The lower amounts of intracellular

The lower amounts of intracellular and extracellular peptidoglycan
detected could be due to fragments of peptidoglycan being
released into the medium during cell growth and elongation.
It has been previously stated that peptidoglycan is steadily
broken down by peptidoglycan-cleaving enzymes during
cell growth, especially during the exponential phase, where
a cell wall turnover process occurs, resulting in the release
of peptidoglycan fragments from the wall (Reith et al.
2011). It has also been reported that the turnover rate and
the amount of cell wall material vary among species and
even strains. Reith et al. (2011) reported that the magnitude
of cell wall turnover is also dependent on the growth conditions. In addition, the capability of microorganisms in the
recycling of cell wall material also affected the amount of
peptidoglycan detected in the extracellular and intracellular
extracts (Litzinger et al. 2010). Our current study demonstrated that all strains contain a total peptidoglycan amount
ranging from 0.241 to 0.425 μg/mL. Although larger
amounts of peptidoglycan, in the range of 10–100 μg/mL
are necessary to stimulate cellular responses, peptidoglycan
has also been reported to be effective at lower concentrations, via synergism with LTA (Yang et al. 2001). It is
postulated that peptidoglycan at concentrations as low as
0.24 μg/mL in the presence of LTA is sufficient to induce
production of antimicrobial peptides in keratinocytes.
HA is synthesized intracellularly according to the proposed biosynthetic pathway by Matsubara et al. (1991) and
transported out across the cellular membrane upon synthesis. Thus, the varying concentrations of HA in the intracellular and extracellular extracts among strains studied would
be dependent on the efficiency of transport across the membrane. In addition, it has been suggested that biosynthesis of
HA was dependent on the glucose uptake of the microorganism (Cooney et al. 2008). Our current study showed that
lactobacilli were able to produce higher amounts of HA.
Parche et al. (2006) revealed that, unlike many other bacteria, glucose utilization of some bifidobacteria was impaired
in the presence of glucose and lactose such as in milk, and
thus may have resulted in the lower production of HA. In
our current study, strains of lactobacilli and bifidobacteria
were able to produce HA at concentrations ranging from 0.4
to 1.4 mg/mL. Hyaluronic acid has been used as an ideal
bio-component in dermatological and pharmaceutical products, mainly due to its remarkable rheological, hygroscopic
and viscoelastic properties which are relevant for dermal
tissue function. It is worth noting that, in this current
study, L. rhamnosus FTDC 8313 and L. gasseri FTDC 8131
produced HA at concentrations of more than 1 mg/mL.
Kobayashi and Terao (1997) reported that HA at concentration of 1 mg/mL enhanced the release of interleukin-1β,
which is responsible for the secretion of RNase 7, which is
an antimicrobial peptide that enhances the innate immune
defense system of keratinocytes.
Citrate utilization and production of diacetyl among lactobacilli has been extensively studied over the past few
decades, and these studies showed that homofermentative
species produced diacetyl more readily and in larger volumes than the heterofermenters (Christensen and Pederson
1958). Interestingly, our results showed that the heterofermenter, L. casei BT 1268 strains produced higher amounts
of diacetyl than the homofermenter, L. gasseri FTDC 8131.
Table 5 Acid and neutral sphingomyelinases activity in extracellular
and intracellular extracts of bifidobacteria and lactobacilli cultured in
8 % (w/v) reconstituted skimmed milk (RSM) for 20 h at 37 °C
Strains Sphingomyelinase activity
(mU/mL of RSM)
Intracellular Extracellular
Acid sphingomyelinase
L. casei BT 1268 0.22±0.02 aB 0.55±0.08 bA
B. animalis subsp. lactis BB 12 0.19±0.03 aB 0.50±0.13 bA
B. longum BL 8643 0.25±0.09 aB 0.48±0.11 bA
L. rhamnosus FTDC 8313 0.28±0.06 aB 0.64±0.15 bA
L. gasseri FTDC 8131 0.27±0.04 aB 1.25±0.17 aA
Neutral sphingomyelinase
L. casei BT 1268 1.16±0.05 aB 2.40±0.63 aA
B. animalis subsp. lactis BB 12 1.29±0.40 aA 0.66±0.12 bB
B. longum BL 8643 0.92±0.17 aA 0.94±0.21 bA
L. rhamnosus FTDC 8313 0.35±0.14 bB 1.10±0.12 bA
L. gasseri FTDC 8131 1.31±0.25 aB 2.57±0.61 aA
Results are expressed as mean±standard deviation. Values are means
of duplicates from three separate runs (n03)
Means in the same column with different lowercase letters are significantly different (P

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ยอดเงินต่ำกว่าของ intracellular และ extracellular เปบทิโดไกลแคนตรวจพบอาจเกิดจากการกระจายตัวของเปบทิโดไกลแคนนำออกใช้เป็นสื่อในระหว่างการเจริญเติบโตของเซลล์และ elongationจะมีการระบุไว้ก่อนหน้านี้เปบทิโดไกลแคนที่มีอย่างต่อเนื่องแบ่ง โดยเอนไซม์ cleaving เปบทิโดไกลแคนในระหว่างเซลล์เจริญเติบโต โดยเฉพาะอย่างยิ่งระหว่างขั้นตอนการเนน ที่กระบวนการหมุนเวียนเซลล์ผนังเกิด ผลลัพธ์ในรุ่นของชิ้นส่วนเปบทิโดไกลแคนจากผนัง (Reith et al2011) มียังรายงานที่อัตราการหมุนเวียน และจำนวนวัสดุผนังเซลล์แตกต่างกันระหว่างชนิด และแม้สายพันธุ์ Reith et al. (2011) รายงานว่า ขนาดของผนังเซลล์ หมุนเวียนจะยังขึ้นอยู่กับสภาพการเจริญเติบโต นอกจากนี้ ความสามารถของจุลินทรีย์ในการรีไซเคิลวัสดุผนังเซลล์ยังได้ได้รับผลกระทบจำนวนตรวจพบใน extracellular และ intracellular เปบทิโดไกลแคนแยก (Litzinger et al. 2010) การศึกษาปัจจุบันของเราแสดงว่า สายพันธุ์ทั้งหมดประกอบด้วยจำนวนรวมเปบทิโดไกลแคนตั้งแต่ 0.241 0.425 μg/mL แม้ว่าขนาดใหญ่จำนวนเปบทิโดไกลแคน ในช่วง 10 – 100 μg/mLจำเป็นที่จะกระตุ้นการตอบสนองของโทรศัพท์มือถือ เปบทิโดไกลแคนมียังรายงานว่า มีผลที่ความเข้มข้นต่ำ ผ่าน synergism กับ LTA (Yang et al. 2001) มันเป็นpostulated เปบทิโดไกลแคนที่ที่ความเข้มข้นต่ำสุดที่Μg 0.24 mL ในต่อหน้าของ LTA เพียงพอที่จะก่อให้เกิดผลิตของเปปไทด์ต้านจุลชีพใน keratinocytesฮา จะสังเคราะห์ intracellularly ตามทางเดิน biosynthetic นำเสนอโดยบาระและ al. (1991) และส่งออกผ่านเยื่อเซลเมื่อสังเคราะห์ ดังนั้น ความเข้มข้นแตกต่างกันของ HA ในสารสกัดจาก intracellular และ extracellular ระหว่างสายพันธุ์ที่ศึกษาจะจะขึ้นอยู่กับประสิทธิภาพของการขนส่งผ่านเยื่อ นอกจากนี้ จะได้รับการสังเคราะห์ของการแนะนำหา ได้ขึ้นอยู่กับการดูดซับกลูโคสของจุลินทรีย์ (Cooney et al. 