(JEM-2100, JEOL) after 3 days incub

(JEM-2100, JEOL) after 3 days incubation on TYEG agar
medium at 30 °C. The presence of flagella was investigated
by TEM. Gram staining was carried out by using a standard
procedure (Hucker and Conn 1923). Growths at different
temperature (4, 10, 15, 20, 25, 28, 30, 37, 45 and 50 °C) were
tested on TYEG agar medium for 15 days. Salt-tolerance
tests were examined at different NaCl concentrations (0, 0.5,
1, 1.5, 2, 3, 5, 7, 9 and 10 % w/v) TYEG agar medium at
30 °C. The pH range and optimum for growth were examined
at pH 4.0–13.0 by using the buffer systems as described
by Xu et al. (2005). All the tests were performed at 30 °C for
3 days by culturing the strains on TYEG medium. Carbon
source utilization was investigated by the methods described
by Shirling and Gottlieb (1966) and Locci (1989). Biolog
GEN III MicroPlates™ were also used for characterization
of single-carbon source assimilation and chemical sensitivity
assays, according to the manufacturer’s instructions, plates
were incubated at 30 °C and read after 48 h. Nitrogen source
utilization was determined according to Williams et al.
(1989).Catalase activity was detected by the production of
bubbles after the addition of a drop of 3 % (v/v) H2O2. Oxidase
activity was determined by the oxidation of tetramethylp-
phenylenediamine. Tests for hydrolysis of cellulose, gelatin,
starch and Tweens 20, 40 and 80, milk coagulation and
peptonization, utilization of urea and nitrate reduction, were
performed as described by Gonzalez et al. (1978). Other biochemical
characteristics were determined by using the API
20NE and API 50CH systems (bioMérieux, France) according
to the manufacturer’s instructions.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

(JEM-2100, JEOL) หลังจากฟักตัว 3 วันใน TYEG agarกลางที่ 30 องศาเซลเซียส มีการตรวจสอบสถานะของ flagellaโดยยการ การย้อมสีกรัมถูกดำเนินการ โดยใช้มาตรฐานขั้นตอน (Hucker และ Conn 1923) เจริญเติบโตที่แตกต่างกันอุณหภูมิ (4, 10, 15, 20, 25, 28, 30, 37, 45 และ 50 ° C) ได้ทดสอบบน TYEG agar กลางวัน 15 เกลือยอมรับมีการตรวจสอบทดสอบที่ความเข้มข้น NaCl แตกต่างกัน (0, 0.51, 1.5, 2, 3, 5, 7, 9 และ 10% w/v) TYEG agar กลางที่30 องศาเซลเซียส ช่วงการวัดและเหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตถูกตรวจสอบที่ pH 4.0-13.0 โดยระบบบัฟเฟอร์ดังที่โดย Xu et al. (2005) ดำเนินการทดสอบที่ 30 ° C สำหรับ3 วัน โดย culturing สายพันธุ์บนกลาง TYEG คาร์บอนการใช้ประโยชน์แหล่งถูกตรวจสอบ โดยวิธีอธิบายไว้Shirling และ Gottlieb (1966) และ Locci (1989) Biologนอกจากนี้ยังใช้ GEN III MicroPlates ™สำหรับการจำแนกความสำคัญแหล่งเดียวคาร์บอนผสมกลมกลืนและเคมีของassays ตามคำแนะนำของผู้ผลิต แผ่นincubated ที่ 30 ° C และอ่านหลังจาก 48 h. แหล่งไนโตรเจนใช้ประโยชน์ได้กำหนดตามวิลเลียมส์ et al(1989)กิจกรรม catalase พบการผลิตฟองอากาศหลังจากการเพิ่มลดลง 3% (v/v) H2O2 Oxidaseกิจกรรมถูกกำหนด โดยการเกิดออกซิเดชันของ tetramethylp-phenylenediamine สำหรับไฮโตรไลซ์เซลลูโลส ตุ๋นแป้งและ Tweens 20, 40 และ 80 นมแข็งตัวของเลือด และpeptonization ยูเรียและไนเตรตลด ที่ใช้ประโยชน์ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้โดย Gonzalez et al. (1978) อื่น ๆ ชีวเคมีลักษณะที่กำหนด โดยใช้ API20NE และระบบ 50CH API (bioMérieux ฝรั่งเศส) ตามให้คำแนะนำของผู้ผลิต

