2.2.6. CarotenoidsTotal carotenoids

2.2.6. Carotenoids
Total carotenoids (TC) were determined according to the
procedure described by Kuti (2004). A 5 g of sample was
extracted with a solvent mixture containing 40 ml acetone and
60 ml hexane until the residue became colourless. The
homogenate was filtered through Whatman No. 4 filter paper
and transferred to a separating funnel. Fifty millilitres of
hexane was added, and acetone was separated from the
extract by repeated washings with distilled water and 5% NaCl
solution. The upper hexane layer with extracted pigment was
shifted to a 100 ml volumetric flask, and the volume is made
up with hexane. The absorbance was measured using
spectrophotometer (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) at 450 nm
with hexane as blank. The total carotenoids were calculated
using the following formula:
Total carotenoids ðmg=100 gÞ
¼
A 450volume made up ðmlÞ1000
2500sample weight ðgÞ
2.2.7. Ascorbic acid
Ascorbic acid was measured as per the method described by
Ranganna (1999). Ten grams of sample was macerated using
3% meta-phosphoric acid and volume was made up to 100 ml
with meta-phosphoric acid. An aliquot of 10 ml of the extract
was taken and titrated with the standard dye (2,6-dichlor-
ophenol indophenol) till pale pink end-point was observed
which persisted for 15–20 s.
2.2.8. Total phenolics
Ten grams of macerated sample extract was diluted to 100 ml
with water and 1 ml of Folin–Ciocalteu reagent was added to
5 ml of this aliquot. After 6 min, 10 ml of Na2CO3 (7%) was
added and the volume was made up to 25 ml with distilled
water followed by incubation at room temperature for 90 min.
The absorbance was measured at 750 nm by spectrophotom-
eter (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using gallic acid as
standard and distilled water as blank (Singleton & Rosi, 1965).
2.2.9. Total flavonoids
The sample extract of 15 g was dissolved in water and the
volume was made up to 100 ml with distilled water. 5 ml of this
aliquot was taken and 0.3 ml of NaNO2 (5%) was added, kept
for 5 min followed by addition of 0.3 ml of AlCl3 (10%), again
kept for 6 min followed by addition of 2 ml sodium hydroxide
(1 N) solution. Volume was made up to 10 ml with distilled
water and absorbance was measured at 510 nm by spectrophotometer
(Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using catechin as
standard and distilled water as blank (Zhishen, Mengcheng, &
Jianming, 1999).
2.2.10. Antioxidant activity
The antioxidant activity was determined by DPPH method
described by Blois (1958). One gram of sample was taken along
with 29 ml methanol, shaken vigorously, and centrifuged at
5000 rpm for 15 min at 4 8C. To that filtrate 0.5 ml DPPH
(Diphenyl picrylic hydrazine) reagent was added and incubated
for 45 min in dark. Methanol was taken as blank and 3 ml
methanol with 0.5 ml DPPH reagent was taken as control. The
absorbance was measured using spectrophotometer (Shimadzu
1609, Tokyo, Japan) at 517 nm. The antioxidant activity
was calculated using the following formula:
Antioxidant activityð%Þ ¼
ðODcontrol  ODsampleÞ  100
ODcontrol
2.2.11. Capsaicin content
The capsaicin content of chillies was measured by using
spectrophotometric method, reported by Sadasivam and
Manickam (1997) with slight modifications. Two gram of
green chilli paste was taken in 100 ml ethyl acetate and
allowed it to stand for 24 h, from that an extract of 1 ml was
taken and made the volume to 5 ml using ethyl acetate, to that
extract, 0.5 ml of vanadium oxy chloride (Sigma Aldrich, India)
solution (vanadium oxychloride 0.5% in ethyl acetate) was
added just before taking the absorbance of the sample. Pure
capsaicin (0.01%) in ethyl acetate (10 mg in 100 ml) was taken
as standard. The absorbance of the blank, standard and
sample was read at 720 nm. A colour change was observed
after the addition of vanadium oxychloride, the extract
changed from green to yellow colour. The readings were
taken when the extract was in green colour.
2.2.12. Keeping quality and shelf life
The keeping quality and shelf-life of chillies were evaluated on
the basis of sensory attributes in terms of visual sensory score
and physiological loss in weight.