2008) เราพบว่าการศึกษาปัจจุบันlactobacilli สามารถผลิตจำนวนสูงฮาได้Parche et al. (2006) เปิดเผยว่า ต่างจากแบคทีเรียอื่น ๆ หลาย ใช้กลูโคสของ bifidobacteria บางที่พิการในต่อหน้าของน้ำตาลกลูโคสและแล็กโทสเช่นนม และดังนั้น อาจมีผลในการผลิตต่ำฮา ในเราศึกษาปัจจุบัน สายพันธุ์ lactobacilli และ bifidobacteriaสามารถผลิตฮาที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 0.4กับ 1.4 mg/mL มีการใช้กรด hyaluronic เป็นห้องชีวภาพส่วนใน dermatological และเภสัชกรรมผลิตภัณฑ์ ส่วนใหญ่เนื่องจากความโดดเด่น rheological, hygroscopicและคุณสมบัติ viscoelastic ซึ่งเกี่ยวข้องกับผิวหนังเนื้อเยื่อฟังก์ชัน ก็เร็ว ๆ นี้ ซึ่งในปัจจุบันนี้ศึกษา L. rhamnosus FTDC 8313 และ L. gasseri FTDC 8131ผลิตฮาที่ความเข้มข้นมากกว่า 1 mg/mLโคะบะยะชิและ Terao (1997) รายงานว่า ฮาในความเข้มข้น 1 mg/mL เพิ่มของ interleukin-1βซึ่งรับผิดชอบการหลั่ง RNase 7 ซึ่งเป็นเพปไทด์มีจุลินทรีย์ที่ช่วยเพิ่มภูมิคุ้มกันโดยธรรมชาติระบบป้องกันของ keratinocytesใช้ซิเตรตและผลิต diacetyl ระหว่าง lactobacilli มีการอย่างกว้างขวางเรียนผ่านไม่ผ่านทศวรรษที่ผ่านมา และการศึกษานี้พบว่า homofermentativeชนิดผลิต diacetyl มากขึ้น และ ในปริมาณที่ใหญ่กว่า heterofermenters (คริสเตนเซ่นและ Pederson1958) เป็นเรื่องน่าสนใจ ผลของเราพบว่า heterofermenter, L. casei 1268 บีทีสายพันธุ์ผลิตจำนวนสูงของ diacetyl กว่า homofermenter, L. gasseri FTDC 81315 ตารางกิจกรรม sphingomyelinases กรด และเป็นกลางใน extracellularและสารสกัดจาก intracellular bifidobacteria และ lactobacilli ในอ่าง8% (w/v) reconstituted นมขาดมันเนย (RSM) สำหรับ h 20 ที่ 37 ° Cสายพันธุ์ Sphingomyelinase กิจกรรม(หมู/mL ของ RSM)Intracellular Extracellularกรด sphingomyelinaseL. casei 1268 บาท 0.22±0.02 aB 0.55±0.08 บาเกิด animalis ถั่ว lactis BB 12 0.19±0.03 aB 0.50±0.13 บาเกิด longum BL 8643 0.25±0.09 aB 0.48±0.11 บาL. rhamnosus FTDC 8313 0.28±0.06 aB 0.64±0.15 บาL. gasseri FTDC 8131 0.27±0.04 aB 1.25±0.17 aASphingomyelinase กลางL. casei 1268 บาท 1.16±0.05 aB 2.40±0.63 aAเกิด animalis ถั่ว lactis BB 12 1.29±0.40 0.66±0.12 เอเอบีบีเกิด longum BL 8643 0.92±0.17 เอเอ 0.94±0.21 บาL. rhamnosus FTDC 8313 0.35±0.14 bB 1.10±0.12 บาL. gasseri FTDC 8131 1.31±0.25 aB 2.57±0.61 aAผลลัพธ์จะแสดงเป็น mean±standard ส่วนเบี่ยงเบน จะหมายถึงทำของซ้ำสามแยก (n03)หมายความว่าในคอลัมน์เดียวกันกับอักษรตัวพิมพ์เล็กแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญ (P < 0.05)มีวิธีในแถวเดียวกันกับอักษรตัวพิมพ์ใหญ่ต่างกันอย่างมีนัยสำคัญแตกต่างกัน (P < 0.05)63:1047 Ann Microbiol (2013) – 1055 1053Østlie et al. (2003) รายงานว่า การผลิตของ diacetylผ่านซิเตรต เผาผลาญได้ขึ้นอยู่กับสกุลของแบคทีเรียและสภาพการเจริญเติบโต ในขณะที่คริสเตนเซ่น และPederson (1958) ได้รายงานว่า การผลิตของ diacetylไม่ขึ้นอยู่กับสายพันธุ์ต่าง ๆ ภายในเหมือนกันสายพันธ์ มีการบันทึกความแตกต่างของความเข้มข้นของ diacetyl ใน extracellular และ intracellular สารสกัดประสิทธิภาพแตกต่างกันของการขนส่งผ่านเยื่อเซลล์ มีรายงานว่า การจำกัดขั้นตอนสำหรับการใช้ซิเตรตเป็นข้อกำหนดสำหรับผู้เฉพาะ ซึ่งอำนวยความสะดวกบริโภคเข้าไปในเซลล์ก่อนผลิต diacetyl (Quintans et al. 2008) ยัง นี้จำกัดประสิทธิภาพขั้นตอนและการขนส่งแตกต่างกันระหว่างจุลินทรีย์ ซึ่งสนับสนุนความเข้มข้นแตกต่างกันระหว่างสายพันธุ์ที่ศึกษา intracellular และ extracellularสารสกัด ผลของเราพบว่า ทุกสายพันธุ์ถูกต้องdiacetyl ที่ความเข้มข้นรวมตั้งแต่ 6.70 เพื่อผลิต31.31 mg/mL มีรายงาน diacetyl ที่จัดแสดงกิจกรรมจุลินทรีย์กับโรคผิวหนังแบคทีเรียแกรมบวกเช่นหมอเทศข้างลาย Staphylococcus ที่ความเข้มข้นต่ำสุดที่3 mg/mL (Lanciotti et al. 2003), ระบุที่ยอดของ diacetyl ผลิต โดยสายพันธุ์ของเราปัจจุบันของ lactobacilliและ bifidobacteria สามารถแสดงกิจกรรมจุลินทรีย์ที่ผิวหนัง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

จำนวนเงินที่ลดลงของเซลล์และนอกเซลล์ peptidoglycan
ตรวจพบอาจเกิดจากชิ้นส่วนของ peptidoglycan ถูก
ปล่อยออกสู่กลางระหว่างการเจริญเติบโตของเซลล์และการยืดตัว.
จะได้รับตามที่ระบุไว้ก่อนหน้านี้ว่า peptidoglycan อย่างต่อเนื่อง
แยกตามเอนไซม์ peptidoglycan-จงยึดมั่นในระหว่างการ
เจริญเติบโตของเซลล์โดยเฉพาะอย่างยิ่งในช่วง ขั้นตอนการชี้แจงที่
ขั้นตอนการหมุนเวียนของผนังเซลล์ที่เกิดขึ้นส่งผลให้การเปิดตัว
ของชิ้นส่วน peptidoglycan จากผนัง (Reith et al.
2011) ก็ยังได้รับรายงานว่าอัตราการหมุนเวียนและ
ปริมาณของวัสดุผนังเซลล์แตกต่างกันระหว่างชนิดและ
แม้กระทั่งสายพันธุ์ ไรท์และคณะ (2011) รายงานว่าความสำคัญ
ของผลประกอบการของผนังเซลล์ยังขึ้นอยู่กับสภาวะการเจริญเติบโต นอกจากนี้ความสามารถของจุลินทรีย์ใน
การรีไซเคิลวัสดุผนังเซลล์ยังได้รับผลกระทบจำนวน
peptidoglycan ตรวจพบในเซลล์และเซลล์
สารสกัด (Litzinger et al. 2010) การศึกษาในปัจจุบันของเราแสดงให้เห็นว่าทุกสายพันธุ์มีจำนวน peptidoglycan
ตั้งแต่ 0.241-0.425 ไมโครกรัม / มิลลิลิตร แม้ว่าขนาดใหญ่
ปริมาณของ peptidoglycan ในช่วงของ 10-100 ไมโครกรัม / มิลลิลิตร
มีความจำเป็นในการกระตุ้นการตอบสนองของเซลล์ peptidoglycan
ยังได้รับรายงานว่ามีประสิทธิภาพที่ระดับความเข้มข้นต่ำกว่าผ่านทางเสริมฤทธิ์กับ LTA (Yang et al. 2001) มันคือ
การตั้งสมมติฐานว่า peptidoglycan ที่ความเข้มข้นต่ำเป็น
0.24 ไมโครกรัม / มิลลิลิตรในการปรากฏตัวของ LTA จะเพียงพอที่จะทำให้เกิด
การผลิตของเปปไทด์ต้านจุลชีพใน keratinocytes.
HA ถูกสังเคราะห์ภายในเซลล์ตามวิถีชีวสังเคราะห์ที่เสนอโดย Matsubara และคณะ (1991) และการ
ส่งออกผ่านเยื่อหุ้มเซลล์ของเซลล์เมื่อสังเคราะห์ ดังนั้นความเข้มข้นแตกต่างกันของ HA ในสารสกัดจากเซลล์และนอกเซลล์ในหมู่สายพันธุ์ศึกษาจะ
ขึ้นอยู่กับประสิทธิภาพของการขนส่งผ่านเยื่อหุ้มเซลล์ นอกจากนี้ยังได้รับการชี้ให้เห็นว่าการสังเคราะห์ของ
HA ขึ้นอยู่กับการดูดซึมกลูโคสของจุลินทรีย์ (Cooney et al. 2008) การศึกษาในปัจจุบันของเราแสดงให้เห็นว่า
แลคโตก็สามารถที่จะผลิตจำนวนที่สูงขึ้นของ HA.
