MATERIALS AND METHODS
All procedures were approved by the Administration
Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of
Sciences (Jilin, China).
Birds, Diets, and Management
The research was conducted at the Ecological
Research Station for Grassland Farming, Chinese
Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′
E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean
air temperature during the experiment was 25°C.
One hundred twenty Dongbei White male geese (a
local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of
10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of
birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the
birds had no access to pasture (control) while the other
half had access to an alfalfa based pasture (pasture).
Before the start of the experiment, from d 0 to 28,
geese were raised in battery brooders in a temperaturecontrolled
room under standard brooding practices.
At d 28, geese were moved to the pastured pens, and
they were maintained for an additional 42 d until
slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly
contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture
intake. Water and feed were available ad libitum
throughout the experiment and were provided in 2
automatic drinking nipples and an individual hanging
tube feeder, respectively. Approximately one-third of
the top area of the pen was covered with transparent
whitewashed plastic to protect against harsh climatic
conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that
geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without
plant cover. Pasture intake was estimated based on
the evaluation of the levels of biomass present in the
pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008).
Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al.
(2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way
through the experiment), samples of pasture were
collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3
cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The
DM was determined by oven drying at 105°C overnight
(Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was
determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01;
AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according
to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted
by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method.
945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were
determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC
Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08),
and P was measured by converting phosphates into
phosphorus molybdenum blue pigment and measured at
700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09;
AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
MATERIALS AND METHODS
All procedures were approved by the Administration
Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of
Sciences (Jilin, China).
Birds, Diets, and Management
The research was conducted at the Ecological
Research Station for Grassland Farming, Chinese
Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′
E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean
air temperature during the experiment was 25°C.
One hundred twenty Dongbei White male geese (a
local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of
10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of
birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the
birds had no access to pasture (control) while the other
half had access to an alfalfa based pasture (pasture).
Before the start of the experiment, from d 0 to 28,
geese were raised in battery brooders in a temperaturecontrolled
room under standard brooding practices.
At d 28, geese were moved to the pastured pens, and
they were maintained for an additional 42 d until
slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly
contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture
intake. Water and feed were available ad libitum
throughout the experiment and were provided in 2
automatic drinking nipples and an individual hanging
tube feeder, respectively. Approximately one-third of
the top area of the pen was covered with transparent
whitewashed plastic to protect against harsh climatic
conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that
geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without
plant cover. Pasture intake was estimated based on
the evaluation of the levels of biomass present in the
pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008).
Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al.
(2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way
through the experiment), samples of pasture were
collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3
cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The
DM was determined by oven drying at 105°C overnight
(Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was
determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01;
AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according
to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted
by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method.
945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were
determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC
Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08),
and P was measured by converting phosphates into
phosphorus molybdenum blue pigment and measured at
700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09;
AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
การแปล กรุณารอสักครู่..

วัสดุและวิธีการ
ขั้นตอนทั้งหมดได้รับการอนุมัติโดยการบริหาร
CE Offi ของสัตว์ทดลอง สถาบันภาคตะวันออกเฉียงเหนือ
ภูมิศาสตร์และ agroecology , จีน Academy of Sciences ( Jilin , จีน )
.
นก , อาหาร , และการจัดการ
วิจัยที่สถานีวิจัยนิเวศวิทยา
สำหรับทุ่งหญ้าฟาร์ม , จีน Academy ของวิทยาศาสตร์ ( Jilin , จีน ; 44 / 123 / 33 31 ’ n ’
Eและ ความสูง 145 เมตร ) และนาน 42 วัน ทุกวัน หมายถึง
อุณหภูมิอากาศในการทดลอง 25 ° C .
หนึ่งร้อยยี่สิบตงเป่ยห่านตัวผู้สีขาว (
ท้องถิ่นพันธุ์ น้ำหนักตัว = 878 ± 13 g ; 28 D เก่า ) และสุ่ม
แบ่งออกเป็น 2 การรักษาด้วย 6 ปากกา
10 ห่าน ต่อ การรักษา 2 การรักษาประกอบด้วย
นกเลี้ยงอย่างเต็มที่เป็นข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตาม ครึ่งหนึ่งของ
นกไม่เข้าทุ่ง ( ควบคุม ) ในขณะที่อีกครึ่งหนึ่ง
มีการเข้าถึงจากทุ่งหญ้าหญ้า ( หญ้า ) .