2.2.13. Statistical analysis
All measurements were performed in triplicates for different
physico-chemical parameters and the data obtained were
analyzed statistically for analysis of variance (ANOVA) using
completely randomized design (CRD) and least significant
difference (LSD) at p < 0.05 using Statistica 7 software
(StatSoft, Tulsa, OK, USA).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2.6 การ carotenoidsรวม carotenoids (TC) ถูกกำหนดตามขั้นตอนที่อธิบายไว้ โดย Kuti (2004) 5 กรัมของตัวอย่างได้สกัดด้วยตัวทำละลายประกอบด้วย 40 ml อะซีโตน และโพลี 60 ml จนตกค้างจะกลายเป็นสีใส ที่homogenate ถูกกรองโดยใช้กระดาษกรอง Whatman หมายเลข 4และโอนย้ายไปกรวยแยก Millilitres 50 ของเฮกเซนเข้ามา และอะซีโตนถูกแยกออกจากการแยก โดย washings ซ้ำด้วยน้ำกลั่น 5% NaClการแก้ปัญหา ชั้นบนโพลีกับรงควัตถุที่แยกได้จากหนาวเป็น volumetric 100 ml และระดับเสียงขึ้น ด้วยเฮกเซน มีวัด absorbance ที่ใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (Shimadzu 1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) ที่ 450 nmมีเฮกเซนเป็นว่างเปล่า Carotenoids รวมคำนวณได้โดยใช้สูตรต่อไปนี้:Ðmg รวม carotenoids = 100 gÞ¼ปริมาตร 450 ที่ขึ้น ðmlÞ 10002500 ตัวอย่างน้ำหนัก ðgÞ2.2.7. กรดแอสคอร์บิคกรดแอสคอร์บิคถูกวัดตามวิธีที่อธิบายโดยRanganna (1999) 10 กรัมของตัวอย่างที่ macerated ใช้กรด phosphoric meta-3% และปริมาณทำถึง 100 mlด้วยกรด phosphoric meta- เป็นส่วนลงตัวของ 10 ml ของการดึงข้อมูลนำ และ titrated กับสีมาตรฐาน (2,6 - dichlor -ophenol indophenol) จนถูกสังเกตจุดสีชมพูอ่อนซึ่งยังคงอยู่ใน s 15 – 202.2.8 phenolics รวม10 กรัมของสารสกัดตัวอย่าง macerated ที่ผสมไป 100 mlกับน้ำ 1 ml ของรีเอเจนต์ Folin-Ciocalteu ถูกเพิ่มเข้าไปml 5 ของส่วนลงตัวนี้ หลังจาก 6 นาที 10 ml ของ Na2CO3 (7%) ได้เพิ่ม และปริมาณทำถึง 25 ml กับกลั่นน้ำตาม ด้วยการบ่มที่อุณหภูมิห้องใน 90 นาทีมีที่วัด absorbance ที่ 750 nm โดย spectrophotom -eter (Shimadzu 1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) โดยใช้กรด gallic เป็นมาตรฐาน และกลั่นน้ำว่างไว้ (เดี่ยวและ Rosi, 1965)2.2.9 flavonoids รวมดึงข้อมูลตัวอย่าง 15 กรัมที่ละลายในน้ำและไดรฟ์ข้อมูลที่ทำการถึง 100 ml ด้วยน้ำกลั่น 5 ml นี้aliquot ถูกถ่าย และ 0.3 ml ของ NaNO2 (5%) มีเพิ่ม เก็บสำหรับ 5 นาทีตาม ด้วยเพิ่ม 0.3 ml ของ AlCl3 (10%), อีกครั้ง6 นาทีตาม ด้วยเพิ่มเติมโซดาไฟ 2 ml เก็บไว้(1 N) แก้ปัญหา ไดรฟ์ข้อมูลที่ทำถึง 10 ml กับกลั่นมีวัดน้ำและ absorbance ที่ 510 nm โดยเครื่องทดสอบกรดด่าง(Shimadzu 1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) โดยใช้สารสกัดจากเป็นน้ำกลั่น และมาตรฐานเป็นค่าว่าง (Zhishen, Mengcheng, &Jianming, 1999)2.2.10 กิจกรรมสารต้านอนุมูลอิสระกำหนดกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระ โดยวิธี DPPHอธิบาย โดย Blois (1958) หนึ่งกรัมของตัวอย่างถูกนำไปด้วยเมธานอมล 29 เขย่าโยคะ และ centrifuged ที่5000 rpm สำหรับ 15 นาทีที่ 4 8C. ที่สารกรอง 0.5 ml DPPHรีเอเจนต์ (ฟีนิลได picrylic hydrazine) ถูกเพิ่ม และ incubatedสำหรับ 45 นาทีในความมืด เมทานอลถูกนำเป็นว่างเปล่าและ 3 mlเมทานอลกับรีเอเจนต์ DPPH 0.5 ml ถูกนำมาเป็นตัวควบคุม ที่absorbance ที่วัดโดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (Shimadzu1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) ที่ 517 nm กิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระมีคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:สารต้านอนุมูลอิสระ activityð %Þ¼ðODcontrol ODsampleÞ 100ODcontrol2.2.11 การเนื้อหาแคปไซซินเนื้อหาแคปไซซินของเผ็ดถูกวัด โดยใช้วิธี spectrophotometric รายงาน โดย Sadasivam และManickam (1997) มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย สองกรัมของน้ำพริกเขียวถ่าย 100 มลเอทิล acetate และให้ยืนใน 24 ชม จากแยกมา 1 ml ได้ดำเนินการ และทำปริมาตร 5 ml ใช้เอทิล acetate ที่แยก 0.5 ml ของวาเนเดียมคลอไรด์เชื้อ (Aldrich ซิก อินเดีย)โซลูชั่น (วาเนเดียม oxychloride 0.5% ในเอทิล acetate)เพิ่มเพียงก่อน absorbance ของตัวอย่าง บริสุทธิ์แคปไซซิน (0.01%) ในเอทิล acetate (10 มิลลิกรัมใน 100 ml) ถูกนำมาเป็นมาตรฐาน Absorbance ของว่าง มาตรฐาน และตัวอย่างที่อ่านที่ 720 nm มีสังเกตการเปลี่ยนแปลงสีหลังจากนี้ของวาเนเดียม oxychloride การดึงข้อมูลเปลี่ยนจากสีเขียวเป็นสีเหลือง ที่อ่านได้ใช้เมื่อการดึงข้อมูลสีเขียว2.2.12 รักษาคุณภาพและอายุการเก็บรักษารักษาคุณภาพและอายุการเก็บรักษาของเผ็ดถูกประเมินในพื้นฐานของคุณลักษณะทางประสาทสัมผัสในด้านคะแนนภาพทางประสาทสัมผัสและสรีรวิทยาการสูญเสียน้ำหนัก2.2.13. สถิติวิเคราะห์ดำเนินการประเมินทั้งหมดใน triplicates สำหรับการอื่นดิออร์พารามิเตอร์และข้อมูลที่ได้วิเคราะห์ทางสถิติสำหรับการวิเคราะห์ผลต่างของ (การวิเคราะห์ความแปรปรวน) ใช้สมบูรณ์ randomized ออก (CRD) และสำคัญน้อยที่สุดความแตกต่าง (LSD) ที่ p < 0.05 ใช้ Statistica 7 ซอฟต์แวร์(StatSoft, Tulsa ตกลง สหรัฐอเมริกา)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2.6 นอยด์นอยด์รวม (TC) ได้รับการพิจารณาให้เป็นไปตามขั้นตอนที่อธิบายโดยกู(2004) 5 กรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกสกัดด้วยตัวทำละลายผสมที่มีอะซีโตน40 มล. และ60 มล. เฮกเซนที่เหลือจนกลายเป็นไม่มีสี homogenate ถูกกรองผ่านเบอร์ฉบับที่ 4 กระดาษกรองและโอนไปยังช่องทางแยก ห้าสิบมิลลิลิตรเฮกเซนถูกบันทึกและอะซีโตนถูกแยกออกจากสารสกัดจากล้างซ้ำด้วยน้ำกลั่นและ5% NaCl การแก้ปัญหา เฮกเซนชั้นบนที่มีเม็ดสีที่สกัดได้ขยับไปขวด 100 มล. ปริมาตรและปริมาณที่ทำขึ้นมาด้วยเฮกเซน วัดการดูดกลืนแสงที่ใช้spectrophotometer (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 450 นาโนเมตรด้วยเฮกเซนเป็นที่ว่างเปล่า carotenoids รวมจะถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้: นอยด์รวม DMG = 100 GTH ¼? 450 ปริมาณขึ้นðmlÞ 1000? 