Parche และคณะ (2006) พบว่าแตกต่างจากเชื้อแบคทีเรียอื่น ๆ อีกมากมายการใช้กลูโคสของ bifidobacteria บางอย่างที่มีความบกพร่อง
ในการปรากฏตัวของกลูโคสและแลคโตสเช่นในนมและ
ดังนั้นจึงอาจมีผลในการผลิตที่ลดลงของ HA ใน
การศึกษาในปัจจุบันของเราสายพันธุ์ของแลคโตและ bifidobacteria
มีความสามารถในการผลิต HA ที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 0.4
ถึง 1.4 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร กรดไฮยาลูโรได้รับการใช้เป็นที่เหมาะ
ชีวภาพส่วนประกอบในผลิตภัณฑ์ผิวหนังและยาเนื่องจากการที่โดดเด่นของการไหล, อุ้มน้ำ
คุณสมบัติและหนืดที่เกี่ยวข้องสำหรับผิวหนัง
เนื้อเยื่อฟังก์ชั่น มันเป็นที่น่าสังเกตว่าในปัจจุบันนี้
การศึกษา, L. rhamnosus FTDC 8313 ลิตรและ gasseri FTDC 8131
ผลิต HA ที่ระดับความเข้มข้นเกิน 1 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร.
โคบายาชิและ Terao (1997) รายงานว่า HA ที่มีความเข้มข้น 1 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร เพิ่มการปล่อยของ interleukin-1β,
ซึ่งเป็นผู้รับผิดชอบการหลั่งของ RNase 7 ซึ่งเป็น
เปปไทด์ต้านจุลชีพที่ช่วยเพิ่มภูมิคุ้มกัน
ระบบการป้องกันของ keratinocytes.
การใช้ซิเตรตและการผลิตของ diacetyl หมู่ lactobacilli ได้รับการศึกษาอย่างกว้างขวางในช่วงไม่กี่ที่ผ่านมา
นานหลายทศวรรษ และการศึกษาเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า homofermentative
สายพันธุ์ที่ผลิต diacetyl มากขึ้นอย่างรวดเร็วและในปริมาณที่มีขนาดใหญ่กว่า heterofermenters (คริสเดอร์สันและ
1958) ที่น่าสนใจผลของเราแสดงให้เห็นว่า heterofermenter, L. Casei BT 1268 สายพันธุ์ที่ผลิตในปริมาณที่สูงขึ้น
ของ diacetyl กว่า homofermenter ลิตร gasseri FTDC 8131.
ตารางที่ 5 และกรด sphingomyelinases เป็นกลางกิจกรรมใน extracellular
สารสกัดและภายในเซลล์ของ bifidobacteria และ lactobacilli เพาะเลี้ยงใน
8% (w / v) นมผงขาดมันเนย (RSM) เป็นเวลา 20 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 ° C
สายพันธุ์กิจกรรม Sphingomyelinase
(MU / มิลลิลิตร RSM)
ภายในเซลล์ Extracellular
กรด sphingomyelinase
ลิตร Casei BT 1268 0.22 ± 0.02 aB 0.55 ± 0.08 BA
บี animalis subsp lactis BB 12 0.19 ± 0.03 0.50 ± aB 0.13 BA
บี longum BL 8643 0.25 ± 0.09 0.48 ± aB BA 0.11
ลิตร rhamnosus FTDC 8313 0.28 ± 0.06 aB 0.64 ± 0.15 BA
ลิตร gasseri FTDC 8131 0.27 ± 0.04 1.25 ± aB 0.17 aA
Neutral sphingomyelinase
ลิตร Casei BT 1268 1.16 ± 0.05 2.40 ± aB 0.63 aA
บี animalis subsp lactis BB 12 1.29 ± 0.40 aA 0.66 ± 0.12 bB
บี longum BL 8643 0.92 ± 0.17 aA 0.94 ± 0.21 BA
