2.1. Germinated rough rice preparat

2.1. Germinated rough rice preparation
Rough rice (cv. Ilpumbyeo, O. sativa L.) was grown at
Jeungpyeong, Chungbuk, Korea during the 2011 growing season.
For germination, the seed was soaked in distilled water (seed water
ratio, 1:5, w/v) at 20
C for three days; the water was changed
every 24 h. The soaked seeds were placed in trays and germinated
in a seed germinator (WGC 450, Dahan Inc., Seoul, Korea) for two
days at 37
C and 80% relative humidity (Kim et al., 2011a, 2011b).
2.2. High hydrostatic pressure treatment
HPT of the germinated rough rice was carried out using a pres-
sure treatment system (super-high-pressure liquefying system,
TFS-2L, Inoway, Inc., Anyang, Korea) compressed using fluid; the
temperature of the pressure chamber was maintained at 37
C
under the same conditions as germination. The germinated rough
rice (20 g) was mixed with 20 mL of distilled water. The mixtures
were transferred to an aluminum foil-laminated film (Newpack,
Seoul, Korea) and heat-sealed in vacuum packaging (Chamber-
type vacuum package, DP-901, Dew Pack Korea machinery Co.,
Seoul, Korea.). The packaged samples were subjected to 0.1, 10,
30, 50, and 100 MPa of pressure at 37
C for 24 h. HPT was carried
out immediately after germination to prevent enzyme inactivation.
All samples were dried at 50
C for two days using a hot air dryer
(WFO-459PD, EYELA, Tokyo, Japan) and stored at
20
C in a deep
freezer (ultralow temperature freezer, MDF-393, Sanyo, Akaiwa,
Japan). Also, the samples were ground using the hammer mill
(100 mesh) before analysis of phenolic acid and vitamin E.
2.3. Determination of phenolic acids
The phenolic acid contents were measured according to the
methods described by Seo, Ko, and Song (2011) and Jung, Hong,
and Cho (2012) with slight modifications. The powdered samples
(4 g) were extracted three times with 90% methanol (40 mL) at
25
C for 1 h using an ultrasonic bath (SD-350H; Seong Dong,
Seoul, Korea). The extracts were then filtered using the watman
No.4 filter paper, combined, and concentrated using a rotary
evaporator under vacuum. The residue was dissolved in 5 mL of
distilled water and extracted three times with 10 mL of diethyl
ether/ethyl acetate solvent (50:50, v/v) using the phase separation
between water and ether/ethyl acetate solvent. The supernatant
layer was evaporated using a rotary evaporator under vacuum.
The residues were dissolved in methanol and filtered through a
0.45 lm syringe filter (Millipore, Billerica, MA, USA). The phenolic
acid compositions were determined using an HPLC system. The
analytical column was an ODS column (5 lm, 4.6 mm  250 mm,
Agilent Technologies). Gradient elution was employed using
solvent A (water containing 0.1% (v/v) acetic acid) and solvent B
(acetonitrile containing 0.1% (v/v) acetic acid). The gradient
program was as follows: 0–2 min, 92% to 90% A in B (gradient);
2–27 min, 90% to 70% A in B (gradient); 27–50 min, 70% to 10% A
in B (gradient); 50–51 min, 10% to 0% A in B (gradient);
51–60 min, 0% A in B (isocratic); and 60–70 min, 0–92% A in B
(gradient). The flow rate was kept at 1 mL/min, and the injection
volume was 20 lL. The UV detector was set at 280 nm. The pheno-
lic acid standard mixture containing gallic acid, chlorogenic acid,
(+)-catechin, caffeic acid, p-coumaric acid, rutin, ferulic acid,
salicylic acid, naringin, hesperidin, myricetin, quercetin, trans-
cinnamic acid, naringenin, and kaempferol was prepared in
HPLC-grade methanol. The concentrations of phenolic acid were
determined by standard curves obtained by injecting different
concentrations (10–100 lg/mL) of the phenolic acid standard.
Peaks were verified by adding the standard phenolic acids to the
samples, and each peak area was calculated in relation to a
standard peak area. The total phenolic acid content was calculated
by adding the amounts of all phenolic acid components.
