคุมทางชีวภาพของ nematodes พืชเสียงฟู่เหมือนกาฝาก เป็นกลไกหลักของการดำเนินการติดเชื้อโดยตรงระหว่างระยะไข่ (29) นอกจากนี้ P. lilacinusได้สังเกตการผลิต leucinotoxins, chitinases, proteases และกรดอะซิติกเพื่อส่งเสริมการติดเชื้อ (Khan et al., 2004 สวนร้อยเอ็ด al., 2004) ในทางตรงข้าม S. racemosumhas ได้รายงานการฆ่าjuveniles เช่นไปทำลายไข่ของ RKNs (หวง et al., 2014Li et al., 2012 ซันและ al., 2008) ตามที่อธิบายไว้ในก่อนหน้านี้ในทดลอง S. racemosum metabolites ห้ามราคาไข่ฟักไข่ofM พัฒนาลดลง glycines Heterodera incognitaandBursaphelenchus xylophilus (Li et al., 2012 ซันและ al., 2008)ภายใต้เงื่อนไขที่ฟิลด์ metabolites รองผลิต bySracemosumhave ได้แสดงให้เห็นว่าลดลงอย่างมีนัยสำคัญการสืบพันธุ์ของ incognitaand ม.กระตุ้นพืชแข็ง (หวงร้อยเอ็ด al., 2014 ซันและ al., 2005) ตามผลของเรา การลดดัชนีปากปราศรัยน้ำใจเชือดที่เกิดจากการรักษาด้วยชุดofP lilacinusandS เกิดจาก racemosummay ของพวกเขาโดยตรงparasitism บนไข่นีมาโทดา นอกจากนี้ บำบัดนี้สามารถอาจก่อให้เกิดการต่อต้านระบบของโรงงาน (Hashem และAbo-Elyousr, 2011 Sikora et al., 2007) การเชื้อรา ofs ที่บ่งไว้ racemosumโดยตรงยังสามารถเจาะนีมาโทดาในทุกขั้นตอนหลังจากการก่อตัวของ mycelium (Kiewnick และ Sikora, 2006 ซันและ al., 2008)จำนวนสายพันธุ์ของพืช แตงกวา มะเขือเทศ และมะเขือ ยาว มีการแสดงให้อนุญาต ofP สนามอย่างละเอียด lilacinusandS racemosumin rhizospheres และมีการถือเป็นโฮสต์ที่ดีสำหรับเหล่านี้เชื้อรา (Boone et al., 2005ซันและ al., 1999, 2008) ดังนั้น การรวมกันของ P. lilacinusandS racemosummay เพิ่มความน่าเชื่อถือและประสิทธิภาพของการควบคุม ofMeloidogynespp และให้การป้องกันระยะยาวเพื่อการเจ้า againstMeloidogynespp โรงงาน นอกจากควบคุมนีมาโทดา ดินเล่น withP lilacinusandS racemosumimprovedการพัฒนาของพืชแตงกวา ดังนั้น ดินเล่นก่อนปลูก imparted ลูกข่างเปรียบlilacinus และ S. racemosum เกี่ยวกับป้องกัน M
การแปล กรุณารอสักครู่..
There have been numerous attempts to use antagonistic fungi
to control RKNs, but biocontrol agents were initially demonstrated to display lower efficacies than chemical nematicides
against RKNs, preventing the use of only bioagents for nematode
control (Saikia et al., 2013). Thereafter, several studies on the
combination treatments with various practices (soil solarization,
chemical nematicides and biological agents) were conducted to
effectively control RKNs (Anastasiadis et al., 2008; Huang et al.,
2014). Based on the present research, the combination ofS. racemosumand P. lilacinus completely counteracted the negative
impacts of the nematode and was thus as equally effective as
the chemical treatment with fosthiazate. To date, it is the first
proposed method to control plant parasitic nematodes in China
with the combined use of two different fungi. Our results indicate
that the combined use of S. racemosum and P. lilacinus is a
promising strategy for the biological control of RKNs in protected
agricultural systems.