ลิตร rhamnosus FTDC 8313 0.35 ± 0.14 bB 1.10 ± 0.12 BA
ลิตร gasseri FTDC 8131 1.31 ± 0.25 2.57 ± aB 0.61 aA
ผลการค้นหาจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย±ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐาน ค่านิยมมีวิธีการ
ของรายการที่ซ้ำจากสามวิ่งแยกต่างหาก (N03)
หมายถึงในคอลัมน์เดียวกันด้วยตัวอักษรตัวพิมพ์เล็กแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญที่แตกต่างกัน (P <0.05)
หมายถึงในแถวเดียวกันด้วยตัวอักษรตัวพิมพ์ใหญ่ที่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญ
ที่แตกต่างกัน (P <0.05)
แอน Microbiol (2,013 ) 63: 1047-1055 1053
Østlieและคณะ (2003) รายงานว่าการผลิตของ diacetyl
ผ่านการเผาผลาญซิเตรตขึ้นอยู่กับประเภทของ
เชื้อแบคทีเรียและสภาวะการเจริญเติบโตในขณะที่คริสและ
เดอร์สัน (1958) ได้รายงานว่าการผลิตของ diacetyl
ขึ้นอยู่กับสายพันธุ์ที่แตกต่างกันภายในเดียวกัน
สายพันธุ์ ความแตกต่างในระดับความเข้มข้นของสารสกัดจาก diacetyl ในเซลล์และเซลล์ที่ได้รับการบันทึกให้
มีประสิทธิภาพที่แตกต่างกันของการขนส่งผ่านเยื่อหุ้มเซลลูลาร์ มันได้รับรายงานว่าขั้นตอนการ จำกัด สำหรับ
การใช้ประโยชน์จากซิเตรตเป็นความต้องการสำหรับการขนส่งเฉพาะที่อำนวยความสะดวกในการบริโภคเข้าไปในเซลล์ก่อนที่จะมี
การผลิตของ diacetyl (Quintans et al. 2008) นอกจากนี้
ขั้นตอนการ จำกัด และมีประสิทธิภาพการขนส่งแตกต่างกันระหว่างจุลินทรีย์ที่สนับสนุนความเข้มข้นแตกต่างกันในหมู่
สายพันธุ์การศึกษาทั้งภายในเซลล์และสาร
สกัดจาก ผลของเราแสดงให้เห็นว่าทุกสายพันธุ์มีความสามารถใน
การผลิต diacetyl ที่ความเข้มข้นรวมตั้งแต่ 6.70 เพื่อ
31.31 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร มันได้รับรายงานว่า diacetyl แสดง
ฤทธิ์ต้านจุลชีพก่อโรคผิวหนังกับแกรมบวก
เช่น Staphylococcus aureus ที่ความเข้มข้นต่ำเป็น
3 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร (Lanciotti et al. 2003) แสดงให้เห็นว่าจำนวน
ของ diacetyl ผลิตโดยสายพันธุ์ของเราในปัจจุบันของแลคโต
และ bifidobacteria มีศักยภาพในการจัดแสดงกิจกรรมต้านจุลชีพผิวหนัง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ลดปริมาณเซลล์ของ extracellular และเปปติโดไกลแคน
ตรวจพบอาจเกิดจากชิ้นส่วนของเปปติโดไกลแคนถูกปล่อยตัวในช่วงกลาง

การเจริญเติบโตของเซลล์และการยืดตัวได้เคยระบุว่า เปปติโดไกลแคนอย่างต่อเนื่อง
หักลงโดยเอนไซม์เปปติโดไกลแคน cleaving ใน
การเจริญเติบโตของเซลล์ โดยเฉพาะในช่วงระยะ exponential ซึ่ง
ผนังเซลล์ อัตราการหมุนเวียนของกระบวนการ เกิดขึ้นส่งผลให้ปล่อย
ชิ้นส่วนเปปติโดไกลแคนจากผนัง ( รีท et al .