2.4. Determination of vitamin E
The vitamin E contents in the samples were determined using
the direct solvent extraction method (Lee, Landen, Phillips, &
Eitenmiller, 1998). A 2.5 g sample was added to a 50 mL conical
tube and mixed with 2 mL of hot water (80
C) after which 5 mL
of isopropanol was added to the mixture. Approximately 2.5 g of
anhydrous magnesium sulfate was added, followed by 25 mL of
hexane/ethyl acetate solvent (90:10, v/v) containing 0.01% buty-
lated hydroxytoluene (BHT). The mixture was homogenized using
a Polytron homogenizer for 1 min. After extraction, the mixture
was centrifuged at 2220g for 10 min. The residue was repeatedly
extracted using the same procedure. The combined filtrate was
transferred to a 50 mL volumetric flask and massed up to volume
of 50 mL with the extraction solvent. A 4 mL aliquot of the com-
bined filtrates was evaporated with nitrogen gas, adjusted to the
appropriate concentration of the assay samples using the mobile
phase, and filtered through a 0.45 mm PTFE membran

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.1. งอกเตรียมข้าวหยาบข้าวหยาบ (พันธุ์ Ilpumbyeo โอ sativa L.) ถูกปลูกที่Jeungpyeong, Chungbuk เกาหลีระหว่าง 2011 ฤดูกาลเติบโตสำหรับการงอก เมล็ดแช่ในน้ำกลั่น (น้ำเมล็ดพันธุ์อัตราส่วน 1:5, w/v) ที่ 20 C สามวัน เปลี่ยนน้ำทุก 24 ชม วางในถาดแช่เมล็ด และงอกใน germinator เมล็ด (ส่วน 450, Dahan Inc. โซล เกาหลี) สำหรับ 2วันที่ 37 C และ 80% ความชื้นสัมพัทธ์ (Kim et al. 2011a, 2011b)2.2 รักษาความดันสูงHPT หยาบข้าวเปลือกงอกได้ดำเนินการใช้เค้น-แน่ใจว่าระบบบำบัด (ระบบซุปเปอร์สูงแรงดัน liquefyingTFS-2L, Inoway, Inc. ยาง เกาหลี) บีบอัดโดยใช้ของไหล การอุณหภูมิของห้องความดันถูกเก็บรักษาไว้ที่ 37 Cภายใต้เงื่อนไขเดียวกันเป็นการงอก หยาบเปลือกงอกข้าว (20 กรัม) ถูกผสมกับน้ำกลั่น 20 มล. ส่วนผสมถูกโอนย้ายไปเป็นอลูมิเนียมฟอยล์ฟิล์มลามิเนต (Newpackโซล เกาหลี) และ heat-sealed ในบรรจุภัณฑ์ (หอการค้า-แพคเกจสูญญากาศชนิด DP-901 น้ำค้างชุดเกาหลีเครื่องจักร Co.โซล เกาหลี) ตัวอย่างบรรจุภัณฑ์ถูก 0.1, 1030, 50 และ 100 MPa แรงกดที่ 37 C 24 h. HPT ดำเนินการออกการงอกหลังทันทีเพื่อป้องกันการยกเลิกการเรียกเอนไซม์ตัวอย่างทั้งหมดก็แห้งที่ 50 C สองวันโดยใช้ลมร้อนเป่า(WFO 459PD, EYELA โตเกียว ญี่ปุ่น) และเก็บไว้ที่ 20 C ในลึกตู้แช่แข็ง (อุณหภูมิกระจายตู้แช่ MDF-393 ซันโย อะไค วะญี่ปุ่น) นอกจากนี้ ตัวอย่างถูกพื้นใช้ค้อนโรงสี(ตาข่าย 100) ก่อนการวิเคราะห์กรดฟีโนลิกและวิตามินอี2.3. ความมุ่งมั่นของกรดฟีโนลิกเนื้อกรดฟีนอถูกวัดตามวิธีการอธิบายไว้ โดย Seo โกะ และเพลง (2011) และ ว่าว ฮ่องกงและโจ (2012) การแก้ไขเล็กน้อย ตัวอย่างผง(4g) ที่สกัดสามครั้ง ด้วยเมทานอล 90% (40 มล.) ที่25 C สำหรับ h 1 ใช้อาบน้ำอัลตราโซนิก (SD - 350H เซืองดงโซล เกาหลี) จากนั้นกรองสารสกัดโดยใช้การ watmanกระดาษกรองเบอร์ 4 รวม และเข้มข้นโดยใช้หมุนการระเหยภายใต้สุญญากาศ ละลายใน 5 มล.