Numerous biological agents have been used to control RKNs. To
date,P. lilacinushas been one of the most effective fungi for the
biological control of plant parasitic nematode populations under
various conditions (Anastasiadis et al., 2008; Cannayane and
Sivakumar, 2001; Kiewnick and Sikora, 2006). According to the
results from the present study,P. lilacinusnegatively affected egg
hatching ofM. incognita. This result is consistent with the results
ofAnastasiadis et al. (2008), who reported that the application of
P. lilacilusbefore tomato transplantation resulted in an 18% reduction in egg hatching. These results imply that the introduction of
antagonistic microorganisms may induce long-term soil suppression of RKN populations (Westphal, 2005). Under field conditions,
the incubation of soil with P. lilacinusbefore planting has been
noted to allow for the sporulation of vegetative colonies and establish fungal population for longer time (Culbreath et al., 1986),
increasing the chances for the infection of eggs. However, inconsistent results have been reported concerning the time when this fungus is best applied under greenhouse or field conditions.
Anastasiadis et al. (2008)observed that the introduction ofP. lilacinus 16 d before transplanting was sufficient to protect cucumber
plants against RKN in commercial greenhouses, whileKiewnick
and Sikora (2006)reported that the application ofP. lilacinus6d
before the transplantation could be effective for RKN control. In
the present study, the combined application of P. lilacinusandS.
racemosum1 d before transplanting was effective at reducing the
population ofM. incognita. The reason for these various reported
times may be attributed to the differences in the materials used
as carriers, which can affect the production of fungal propagules
(1998). In addition, soil physical characteristics and soil fungi stasis
can contribute to variations in the activities of fungi (Hutchinson
et al., 1999).
In the present study, we observed variability in the effect of S.
racemosum, which has been previously reported under field conditions (Huang et al., 2014; Li et al., 2012; Sun et al., 1999). Based on
our previously published work,S. racemosumused alone or combined with avemerctin could be effective to decrease the severity
of nematodes (Huang et al., 2014). In addition, Sun et al. (1999)
reported that all the isolates of S. racemosumobtained from soil
were effective at colonizing eggs ofM. incognita.However, the
same level of efficacy was not observed at higher densities of the
nematode (Sun et al., 2008). On susceptible cucumber plants, less
effect of this fungus was observed at higherM. incognitadensities
compared to lower densities.S. racemosummay colonize the nematode eggs in the soil before hatching so that they can prevent the
nematode from penetration and reduce juveniles invaded in the
roots (Dallemole-Giaretta et al., 2012). Consequently, the control
effect of biological agents may vary according to the nematode
density in the soil.
The present study demonstrated thatB. cereuscells caused a
significantly lower egg hatching rate and significantly higher
concentration-dependent mortality of J2 than the untreated control, suggesting that there are extracellular nematicidal substances
in the filtrate. Previous studies have reported that extracellular
proteins from the supernatant ofB. cereus cultures are active
against RKNs (Csuzi, 1978; Xiao et al., 2012). However, the direct
inoculation of a single biocontrol agent into the soil often leads
to poor activity. Integrated approaches that enhance the activity
of biocontrol agents by combining their application with organic
amendments and soil solarization are more efficient in controlling
soilborne pathogens (Xiao et al., 2012). To our knowledge, the
antimicrobic activity ofP. lilacinusagainst RKNs is less effective
on juveniles than eggs (Holland et al., 1999). Several action mechanisms ofP. lilacinushave been suggested for the biological control
of plant-parasitic nematodes. The main mechanism of action is
direct infection during the egg stage (29). In addition,P. lilacinus
was observed to produce leucinotoxins, chitinases, proteases and
acetic acid to promote the infection (Khan et al., 2004; Park
et al., 2004). In contrast, S. racemosumhas been reported to kill
juveniles as well as to destroy eggs of RKNs (Huang et al., 2014;
Li et al., 2012; Sun et al., 2008). As described in previous in vitro
experiments, S. racemosum metabolites inhibited egg hatching
and reduced the development ofM. incognita, Heterodera glycines
andBursaphelenchus xylophilus(Li et al., 2012; Sun et al., 2008).