2011 ) มีรายงานว่า ผลประกอบการและอัตรา
จำนวนวัสดุผนังเซลล์แตกต่างกันไปตามชนิดและสายพันธุ์
ด้วยซ้ำ รีท et al . ( 2011 ) รายงานว่าปริมาณของการหมุนเวียนเซลล์ผนัง
ยังขึ้นอยู่กับเงื่อนไขการเจริญเติบโต นอกจากนี้ ความสามารถของจุลินทรีย์ใน
การรีไซเคิลวัสดุผนังเซลล์ยังมีผลต่อปริมาณ
เปปติโดไกลแคนที่ตรวจพบในและภายนอกเซลล์และสารสกัด (
litzinger et al . 2010 ) การศึกษาของเราในปัจจุบัน พบว่า ทุกสายพันธุ์มีปริมาณรวมเปปติโดไกลแคน
ตั้งแต่ 0.241 ให้ 0.425 μ g / ml แต่ใหญ่ขึ้น
ของเปปติโดไกลแคน ในช่วงของ 10 – 100 μ g / ml
จำเป็นเพื่อกระตุ้นการตอบสนองของเซลล์เปปติโดไกลแคน
ยังได้รับรายงานจะมีประสิทธิภาพที่ความเข้มข้นต่ำ ผ่านการเกื้อกูลกับ LTA ( หยาง et al . 2001 ) มันคือ
ซึ่งเปปติโดไกลแคนที่ความเข้มข้นต่ำพอๆ
0.24 μ g / ml ในการแสดงตนของ LTA จะเพียงพอที่จะกระตุ้นการผลิตสารต้านจุลชีพในคีราติโนไซต์เปป
.
ฮาที่เสนอการ intracellularly ตามทางเดินโดยบาระ et al . ( 1991 ) และขนส่งข้ามเยื่อหุ้มเซล
ต่อการสังเคราะห์ ดังนั้น ความเข้มข้นแตกต่างกันของฮาในเซลล์และสารสกัดของสายพันธุ์และศึกษาจะ
จะขึ้นอยู่กับประสิทธิภาพของการขนส่งผ่านเมมเบรน นอกจากนี้จะได้รับการชี้ให้เห็นว่า การสังเคราะห์
ฮาขึ้นอยู่กับการดูดซึมกลูโคสของจุลินทรีย์ ( cooney et al . 2008 ) การวิจัยของเราแสดงให้เห็นว่า
Lactobacilli สามารถผลิตปริมาณที่สูงขึ้นของฮา
parche et al . ( 2006 ) พบว่า แตกต่างจากแบคทีเรียอื่น ๆอีกมากมายการใช้กลูโคสของ Bifidobacteria เป็นบกพร่อง
ในการแสดงตนของน้ำตาลและนม เช่น นม และ
จึงอาจมีผลในการลดการผลิตของฮา ใน
การศึกษาในปัจจุบันของเรา สายพันธุ์ Lactobacilli และ Bifidobacteria
สามารถผลิตฮาที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 0.4
1.4 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตรกรดไฮยาลูโรได้ถูกใช้เป็นส่วนประกอบในผลิตภัณฑ์ด้านเหมาะ
ชีวภาพและเภสัชกรรม เนื่องจากส่วนใหญ่ของที่โดดเด่นการ hygroscopic
,และคุณสมบัติการยืดหยุ่นที่เกี่ยวข้องสำหรับฟังก์ชันเนื้อเยื่อผิวหนัง

เป็นมูลค่า noting ว่าในการศึกษาปัจจุบัน
, L . rhamnosus ftdc 8313 และ gasseri ftdc 8131
ผลิต ฮา ที่ความเข้มข้นมากกว่า 1 มก. / มล.
โคบายาชิ และ terao ( 1997 ) รายงานว่า ฮา ที่ความเข้มข้น 1 มก. / มล. และปรับปรุงรุ่นของ interleukin-1 บีตา
, ซึ่งเป็นผู้รับผิดชอบในการหลั่ง ของเลส 7 ซึ่ง
เป็นเปปไทด์ที่ช่วยเพิ่มภูมิคุ้มกันต้านเรื่องระบบป้องกันของคีราติโนไซต์
.
ซิเตรตการใช้และการผลิตไดอะซิติลในแลคโตบาซิลัสได้รับอย่างกว้างขวาง เรียนไปไม่กี่
ทศวรรษ และการศึกษานี้พบว่า homofermentative
ชนิดผลิตไดอะซิติลมากขึ้นพร้อมและไดรฟ์ที่มีขนาดใหญ่กว่า ( และ heterofermenters Christensen Pederson
1958 ) น่าสนใจผลของเราแสดงให้เห็นว่า heterofermenter L . casei สายพันธุ์ผลิต BT แต่ปริมาณที่สูงขึ้นของไดอะซิติลมากกว่า homofermenter
L gasseri ftdc 8131 .