ของสารตกค้างน้ำกลั่นและสกัดสามเท่ากับ 10 mL ของ diethylทำละลายอีเทอร์/เอทิลอะซิเตท (50: 50, v/v) โดยใช้การแยกขั้นตอนระหว่างน้ำและอีเทอร์/เอทิลอะซิเตทตัวทำละลาย การ supernatantชั้นคือระเหยโดยใช้เครื่องระเหยสารแบบภายใต้สุญญากาศตกค้างละลายในเมทานอล และถูกกรองผ่าน0.45 lm เข็มตัวกรอง (มิลลิพอร์ Billerica, MA, USA) ของฟีนอลองค์ประกอบกรดถูกใช้ระบบ HPLC การวิเคราะห์คอลัมน์คือ คอลัมน์ ODS (lm, 4.6 มม. 5 มม. 250เทคโนโลยี Agilent) ไล่ระดับสีชะถูกจ้างโดยใช้ตัวทำละลายตัว (น้ำที่มี 0.1% (v/v) กรดอะซิติก) และตัวทำละลาย B(acetonitrile ที่ประกอบด้วยกรดซิตริก 0.1% (v/v)) ไล่ระดับสีโปรแกรมมีดังนี้: 0-2 นาที 92% ถึง 90% A ใน B (ไล่);2 – 27 นาที 90% ถึง 70% A ใน B (ไล่); นาที 27-50, 70% ถึง 10% Aใน B (ไล่); นาที 50 – 51, 10% ถึง 0% A ใน B (ไล่);51 – 60 นาที 0% A ใน B (isocratic); นาที 60-70, 0 – 92% A ใน Bไล่ระดับ (สี) อัตราการไหลถูกกำหนดไว้ที่ 1 มิลลิลิตร/นาที และการฉีดจุได้ 20 จะ ตั้งเครื่องตรวจจับ UV ที่ 280 nm Pheno-lic มาตรฐานผสมกรด gallic กรด กรดขึ้น ที่ประกอบด้วย(+) -สารสกัดจาก กรด caffeic กรด p-coumaric, rutin กรด ferulicกรด naringin, hesperidin, myricetin โลหิต ทรานส์-กรดทรานส์-ซินนามิก naringenin และ kaempferol จัดเตรียมในเมทานอลเกรด HPLC มีความเข้มข้นของกรดฟีโนลิกกำหนด โดยเส้นโค้งมาตรฐานที่ได้รับ โดยการฉีดแตกต่างกันความเข้มข้น (10 – 100 lg/มิลลิลิตร) ของกรดฟีนอมาตรฐานยอดถูกตรวจสอบ โดยการเพิ่มกรดฟีนอมาตรฐานเพื่อการคำนวณตัวอย่าง และแต่ละพื้นที่สูงสุดในความสัมพันธ์กับการที่ตั้งมาตรฐานสูงสุด คำนวณรวมเนื้อหากรดฟีโนลิกโดยการเพิ่มจำนวนของส่วนประกอบกรดฟีโนลิกทั้งหมด2.4. ความมุ่งมั่นของวิตามินอีเนื้อหาวิตามิน E ในตัวอย่างกำหนดโดยใช้วิธีการสกัดตัวทำละลายโดยตรง (Lee, Landen ฟิลลิปส์ &Eitenmiller, 1998) ตัวอย่าง 2.5 g ถูก 50 มล.กรวยหลอด และผสมกับ 2 mL ของน้ำร้อน (80 C) หลังจากที่ 5 มล.ของ isopropanol ถูกส่วนผสม ประมาณ 2.5 กรัมแมกนีเซียมซัลเฟตไดถูกบันทึก ตาม ด้วย 25 mLเฮกเซน/เอทิลอะซิเตทตัวทำละลาย (90:10, v/v) ที่มี 0.01% buty-เกี่ยวข้องกน hydroxytoluene (บาท) ส่วนผสมถูก homogenized ใช้เครื่อง homogenizer Polytron 1 นาที หลังจากสกัด ส่วนผสมแก้ไขจากที่ 2220g 10 นาที สารตกค้างถูกซ้ำ ๆสกัดโดยใช้กระบวนการเดียวกัน เป็นการกรองที่รวมโอนไปในขวดแก้ววัดปริมาตร 50 มล. และพ่วงหน้าพ่วงหลังถึงไดรฟ์ข้อมูลของ 50 มล.ด้วยตัวทำละลายสกัด ส่วนลงตัว 4 mL ของ com-bined filtrates ถูกระเหย ด้วยก๊าซไนโตรเจน ปรับตัวความเข้มข้นที่เหมาะสมของตัวอย่างทดสอบโดยใช้มือถือระยะ และกรองผ่าน membran PTFE เป็น 0.45 มม.