2500 น้ำหนักตัวอย่างðgÞ 2.2.7 วิตามินซีกรดวิตามินซีวัดตามวิธีการที่อธิบายโดยRanganna (1999) สิบกรัมของกลุ่มตัวอย่างได้รับการหมักโดยใช้3% กรดฟอสฟเมตาและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง 100 มล. กับกรดฟอสฟเมตา aliquot 10 มล. ของสารสกัดที่ถูกนำมาปรับขนาดและสีย้อมที่มีมาตรฐาน(2,6-dichlor- ophenol indophenol) จนถึงจุดสิ้นสุดสีชมพูอ่อนเป็นข้อสังเกตที่ยังคงประมาณ15-20 วินาที. 2.2.8 รวมฟีนอลสิบกรัมของสารสกัดจากตัวอย่าง macerated ถูกเจือจาง 100 มล. น้ำ 1 มิลลิลิตรของสาร Folin-Ciocalteu ถูกบันทึกอยู่ใน5 มิลลิลิตร aliquot นี้ หลังจากนั้น 6 นาที, 10 มิลลิลิตร Na2CO3 (7%) ได้รับการเพิ่มและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง25 มล. กับกลั่นน้ำตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิห้อง90 นาที. การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดที่ 750 นาโนเมตรโดย spectrophotom- eter (Shimadzu 1609 โตเกียวประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้กรดฝรั่งเศสเป็นมาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง(ซิงเกิลและโรซี, 1965). 2.2.9 flavonoids รวมสารสกัดจากกลุ่มตัวอย่าง15 กรัมถูกละลายในน้ำและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง100 มล. น้ำกลั่น 5 มิลลิลิตรนี้aliquot ถูกนำตัวและ 0.3 มิลลิลิตร NaNO2 (5%) ถูกบันทึกเก็บไว้เป็นเวลา5 นาทีตามด้วยนอกเหนือจาก 0.3 มิลลิลิตร AlCl3 (10%) อีกครั้งเก็บไว้เป็นเวลา6 นาทีตามด้วยนอกเหนือจาก 2 มิลลิลิตรโซดาไฟ( 1 N) วิธีการแก้ปัญหา เล่มที่ถูกสร้างขึ้นมาถึง 10 มล. กับกลั่นน้ำและการดูดกลืนแสงวัดที่510 นาโนเมตรโดย spectrophotometer (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้ catechin เป็นมาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง(Zhishen, Mengcheng และJianming, 1999). 2.2.10 . ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระต้านอนุมูลอิสระถูกกำหนดโดยวิธี DPPH อธิบายโดยบลัว (1958) หนึ่งกรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกนำตัวไปพร้อมกับ 29 มล. เมทานอลเขย่าแรง ๆ และหมุนเหวี่ยงที่ 5000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาทีที่ 4 8C ที่กรอง 0.5 มล. DPPH (Diphenyl ไฮดราซีน picrylic) สารถูกบันทึกและบ่มเป็นเวลา45 นาทีในที่มืด เมทานอลถูกนำมาเป็นที่ว่างเปล่าและ 3 มล. เมทานอล 0.5 มลสาร DPPH ถูกนำมาเป็นตัวควบคุม การดูดกลืนแสงที่ถูกวัดโดยใช้ spectrophotometer (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 517 นาโนเมตร ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่คำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้: สารต้านอนุมูลอิสระactivityð% Þ¼ðODcontrol? ODsampleÞ? 