โต๊ะ 5 กรดเป็นกลาง และกิจกรรมภายในเซลล์และ sphingomyelinases
Bifidobacteria และ Lactobacilli สารเพาะเลี้ยง
8 % ( w / v ) สร้างนม ( RSM ) เป็นเวลา 20 ชม. ที่ 37 ° C

sphingomyelinase กิจกรรมสายพันธุ์( มู / ml ของ RSM )

~ i และกรด sphingomyelinase
L . casei BT แต่ 0.22 ± 0.02 AB 0.55 ± 0.08 บา
พ. สัตว์ subsp . lactis บีบี 12 0.19 ± 0.03 AB 0.50 ± 0.13 BA
B longum BL 8643 0.25 ± 0.09 0.48 0.11 บา± AB
L rhamnosus ftdc 8313 0.28 ± 0.06 AB 0.64 ± 0.15 บา
L gasseri ftdc 8131 0.04 0.27 ± AB 1.25 ± 0.17 AA sphingomyelinase
L . casei
เป็นกลาง ( 1268 1.16 ± 0.05 AB 2.40 ± 0.63 AA
พ. สัตว์ subsp .lactis บีบี 12 1.29 ± 0.40 AA 0.66 ± 0.12 BB
B longum BL 8643 0.92 ± 0.17 AA 0.94 ± 0.21 บา
L rhamnosus ftdc 8313 0.35 ± 0.14 บีบี 1.10 ± 0.12 บา
L gasseri ftdc 8131 1.31 ± 0.25 AB 2.57 ± 0.61 AA
ผลลัพธ์จะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน± . ค่านิยมหมายถึง
ซ้ำกันจากสามวิ่งแยก ( N01 )
หมายถึงในคอลัมน์เดียวกันกับตัวอักษรตัวพิมพ์เล็กที่แตกต่างกันจะแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ( p < 0.05 )
หมายความว่า ในแถวเดียวกันด้วยตัวอักษรตัวพิมพ์ใหญ่ที่แตกต่างกันจะแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ( p < 0.05 )

แอน ธนิดา เหรียญทอง B Sc ( 2013 ) 63:1047 – 100 นิด
Ø stlie et al . ( 2003 ) รายงานว่า การผลิตไดอะซิติล
ผ่านการเผาผลาญซิเตรตขึ้นอยู่กับชนิดของแบคทีเรียและเงื่อนไข
การเจริญเติบโตในขณะที่คริสเตนเซ่นและ
Pederson ( 1958 ) ได้รายงานว่า การผลิตไดอะซิติล
ขึ้นอยู่กับสายพันธุ์ที่แตกต่างกันภายในสปีชีส์เดียวกัน

ความแตกต่างของความเข้มข้นของสารไดอะซิติลในและภายนอกเซลล์ได้ถูกว่า
ประสิทธิภาพแตกต่างกันของการขนส่งข้ามเยื่อหุ้มเซลล์ มันได้รับรายงานว่า การก้าวสำหรับ
ใช้ citrate คือความต้องการเฉพาะขนส่ง ,ซึ่งอำนวยความสะดวกของการบริโภคในเซลล์ก่อน
การผลิตไดอะซิติล ( quintans et al . 2008 ) นอกจากนี้
จำกัดขั้นตอนและประสิทธิภาพการขนส่งแตกต่างกันระหว่างจุลินทรีย์ซึ่งสนับสนุนความเข้มข้นแตกต่างกันระหว่าง
สายพันธุ์ที่ศึกษาทั้งภายในภายนอก
และสารสกัด ผลของเราแสดงให้เห็นว่าทุกสายพันธุ์สามารถ
การผลิตไดอะซิติลที่ความเข้มข้นรวมตั้งแต่ 6.70

31.31 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร มีรายงานว่า ไดอะซิติลแสดงฤทธิ์ต้านจุลชีพต่อเชื้อแกรมบวก

ผิวเชื้อโรคเช่นเชื้อ Staphylococcus aureus ที่ความเข้มข้นต่ำพอๆ
3 มก. / มล. ( lanciotti et al . 2003 ) แสดงว่าปริมาณ
ของไดอะซิติลผลิตโดยเชื้อแลคโตบาซิลัส
ของเราในปัจจุบันไบฟิโดแบคทีเรียและมีศักยภาพที่จะแสดงกิจกรรมต้านเนื้อ .