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.1 . ข้าวงอก เตรียม หยาบข้าวหยาบ ( พันธุ์ ilpumbyeo , O . sativa L . ) ที่ปลูกในjeungpyeong , Chungbuk เกาหลีในระหว่างการ 2011 ฤดูปลูก .สำหรับการงอกของเมล็ด เมล็ดถูกแช่ในน้ำกลั่น ( น้ำ เมล็ดอัตราส่วน 1 : 5 W / V ) ที่อุณหภูมิ 20 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 3 วัน น้ำก็จะเปลี่ยนไปทุก 24 ชั่วโมง แช่อยู่ในถาดเมล็ดงอกในเมล็ด germinator ( WGC 450 , ดาแฮนอิงค์ , โซล , เกาหลีใต้ ) สำหรับสองวัน ที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส และความชื้นสัมพัทธ์ 80 เปอร์เซ็นต์ ( Kim et al . , 2011a 2011b , )2.2 . รักษาความดันสูงHPT ของข้าวงอกขรุขระ พบการใช้ประธาน -ระบบการรักษาว่า ซุปเปอร์ liquefying แรงดันสูงระบบtfs-2l inoway , บริษัท Anyang , เกาหลีใต้ ) โดยใช้ของไหลอัด ;อุณหภูมิของความดันไว้ที่ 37 องศาเซลเซียสภายใต้เงื่อนไขเดียวกับการงอก การงอกของหยาบข้าว ( 20 กรัม ) ผสมกับ 20 มล. น้ำกลั่น ผสมถูกย้ายไปเป็นอลูมิเนียมฟอยล์ลามิเนต ( newpack ฟิล์ม ,โซล , เกาหลีใต้ ) และความร้อนปิดผนึกในบรรจุภัณฑ์สูญญากาศ ( ห้อง -ประเภทแพคเกจสูญญากาศ dp-901 , น้ำค้าง , แพ็คเกาหลีเครื่องจักร Co . ,โซล , เกาหลีใต้ ) บรรจุตัวอย่างถูก 0.1 1030 , 50 และ 100 MPa ของความดันที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 24 ชั่วโมง HPT าทันทีหลังจากที่งอกป้องกันการยับยั้งเอนไซม์ .ตัวอย่างแห้งที่อุณหภูมิ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสองวัน โดยใช้เครื่องอบแห้งลมร้อน( wfo-459pd eyela , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 20 องศาเซลเซียส ในลึกตู้แช่ ( ultralow อุณหภูมิตู้แช่ mdf-393 akaiwa ซันโย ,ญี่ปุ่น ) นอกจากนี้ กลุ่มตัวอย่าง โดยใช้เครื่องบดดิน( 100 mesh ) ก่อนการวิเคราะห์กรดฟีนอล และวิตามินอี2.3 การหาปริมาณกรดฟีนอลิกเนื้อหากรดฟีโนลิก วัดที่ไปตามวิธีการที่อธิบายโดย โซ โค และเพลง ( 2011 ) และจองโรงแรม ,และโช ( 2012 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ตัวอย่างแป้ง( 4 ) กรัมสกัด 3 ครั้ง กับ 90% เมทานอล ( 40 ml )25 C เป็นเวลา 1 ชั่วโมง โดยใช้อ่างอัลตราโซนิก ( sd-350h ; ซองดงโซล , เกาหลีใต้ ) สารสกัดจาก watman แล้วกรองโดยใช้4 ไส้กรองกระดาษ , รวมและเข้มข้นใช้หมุนเครื่องระเหยสุญญากาศ สารตกค้างละลายใน 5 มิลลิลิตรกลั่นและสกัด 3 ครั้งกับ 10 ml ของไดอีเทอร์เอทิลอะซิเตตเป็นตัวทำละลาย ( 50 / V / V ) โดยใช้การแยกเฟสระหว่างน้ำและอีเทอร์ / เอทิลอะซิเตตเป็นตัวทำละลาย