100 ODcontrol 2.2.11 แคปไซซิเนื้อหาเนื้อหา capsaicin พริกวัดโดยใช้วิธีสเปกรายงานโดยSadasivam และManickam (1997) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย สองกรัมน้ำพริกสีเขียวได้รับการดำเนินการใน 100 มล. เอทิลอะซิเตและได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา24 ชั่วโมงจากที่สารสกัดจาก 1 มล. ได้รับการดำเนินการและทำให้ปริมาณ5 มล. โดยใช้น้ำนมเพื่อว่าสารสกัดจาก0.5 มิลลิลิตรวานาเดียม ออกซิเจนคลอไรด์ (ซิกม่าดิช, อินเดีย) การแก้ปัญหา (วานาเดียม oxychloride 0.5% ในเอทิลอะซิเตท) ได้รับการเพิ่มเพียงก่อนที่จะดูดกลืนแสงของกลุ่มตัวอย่าง เพียวcapsaicin (0.01%) ในเอทิลอะซิเตท (10 มก. ใน 100 มล.) ถูกนำมาเป็นมาตรฐาน การดูดกลืนแสงของว่างและมาตรฐานตัวอย่างได้อ่านที่ 720 นาโนเมตร การเปลี่ยนสีที่ถูกตั้งข้อสังเกตหลังจากที่นอกเหนือจาก oxychloride วานาเดียมที่สกัดเปลี่ยนจากสีเขียวเป็นสีเหลือง การอ่านได้รับการดำเนินการเมื่อสารสกัดเป็นสีเขียว. 2.2.12 การรักษาคุณภาพและอายุการเก็บรักษาที่มีคุณภาพการรักษาและอายุการเก็บรักษาของพริกได้รับการประเมินในพื้นฐานของคุณลักษณะทางประสาทสัมผัสในแง่ของคะแนนทางประสาทสัมผัสการมองเห็นและการสูญเสียน้ำหนักในทางสรีรวิทยา. 2.2.13 การวิเคราะห์ทางสถิติการวัดทั้งหมดถูกดำเนินการใน triplicates แตกต่างกันพารามิเตอร์ทางกายภาพและทางเคมีและข้อมูลที่ได้มาวิเคราะห์ทางสถิติสำหรับการวิเคราะห์ความแปรปรวน(ANOVA) โดยใช้การออกแบบแบบสุ่มสมบูรณ์(CRD) และมีความสำคัญน้อยกว่าความแตกต่าง(LSD) ที่ระดับ p <0.05 โดยใช้ซอฟแวร์ Statistica 7 (StatSoft, โอคลาโฮมาสหรัฐอเมริกา)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2.6 . แคโรทีนอยด์
แคโรทีนอยด์รวม ( TC ) พิจารณาตามขั้นตอนที่อธิบายโดย
กูติ ( 2004 ) 5 กรัม จำนวน
สกัดด้วยตัวทำละลายผสมที่ประกอบด้วย 40 ml และไอ
60 ml ฤทธิ์ตกค้างจนกลายเป็นสี
อนถูกกรองผ่านกระดาษกรอง
whatman หมายเลข 4 และโอนไปยังกรวยแยก . 50 มิลลิลิตรของ
เฮกเซนเป็นเพิ่มและอะซิโตนถูกแยกออกจากสารสกัดโดย washings ซ้ำ

กับน้ำกลั่นและสารละลายโซเดียมคลอไรด์ 5% สารสกัดจากเม็ดสีถูกชั้นบนกับ
เปลี่ยน 100 มล. ขวดปริมาตรและปริมาณผลิต
กับเฮกเซน . นการวัด
Spectrophotometer ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) 450 nm
ด้วยเฮกเซนเป็นว่างเปล่า carotenoids รวมคำนวณ
โดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
รวม carotenoids ðมิลลิกรัม = 100 กรัมÞ

¼ 450  ระดับเสียงขึ้นð ml Þ  1000
2500  ตัวอย่างðกรัมน้ำหนักÞ
2.2.7 . กรดแอสคอร์บิค
วิตามินซีได้ตามวิธีการที่อธิบายโดย
ranganna ( 1999 ) 10 กรัมจำนวน macerated ใช้
3 % เมตา กรดฟอสฟอริค และปริมาณได้ถึง 100 ml
เมตากับกรดฟอสฟอริก เป็นส่วนลงตัวของ 10 มิลลิลิตรของสารสกัด
ที่ถูกขโมยไป และตลอดเวลาที่มีสีมาตรฐาน ( 2,6-dichlor -
ophenol indophenol ) จนถึงความหมาย : สีชมพูอ่อนพบ
ซึ่งยืนกราน 15 – 20 S .