Under field conditions, the secondary metabolites produced byS.
racemosumhave been demonstrated to significantly decrease the
reproduction of M. incognitaand stimulate plant vigor (Huang
et al., 2014; Sun et al., 2005). Based on our results, the reduction
of the gall index caused by the treatment with the combination
ofP. lilacinusandS. racemosummay be attributed to their direct
parasitism on nematode eggs. In addition, this treatment can also
possibly induce the systemic resistance of plant (Hashem and
Abo-Elyousr, 2011; Sikora et al., 2007). The fungi ofS. racemosum
can also directly penetrate all stages of the nematode after the formation of mycelium (Kiewnick and Sikora, 2006; Sun et al., 2008).
A number of plant species, including cucumber, tomato and eggplant, have been demonstrated to permit the extensive colonization ofP. lilacinusandS. racemosumin their rhizospheres and are
considered to be good hosts for these fungi (Boone et al., 2005;
Sun et al., 1999, 2008). Therefore, the combination of P. lilacinus
andS. racemosummay increase the reliability and efficacy of the
control ofMeloidogynespp. and provide long-term protection to a
host plant againstMeloidogynespp. In addition to nematode control, the soil drenching withP. lilacinusandS. racemosumimproved
the development of the cucumber plants. Therefore, soil drenching
before transplantation imparted a competitive advantage toP.
lilacinus and S. racemosum in relation to protection against M
to control RKNs, but biocontrol agents were initially demonstrated to display lower efficacies than chemical nematicides
against RKNs, preventing the use of only bioagents for nematode
control (Saikia et al., 2013). Thereafter, several studies on the
combination treatments with various practices (soil solarization,
chemical nematicides and biological agents) were conducted to
effectively control RKNs (Anastasiadis et al., 2008; Huang et al.,
2014). Based on the present research, the combination ofS. racemosumand P. lilacinus completely counteracted the negative
impacts of the nematode and was thus as equally effective as
the chemical treatment with fosthiazate. To date, it is the first
proposed method to control plant parasitic nematodes in China
with the combined use of two different fungi. Our results indicate
that the combined use of S. racemosum and P. lilacinus is a
promising strategy for the biological control of RKNs in protected
agricultural systems.
Numerous biological agents have been used to control RKNs. To
date,P. lilacinushas been one of the most effective fungi for the
biological control of plant parasitic nematode populations under
various conditions (Anastasiadis et al., 2008; Cannayane and
Sivakumar, 2001; Kiewnick and Sikora, 2006). According to the
results from the present study,P. lilacinusnegatively affected egg
hatching ofM. incognita. This result is consistent with the results
ofAnastasiadis et al. (2008), who reported that the application of
P. lilacilusbefore tomato transplantation resulted in an 18% reduction in egg hatching. These results imply that the introduction of
antagonistic microorganisms may induce long-term soil suppression of RKN populations (Westphal, 2005). Under field conditions,
the incubation of soil with P. lilacinusbefore planting has been
noted to allow for the sporulation of vegetative colonies and establish fungal population for longer time (Culbreath et al., 1986),
increasing the chances for the infection of eggs. However, inconsistent results have been reported concerning the time when this fungus is best applied under greenhouse or field conditions.
Anastasiadis et al. (2008)observed that the introduction ofP. lilacinus 16 d before transplanting was sufficient to protect cucumber
plants against RKN in commercial greenhouses, whileKiewnick
and Sikora (2006)reported that the application ofP. lilacinus6d
before the transplantation could be effective for RKN control. In
the present study, the combined application of P. lilacinusandS.
racemosum1 d before transplanting was effective at reducing the
population ofM. incognita. The reason for these various reported
times may be attributed to the differences in the materials used
as carriers, which can affect the production of fungal propagules
(1998). In addition, soil physical characteristics and soil fungi stasis
can contribute to variations in the activities of fungi (Hutchinson
et al., 1999).