ก่อนการทดลอง จาก D 0 ถึง 28 ,
ห่านมีขึ้นในแบตเตอรี่ได้ใน temperaturecontrolled
ห้องภายใต้มาตรฐานทำแนวทางปฏิบัติที่ D
ห่านไป 28 ในทุ่งหญ้าสำหรับปากกา และพวกเขาถูกเก็บรักษาไว้สำหรับเพิ่มเติม
42 D จนฆ่าที่ D 70ปากกาแบบพกพา ( 4 - โดย - 3 - โดย - 0.5 M ,
ให้ 1.2 m2 ต่อนก ) อนุญาตให้นกตรง
ติดต่อ alfalfa ตามทุ่งหญ้า , ทุ่งหญ้า
ส่งเสริมการบริโภค น้ำและอาหารที่มีอยู่อย่างเต็มที่
ตลอดการทดลอง และมี 2
อัตโนมัติดื่มหัวนมและบุคคลแขวน
ป้อนหลอดตามลำดับ ประมาณหนึ่งในสามของ
พื้นที่ด้านบนของปากกาถูกปกคลุมด้วยพลาสติกเพื่อป้องกันสีขาวใส
สภาพอากาศรุนแรง เพื่อส่งเสริมการบริโภคอาหาร ปากกาพกพา
ของการรักษาทุ่งหญ้ามาทุกวัน ดังนั้น
ห่านกินหญ้าทุกวัน ปากกาในการรักษาควบคุม
ตั้งอยู่ในตำแหน่ง xed Fi โดยไม่
ครอบคลุมพืช อาหารบริโภคประมาณตาม
การประเมินระดับของชีวมวลที่มีอยู่ใน
อาหารก่อนและหลังกินหญ้า ( Ponte et al . , 2008 ) . การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหาร
อาหารมียุทธศาสตร์ ตาม Wang et al .
( 2553 ; ตารางที่ 1 ) ที่ D 21 ของการทดลอง ( ครึ่งทาง
ผ่านการทดลอง ) ตัวอย่างที่เก็บจากฟาร์มได้
1-m2 รีโดยการตัดหญ้าที่ 3
ซม. เหนือพื้นดินสำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี ( ตารางที่ 2 )
DM ถูกกำหนดโดยตู้อบลมร้อนที่ 105 ° C ค้างคืน
( วิธี 930.15 ; ไม่ Int . , 1995 ) จึงถูกกำหนดด้วย
0 n วิเคราะห์วิธี 954.01 ;
ไม่ Int . , 1995 ) Crude Fi ber ตั้งใจตาม
Van Soest et al . ( 1991 ) ไขมันดิบ ( CF ) ถูกสกัด
ไดเอทิลอีเธอร์โดยใช้เครื่องมือ ( 1 )
945.16 ; ไม่ Int . , 1995 ) เมทไธโอนีนและไลซีน เป็น
กำหนดโดยการไฮโดรไลซ์ด้วยกรด ( วิธี 982.30 ; โปรตีน
Int . , 1995 ) แคลเซียม ตั้งใจ ( วิธี 968.08 ) ,
p และถูกวัดโดยการแปลงฟอสเฟตใน
ฟอสฟอรัสโมลิบดีนัมสีและวัดที่
700 nm ( วิธี 986.24 ; ไม่ Int . , 1995 ) เกลือ
กำหนดโดยวิธีไม่นานาชาติ ( 973.09 ;
ไม่ Int . , 1995 ) ซาโปนิน เนื้อหาถูกวัดโดยวิธี HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 )แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัด
ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง เป็นวัดที่หน้า
coccygeal กระดูกสันหลังกับ Caliper เวอร์เนียร์ ( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหารร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี
แรงเฉือนเท่ากับปฏิกิริยากรด , สาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน . HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัด
ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 )
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าโดย ตัดหลอดเลือดแดง carotid
, แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออกและความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ ไขมันช่องท้องและกล้ามเนื้อหน้าอกและต้นขาออก