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

(JEM-2100, JEOL) หลังจากบ่ม 3 วัน TYEG วุ้น
ขนาดกลางวันที่ 30 ° C การปรากฏตัวของ flagella ถูกตรวจสอบ
โดย TEM การย้อมสีแกรมได้รับการดำเนินการโดยใช้มาตรฐาน
ขั้นตอน (Hucker และเรือ 1923) การเจริญเติบโตที่แตกต่างกัน
อุณหภูมิ (4, 10, 15, 20, 25, 28, 30, 37, 45 และ 50 ° C) ได้รับการ
ทดสอบในกลาง TYEG วุ้นเป็นเวลา 15 วัน เกลืออดทน
การทดสอบมีการตรวจสอบความเข้มข้นโซเดียมคลอไรด์ที่แตกต่างกัน (0, 0.5,
1, 1.5, 2, 3, 5, 7, 9 และ 10% w / v) กลาง TYEG วุ้นที่
30 องศาเซลเซียส และช่วง pH ที่เหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตมีการตรวจสอบ
ที่มีค่า pH 4.0-13.0 โดยใช้ระบบบัฟเฟอร์ตามที่อธิบายไว้
โดย Xu และคณะ (2005) การทดสอบทั้งหมดได้ดำเนินการที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา
3 วันโดยสายพันธุ์ที่เพาะเลี้ยงบนอาหาร TYEG คาร์บอน
การใช้แหล่งที่มาได้รับการตรวจสอบโดยวิธีการที่อธิบาย
โดย Shirling และ Gottlieb (1966) และ Locci (1989) Biolog
GEN III Microplates ™ถูกนำมาใช้สำหรับลักษณะ
ของการดูดซึมแหล่งคาร์บอนเดียวและความไวต่อสารเคมี
การตรวจตามคำแนะนำของผู้ผลิตแผ่น
บ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสและอ่านหลังจาก 48 ชั่วโมง แหล่งไนโตรเจน
การใช้ที่ถูกกำหนดตามที่วิลเลียมส์ et al.
(1989) กิจกรรม .Catalase ถูกตรวจพบโดยการผลิตของ
ฟองหลังจากที่นอกเหนือจากการลดลง 3% (v / v) H2O2 oxidase
กิจกรรมถูกกำหนดโดยการเกิดออกซิเดชันของ tetramethylp-
Phenylenediamine การทดสอบการย่อยเซลลูโลสเจลาติน,
แป้งและ Tweens 20, 40 และ 80, แข็งตัวนมและ
peptonization การใช้ปุ๋ยยูเรียและการลดไนเตรตได้รับการ
ดำเนินการตามที่อธิบายไว้โดยกอนซาเลและคณะ (1978) ชีวเคมีอื่น ๆ
ลักษณะได้รับการพิจารณาโดยใช้ API
20NE และ API ระบบ 50CH (bioM? rieux, ฝรั่งเศส) ตาม
คำแนะนำของผู้ผลิต

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

( jem-2100 จอล , ) หลังจาก 3 วันบ่มเพาะบนอาหารวุ้น
tyeg ขนาดกลางที่ 30 องศา มีแฟลกเจลลาศึกษา
โดย TEM . กรัม staining โดยใช้กระบวนการมาตรฐาน
( hucker และเรือ 1923 ) การเจริญเติบโตที่อุณหภูมิแตกต่างกัน
( 5 , 10 , 15 , 20 , 25 , 28 , 30 , 38 , 45 และ 50 ° C )
ทดสอบบนอาหารวุ้น tyeg ปานกลางเป็นเวลา 15 วัน
ทนเค็มแบบทดสอบที่ความเข้มข้นของเกลือที่แตกต่างกัน (
0 , 0.5 , 1 , 1.5 , 2 , 3 , 5 , 7 , 9 และ 10 % w / v )
tyeg อาหารวุ้นที่ 30 องศา ช่วง pH ที่เหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตและมีวัตถุประสงค์ที่ pH 4.0 –
ทั้งโดยการใช้บัฟเฟอร์ระบบตามที่อธิบาย
โดย Xu et al . ( 2005 ) การทดสอบทั้งหมดจำนวน 30 ° C
3 วัน โดยการเพาะเชื้อใน tyeg ปานกลาง คาร์บอน
การใช้ประโยชน์แหล่งถูกตรวจสอบโดยวิธีการที่อธิบาย
และโดย shirling กอตต์ลีบ ( 1966 ) และ locci ( 1989 ) biolog
Gen III microplates ™ยังใช้สำหรับการหา
รับแหล่งคาร์บอนเดี่ยวและเคมีไว
) ตามคำแนะนำของผู้ผลิต แผ่น
อุณหภูมิ 30 องศา C และหลังจากอ่าน 48 แหล่งไนโตรเจน
hการใช้ประโยชน์ คือ พิจารณาตามวิลเลียม et al .
( 1989 ) นักศึกษาที่ตรวจพบโดยการผลิต
ฟองหลังจากเติมลดลง 3 เปอร์เซ็นต์ ( v / v ) แบตเตอรี่ . กิจกรรมเอนไซม์
ถูกกำหนดโดยออกซิเดชันของ tetramethylp -
ฟีนิลีนไดอะมีน . การทดสอบการย่อยสลายเซลลูโลส , เจลาติน ,
แป้งและ 20 tweens , 40 และ 80 , การแข็งตัวของนม และ peptonization
,การใช้ยูเรียและการลดไนเตรท ,
) ตามที่อธิบายไว้โดยกอนซาเลซ et al . ( 1978 ) ชีวเคมี
อื่นถูกกำหนดโดยการใช้ 20ne API
และระบบ 50ch API ( biom é rieux , ฝรั่งเศส ) ตาม
คําแนะนําของผู้ผลิต