In the present study, we observed variability in the effect of S.
racemosum, which has been previously reported under field conditions (Huang et al., 2014; Li et al., 2012; Sun et al., 1999). Based on
our previously published work,S. racemosumused alone or combined with avemerctin could be effective to decrease the severity
of nematodes (Huang et al., 2014). In addition, Sun et al. (1999)
reported that all the isolates of S. racemosumobtained from soil
were effective at colonizing eggs ofM. incognita.However, the
same level of efficacy was not observed at higher densities of the
nematode (Sun et al., 2008). On susceptible cucumber plants, less
effect of this fungus was observed at higherM. incognitadensities
compared to lower densities.S. racemosummay colonize the nematode eggs in the soil before hatching so that they can prevent the
nematode from penetration and reduce juveniles invaded in the
roots (Dallemole-Giaretta et al., 2012). Consequently, the control
effect of biological agents may vary according to the nematode
density in the soil.
The present study demonstrated thatB. cereuscells caused a
significantly lower egg hatching rate and significantly higher
concentration-dependent mortality of J2 than the untreated control, suggesting that there are extracellular nematicidal substances
in the filtrate. Previous studies have reported that extracellular
proteins from the supernatant ofB. cereus cultures are active
against RKNs (Csuzi, 1978; Xiao et al., 2012). However, the direct
inoculation of a single biocontrol agent into the soil often leads
to poor activity. Integrated approaches that enhance the activity
of biocontrol agents by combining their application with organic
amendments and soil solarization are more efficient in controlling
soilborne pathogens (Xiao et al., 2012). To our knowledge, the
antimicrobic activity ofP. lilacinusagainst RKNs is less effective
on juveniles than eggs (Holland et al., 1999). Several action mechanisms ofP. lilacinushave been suggested for the biological control
of plant-parasitic nematodes. The main mechanism of action is
direct infection during the egg stage (29). In addition,P. lilacinus
was observed to produce leucinotoxins, chitinases, proteases and
acetic acid to promote the infection (Khan et al., 2004; Park
et al., 2004). In contrast, S. racemosumhas been reported to kill
juveniles as well as to destroy eggs of RKNs (Huang et al., 2014;
Li et al., 2012; Sun et al., 2008). As described in previous in vitro
experiments, S. racemosum metabolites inhibited egg hatching
and reduced the development ofM. incognita, Heterodera glycines
andBursaphelenchus xylophilus(Li et al., 2012; Sun et al., 2008).
Under field conditions, the secondary metabolites produced byS.
racemosumhave been demonstrated to significantly decrease the
reproduction of M. incognitaand stimulate plant vigor (Huang
et al., 2014; Sun et al., 2005). Based on our results, the reduction
of the gall index caused by the treatment with the combination
ofP. lilacinusandS. racemosummay be attributed to their direct
parasitism on nematode eggs. In addition, this treatment can also
possibly induce the systemic resistance of plant (Hashem and
Abo-Elyousr, 2011; Sikora et al., 2007). The fungi ofS. racemosum
can also directly penetrate all stages of the nematode after the formation of mycelium (Kiewnick and Sikora, 2006; Sun et al., 2008).
A number of plant species, including cucumber, tomato and eggplant, have been demonstrated to permit the extensive colonization ofP. lilacinusandS. racemosumin their rhizospheres and are
considered to be good hosts for these fungi (Boone et al., 2005;
Sun et al., 1999, 2008). Therefore, the combination of P. lilacinus
andS. racemosummay increase the reliability and efficacy of the
control ofMeloidogynespp. and provide long-term protection to a
host plant againstMeloidogynespp. In addition to nematode control, the soil drenching withP. lilacinusandS. racemosumimproved
the development of the cucumber plants. Therefore, soil drenching
before transplantation imparted a competitive advantage toP.
lilacinus and S. racemosum in relation to protection against M
การแปล กรุณารอสักครู่..