และน่านชั้นใช้เครื่องระเหยแบบสุญญากาศและละลายในเมทานอล และกรองผ่าน0.45 LM เข็มตัวกรอง ( มิลลิ , โตเกียว , MA , USA ) ส่วนฟีโนลิกองค์ประกอบกรดถูกใช้โดยระบบ ที่วิเคราะห์คอลัมน์คอลัมน์ ODS ( 5 อิม 4.6 มม. 250 มิลลิเมตรAgilent Technologies ) ใช้เป็นเครื่องมือในการไล่ระดับตัวทำละลาย ( น้ำที่มี 0.1 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) กรดและตัวทำละลาย B )( ไนที่มี 0.1 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) กรดอะซิติก ) การไล่ระดับสีโปรแกรมมีดังนี้ : 1 – 2 นาที 92 % 90 % ใน B ( ไล่สี )2 – 27 นาที 90% 70% ใน B ( สี ) ; 27 – 50 นาที 70 % 10 % เป็นใน B ( สี ) ; 50 - 51 นาที 10 % เป็น 0 % ใน B ( ไล่สี )51 - 60 นาที , 0 % ใน B ( Isocratic ) ; และ 60 – 70 นาที 0 – 92% ในข( สี ) อัตราการไหลที่ถูกเก็บไว้ที่ 1 มิลลิลิตรต่อนาที และฉีดปริมาณ 20 จะ เครื่องตรวจจับรังสี UV ไว้ที่ 280 nm . การ pheno -เพื่อมาตรฐานส่วนผสมที่มีกรด chlorogenic acid กรดแกลลิค ,( + ) - Catechin , กรด Caffeic , p-coumaric กรด ferulic acid รูติน , , ,กรด salicylic พันธุ์ hesperidin ไมริซีทิน , , quercetin , trans -ซินนามิกกรด naringenin และเคมเฟอรอลที่เตรียมไว้ในส่วนเกรด HPLC . ความเข้มข้นของกรดฟีนอลคือโดยกำหนดมาตรฐานโค้งได้โดยการฉีดที่แตกต่างกันความเข้มข้น ( 10 – 100 LG / ml ) ของมาตรฐานกรดฟีนอล .ยอดถูกตรวจสอบ โดยการเพิ่มมาตรฐานให้ฟีโนลิก กรดตัวอย่าง และแต่ละพื้นที่มีค่าสูงสุดในความสัมพันธ์กับพื้นที่สูงสุดมาตรฐาน เนื้อหาทั้งหมดกรดฟีโนลิก คือคำนวณโดยการเพิ่มปริมาณของกรดฟีนอลิก ส่วนประกอบ2.4 . การหาปริมาณวิตามินอีวิตามิน E เนื้อหาในตัวอย่างใช้โดยการสกัดด้วยตัวทำละลาย ( ลี , ประเทศ , Phillips , และeitenmiller , 1998 ) 2.5 G จำนวนเพิ่มเป็น 50 มิลลิลิตร ทรงกรวยท่อและ 2 มิลลิลิตร ผสมกับน้ำร้อน ( 80 C ) หลังจากที่ 5 มล.ของไอโซโพรพานอลถูกเพิ่มลงในส่วนผสม ประมาณ 2.5 กรัมแมกนีเซียมซัลเฟต anhydrous เพิ่ม ตามด้วย 25 มิลลิลิตรเฮกเซน / เอทิลอะซิเตทตัวทำละลาย ( รูป v / v ) ที่มีรองเท้าปิด - 0.01 %สายเรตไฮดรอกซีโทลูอีนเปรียบเทียบ ( บาท ) ส่วนผสมจะถูกบดโดยใช้เป็น polytron Homogenizer 1 นาทีหลังจากการสกัด , ผสมเป็นระดับที่ 2220g 10 นาทีที่เหลือก็ซ้ำๆสกัดโดยใช้วิธีการเดียวกัน หนักรวม คือถ่ายโอนไปยังขวด 50 มล. ปริมาตรและปริมาณ massed ตั้งขึ้น50 ml ด้วยตัวทำละลายในการสกัด 4 ml ส่วนลงตัวของข่าวbined นำมาระเหยสารละลายที่มีการปรับให้แก๊สไนโตรเจนความเข้มข้นที่เหมาะสมของการทดสอบ ตัวอย่างการใช้โทรศัพท์มือถือเฟส และกรองผ่าน membran PTFE 0.45 มม.