และชั่งน้ำหนักชำแหละซากคิดเป็นร้อยละ
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และกรดไขมัน composition.hplc ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัด
ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 )polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโตและ adfi
, , G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
,ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้
, 2004 )ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนัก
ชำแหละซากหลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน องค์ประกอบทางเคมีในเนื้อกล้ามเนื้อตัวอย่าง
ใช้ DM ( วิธี 930.15 ) , CP ( วิธี
954.01 ) , และ CF ( วิธี 945.16 ) ตาม
องศา เซลเซียส อินเตอร์เนชั่นแนล ( 1995 ) DM ตั้งใจเป็น
BW ขาดทุนหลังจากอบแห้งตัวอย่างของ 50-g ค้างคืน
CP และ CF ตัดสินใจตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ทั้งหมด
ค่าที่แสดงบนพื้นฐานน้ำหนักเปียก
เครื่องวัด . เนื้อของเต้านมกล้ามเนื้อ
อเป็นวัดที่เสียชีวิต 24 H ( pH 24 H
การชันสูตรศพ [ ph24 ] ) ที่ 20 ° C และบันทึก ( crison
microph 2001 crison เครื่องมือ , บาร์เซโลนา , สเปน :
) การใช้รวม ( คู่รูขุมขน
บาง บริษัท แฮมมิลตัน bonaduz , สวิตเซอร์แลนด์ )
เจาะ 3 มม. ( ouhayoun dalle zotte และ 2539 ) .
การวัดสี หลังจาก 1 ชั่วโมงของบาน
เนื้อสีถูกวัดบนพื้นผิวของ
ตัดสด ๆเต้านมกล้ามเนื้อที่อุณหภูมิห้อง ( 20 ° C ) ใช้เป็น chromameter ( Minolta cr-300
; Minolta , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ด้วยการส่องสว่าง D65 และ 8-mm รู
ในวัดหัว การวัดสีเท่ากับ
รายงานในแง่ของความสว่าง ( L * ) , สีแดง ( a * ) และค่าสีเหลือง ( b *
) ในคณะกรรมการความเป็นสากล de
L é clairage L * a * b * ( แบบแข็ง )
( พื้นที่สี CIE 1976 ) .
การสูญเสียอาหารตัวอย่างเนื้อจากแต่ละห่าน
คือชั่งน้ำหนัก สูญญากาศบรรจุในถุงพลาสติกและ
สุกแล้วเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในน้ำอาบไว้ที่ 80 ° C (
Ram í rez et al . , 2004 ) ตัวอย่างเนื้อแล้ว
ลบออกจากน้ำร้อนและเย็นในการวิ่ง
น้ำ เนื้อแล้วถ่ายจากกระเป๋าเปื้อน
แห้งและชั่งน้ำหนัก การ สูญเสียคือคำนวณเป็น
ความแตกต่างในน้ำหนักระหว่าง precooked และ
ลบ postcooked น้ำหนักแห้งและถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักผ่าน
.
แรงเฉือน . เนื้อหมูแช่แข็งจำนวน
ละลายข้ามคืน ( ประมาณ 16 ชั่วโมง ) ในเย็นที่
4 ° C อย่างน้อย 3 ชิ้น ( 1 1 3 ซม. ) จากแต่ละตัวอย่าง
ถูกตัดขนานกับแนวตามยาวของ
กล้ามเนื้อ Fi ผ ชิ้นถูกตัดตั้งฉาก
ไปยังกล้ามเนื้อ Fi ber ปฐมนิเทศ ( Instron 1 ; ผล
Corporation , Norwood , MA ) กับ วอร์เนอร์ bratzler
ตัดอุปกรณ์ ( สวิก roell กลุ่ม Ulm Baden ,
วัวร์เทมแบร์ก ประเทศเยอรมนี ) และมะ
การแปล กรุณารอสักครู่..