มีความพยายามมากมายที่จะใช้ในการควบคุมเชื้อราปฏิปักษ์
rkns แต่ตัวแทนไบโอคอนโทรลในขั้นแรกโดยแสดงผลน้อยกว่าเคมี nematicides
กับ rkns , การป้องกันการใช้เพียง bioagents ควบคุมไส้เดือนฝอย
( saikia et al . , 2013 ) หลังจากนั้น หลายการศึกษาที่ผสมผสานการรักษาด้วยการปฏิบัติต่าง ๆ (
solarization ดินnematicides สารเคมีและสารชีวภาพ ) มีวัตถุประสงค์เพื่อ
มีประสิทธิภาพการควบคุม rkns ( anastasiadis et al . , 2008 ; Huang et al . ,
2014 ) วิจัยปัจจุบันรวมกัน ofs . racemosumand P . lilacinus อย่างสมบูรณ์ต่อต้านผลกระทบเชิงลบของไส้เดือนฝอยและ
จึงเป็นมีประสิทธิภาพเท่าเป็นสารที่มี fosthiazate . ในวันที่มันเป็นครั้งแรก
เสนอวิธีการควบคุมกาฝากพยาธิตัวกลมในประเทศจีน
กับร่วมกับการใช้สองชนิดที่แตกต่างกัน ผลของเราระบุว่าใช้รวมกันของ S .
และ racemosum P . lilacinus เป็นกลยุทธ์ที่มีแนวโน้มในการควบคุมทางชีวภาพในระบบเกษตร rkns ป้องกัน
.
ตัวแทนทางชีวภาพมากมายถูกใช้เพื่อควบคุม rkns .
วันที่หน้าlilacinushas ถูกอย่างใดอย่างหนึ่งของเชื้อราที่มีประสิทธิภาพมากที่สุดสำหรับการควบคุมทางชีวภาพของพืชกาฝากพยาธิตัวกลม
ประชากรภายใต้เงื่อนไขต่าง ๆ ( anastasiadis et al . , 2008 ; และ ( มารยาทของ cannayane
, 2001 ; และ kiewnick ซีคอร่า , 2006 ) ตาม
จากผลการศึกษาปัจจุบัน , หน้า lilacinusnegatively กระทบไข่
ฟัก OFM . incognita . ผลที่ได้นี้ มีความสอดคล้องกับผล
ofanastasiadis et al . ( 2008 ) ที่รายงานว่าใช้
P lilacilusbefore มะเขือเทศปลูกผล 18 % ลดลงในไข่ฟัก ผลลัพธ์เหล่านี้แสดงให้เห็นว่า การปราบปราม
จุลินทรีย์อาจทำให้ดินระยะยาวของประชากรซีเซฟ ( เวสต์เฟิล , 2005 ) ภายใต้เงื่อนไขด้าน
บ่มดินปลูกได้
lilacinusbefore Pไว้ให้สำหรับการสร้างและอาณานิคมและประชากรเชื้อราเวลา ( culbreath et al . , 1986 ) ,
เพิ่มโอกาสสำหรับการติดเชื้อของไข่ ผลไม่สอดคล้องกันมีการรายงานเกี่ยวกับเวลาเมื่อเชื้อรานี้จะดีที่สุดใช้ภายใต้โรงเรือน หรือสภาพสนาม .
anastasiadis et al . ( 2551 ) พบว่า เบื้องต้น p .