2.2.8 . ฟีนอลิกทั้งหมด
10 กรัม macerated ตัวอย่างสกัดเจือจางกับน้ำ 100 มิลลิลิตร
1 มิลลิลิตร และใช้ folin ciocalteu เพิ่ม

5 มิลลิลิตร ส่วนที่หารลงตัวนี้ หลังจาก 6 นาที 10 ml ของ Na2CO3 ( 7% ) คือ
และเพิ่มปริมาณขึ้น 25 มิลลิลิตร กับน้ำกลั่น
ตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 90 นาที ทำการวัดค่า
-
750 นาโนเมตร โดย spectrophotom diphenyl ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) การใช้เพิ่มขึ้นเป็น
มาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง ( ฌอน แอสติน&
โรซี่ , 1965 ) 2.2.9 . ฟลาโวนอยด์ สารสกัดรวม
ตัวอย่าง 15 กรัม ละลายในน้ำและ
เสียงถูกสร้างขึ้นเพื่อ 100 ml ด้วยน้ำกลั่น 5 มิลลิลิตร ส่วนที่หารลงตัวนี้
ถ่ายและ 0.3 มล. nano2 ( 5% ) ถูกบันทึกเก็บไว้
5 นาที ตามด้วยเพิ่ม 0.3 มล. alcl3 ( 10% ) , อีก
เป็นเวลา 6 นาที ตามด้วยนอกเหนือจาก 2 ml โซดาไฟ
1 N ) โซลูชั่น ระดับเสียงขึ้น 10 ml ด้วยกลั่น
น้ำและค่าวัดที่ 510 nm โดย Spectrophotometer
( Shimadzu ใน โตเกียวญี่ปุ่น ) โดยใช้ Catechin เป็น
มาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง ( zhishen mengcheng & , ,

2.2.10 เจี้ยนหมิง , 1999 ) . ต้านอนุมูลอิสระต้านอนุมูลอิสระถูกกำหนดด้วย

dpph วิธีอธิบายโดยบลัว ( 1958 ) หนึ่งกรัมของตัวอย่างที่ถ่าย
29 ml เมทานอล เขย่าอย่างแรง และระดับที่ 5 , 000 รอบต่อนาที
15 นาทีที่ 4 8C เพื่อที่การ dpph
0.5 มล.( picrylic ไดฟีนิลไฮดราซีน ) สารเคมีที่ถูกเพิ่มโดย
45 นาทีในที่มืด เมทานอลไปเป็นว่างเปล่าและ 3 มล.
เมทานอลกับ 0.5 ml dpph รีเอเจนต์ถูกควบคุม .
การวัดการดูดกลืนแสง Spectrophotometer ( Shimadzu
ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ที่ 517 nm . สารต้านอนุมูลอิสระ
ถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
ฤทธิ์ต้านð % Þ¼
ð odcontrol  odsample Þ  100
odcontrol
2.2.11 . capsaicin capsaicin จากพริกเนื้อหาเนื้อหา

ถูกวัดโดยใช้วิธี ) , รายงานโดย sadasivam และ
manickam ( 1997 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย สองกรัมของ
พริกสีเขียวที่ถูกถ่ายใน 100 มิลลิลิตร เอทิลอะซิเตท และอนุญาตให้ยืนสำหรับ
24 ชั่วโมง จากสารสกัดของ 1 ml พบ
ถ่ายและทำให้ปริมาณ 5 มิลลิลิตรโดยใช้ ethyl acetate , ที่
Extract , 05 ml ของวาเนเดียม กซีคลอไรด์ ( ซิกม่า Aldrich อินเดีย )
โซลูชั่น ( วานาเดียม กซีคลอไรด์ 0.5% ในเอทิลอะซิเตท ) คือ
เพิ่มก่อนที่จะดูดกลืนของตัวอย่าง เพียว
แคปไซซิน ( 0.01% ) เอทิลอะซิเตท ( 10 มิลลิกรัมต่อ 100 มิลลิลิตร ) ถ่าย
เป็นมาตรฐาน มีการดูดกลืนแสงของว่าง , มาตรฐานและ
ตัวอย่างอ่าน 720 นาโนเมตร เปลี่ยนสีค่า
หลังจากที่นอกเหนือจากคลอไรด์ปาเล็มบัง ,สารสกัดจาก
เปลี่ยนจากสีเขียวเป็นสีเหลือง อ่านอยู่
ถ่ายเมื่อแยกเป็นสี เขียว .
2.2.12 . รักษาคุณภาพและยืดอายุการเก็บรักษาคุณภาพ และอายุการเก็บรักษาของ
พริกประเมินบนพื้นฐานของลักษณะทางประสาทสัมผัส

คะแนนทางประสาทสัมผัสในด้านภาพ และทางสรีรวิทยาในการสูญเสียน้ำหนัก .
2.2.13 .
สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลวัดทั้งหมดจำนวน 3 ซ้ำสำหรับพารามิเตอร์ทางกายภาพที่แตกต่างกันและค่า

ข้อมูลวิเคราะห์สถิติสำหรับการวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) โดยใช้การออกแบบ
แบบสุ่มสมบูรณ์ ( CRD ) และแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยที่สุด ( LSD )
ที่ p < 0.05 การใช้ซอฟต์แวร์ statistica 7
( StatSoft ทัลซ่า โอเค , USA ) .