rkns แต่ตัวแทนไบโอคอนโทรลในขั้นแรกโดยแสดงผลน้อยกว่าเคมี nematicides
กับ rkns , การป้องกันการใช้เพียง bioagents ควบคุมไส้เดือนฝอย
( saikia et al . , 2013 ) หลังจากนั้น หลายการศึกษาที่ผสมผสานการรักษาด้วยการปฏิบัติต่าง ๆ (
solarization ดินnematicides สารเคมีและสารชีวภาพ ) มีวัตถุประสงค์เพื่อ
มีประสิทธิภาพการควบคุม rkns ( anastasiadis et al . , 2008 ; Huang et al . ,
2014 ) วิจัยปัจจุบันรวมกัน ofs . racemosumand P . lilacinus อย่างสมบูรณ์ต่อต้านผลกระทบเชิงลบของไส้เดือนฝอยและ
จึงเป็นมีประสิทธิภาพเท่าเป็นสารที่มี fosthiazate . ในวันที่มันเป็นครั้งแรก
เสนอวิธีการควบคุมกาฝากพยาธิตัวกลมในประเทศจีน
กับร่วมกับการใช้สองชนิดที่แตกต่างกัน ผลของเราระบุว่าใช้รวมกันของ S .
และ racemosum P . lilacinus เป็นกลยุทธ์ที่มีแนวโน้มในการควบคุมทางชีวภาพในระบบเกษตร rkns ป้องกัน
.
ตัวแทนทางชีวภาพมากมายถูกใช้เพื่อควบคุม rkns .
วันที่หน้าlilacinushas ถูกอย่างใดอย่างหนึ่งของเชื้อราที่มีประสิทธิภาพมากที่สุดสำหรับการควบคุมทางชีวภาพของพืชกาฝากพยาธิตัวกลม
ประชากรภายใต้เงื่อนไขต่าง ๆ ( anastasiadis et al . , 2008 ; และ ( มารยาทของ cannayane
, 2001 ; และ kiewnick ซีคอร่า , 2006 ) ตาม
จากผลการศึกษาปัจจุบัน , หน้า lilacinusnegatively กระทบไข่
ฟัก OFM . incognita . ผลที่ได้นี้ มีความสอดคล้องกับผล
ofanastasiadis et al . ( 2008 ) ที่รายงานว่าใช้
P lilacilusbefore มะเขือเทศปลูกผล 18 % ลดลงในไข่ฟัก ผลลัพธ์เหล่านี้แสดงให้เห็นว่า การปราบปราม
จุลินทรีย์อาจทำให้ดินระยะยาวของประชากรซีเซฟ ( เวสต์เฟิล , 2005 ) ภายใต้เงื่อนไขด้าน
บ่มดินปลูกได้
lilacinusbefore Pไว้ให้สำหรับการสร้างและอาณานิคมและประชากรเชื้อราเวลา ( culbreath et al . , 1986 ) ,
เพิ่มโอกาสสำหรับการติดเชื้อของไข่ ผลไม่สอดคล้องกันมีการรายงานเกี่ยวกับเวลาเมื่อเชื้อรานี้จะดีที่สุดใช้ภายใต้โรงเรือน หรือสภาพสนาม .
anastasiadis et al . ( 2551 ) พบว่า เบื้องต้น p .
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- ทำให้สายตาสั้น
- Smart Beauty ModeIt’s you, at your most
- ความสัมพันธ์ทางการเมืองของทั้งสองประเทศม
- ฉันไม่เก่งเท่าคุณหรอก. แค่ทำได้เท่านั้นเ
- there are neither orthodoxies nor heresi
- Who stars in it
- However, few tests exist which describe
- แปดสิบสอง
- has at least someone in life that stands
- 制定図書
- บ้านเกิดของฉันอยู่ที่กรุงเทพ
- มหัศจรรย์
- If you fail, and edited. You will well.
- คุณได้นำเข้ามันหรือเปล่า
- คุณโกรธฉันหรอ
- ในเบื้องต้นทาง Khun prapai รับไว้พิจารณา
- ฅนเพาะเห็ด
- How you been?!
- Good-day!Thank you so much for your earl
- Pork Fillet
- The cargo storage on shelf which are ris
- What do you understand by the word “cult
- What are the impacts of your food choice
- ทำให้สายตาของคุณเสีย
