- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Clin Chem Lab Med 2008;46(2):225–23
Clin Chem Lab Med 2008;46(2):225–234 2008 by Walter de Gruyter • Berlin • New York. DOI 10.1515/CCLM.2008.053 2007/385
Article in press - uncorrected proof
Stability of heparin blood samples during transport based on
defined pre-analytical quality goals
Esther A. Jensen1,*, Marta Stahl2, Ivan
Brandslund2,4 and Per Grinsted1,3
1 Department of Clinical Biochemistry, Odense
University Hospital, Odense, Denmark
2 Department of Clinical Biochemistry, Vejle Hospital,
Vejle, Denmark
3 Division for General Practice, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
4 Institute of Regional Health Research, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
Abstract
Background: In many countries and especially in
Scandinavia, blood samples drawn in primary healthcare
are sent to a hospital laboratory for analysis. The
samples are exposed to various conditions regarding
storage time, storage temperature and transport
form. As these factors can have a severe impact on
the quality of results, we wanted to study which combination
of transport conditions could fulfil our predefined
goals for maximum allowable error.
Methods: Samples from 406 patients from nine general
practitioners (GPs) in two Danish counties were
sent to two hospitals for analyses, during two periods
(winter and summer). Transport conditions (mail,
courier pick-up, or brought to hospital by public
coach), storage time, storage temperature and centrifugation
requirements were different in the two
counties. Results were tested for deviation from a ‘‘0-
sample’’, the blood sample taken, centrifuged and
separated at the doctor’s office within 45–60 min. This
sample was considered as the best estimate of a comparison
value.
Results: The pre-set quality goals were fulfilled for all
the investigated components for samples transported
to hospital by courier either as whole blood or as ‘‘on
gel’’ after centrifugation, as long as the samples were
stored at 20–258C and centrifuged/analysed within
5–6 h. A total of 4% of the samples sent by mail had
mismatched identity, probably due to plasma being
transferred to a new tube.
Conclusions: Samples can be sent as unprocessed
anticoagulated whole blood if the above mentioned
conditions are met. There is no need for centrifugation
in the primary sector. Neither mailing of samples
with plasma ‘‘on gel’’ nor public transport by
coach bus fulfil our analytical goals.
Clin Chem Lab Med 2008;46:225–34.
*Corresponding author: Esther Jensen, Department of
Clinical Biochemistry, Odense University Hospital, 5000
Odense C, Denmark
Phone: q45-65-412865, Fax: q45-65-411911,
E-mail: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
Received August 18, 2007; accepted October 30, 2007
Keywords: pre-analytical conditions; quality goals;
storage temperature; storage time; transport of blood
samples.
Introduction
In Denmark with a population of 5.5 million, approximately
3 million blood samples are drawn each year
in General Practice (GP) and sent to hospital laboratories
for analyses.
The transport logistics are different for various
counties in Denmark. Samples (whole blood or plasma)
are transported by mail, by ‘‘hospital car’’, taxi,
coach or private transport. In at least one county all
these possibilities are used. Pre-analytical factors also
vary: the samples are drawn in tubes with or without
separation gel, sent with or without centrifugation, or
with centrifugation followed by plasma separation (1,
2). Some hospital laboratories keep the samples at a
constant temperature of 21"18C (1). Also, different
brands of tubes are used.
The pre-analytical conditions have a decisive
impact on the final result and may lead to diagnostic
mistakes. Sinclair et al. (3) describe seasonal pseudohyperkalaemia
during transport of samples. A recently
published paper (4) deals with spurious hyperkalaemia
caused by storage of the sample and transport
conditions.
Centrifugation of blood samples before transport is
time consuming and expensive. Furthermore, transfer
of plasma to another tube increases both the risk of
sample mismatch and infection. Therefore, it is preferable
to transport whole blood. As both the economical
and quality consequences of pre-analytical
solutions are considerable, our aim was to investigate
which combination of storage time, storage temperature
and transport method would allow the use of
primary tubes with whole blood or ‘‘on gel’’ after centrifugation.
All existing procedures in two counties
were investigated.
The focus was on combinations of transport conditions
as such and not on a single factor.
Materials and methods
Subjects
Adult patients that were undergoing routine venous puncture
at their GP were asked to participate. Extra tubes (6 or
7) were drawn and submitted to different pre-analytical conditions.
The sample handling and the pre-analytical procedures
were carried out by the GP’s staff, nurses, secretaries
or laboratory technologists.
226 Jensen et al.: Stability of blood samples
Article in press - uncorrected proof
In Centre A, four GPs recruited a total of 101 patients during
March 2006 and 105 patients during August 2006. The
samples were drawn between 08.00 and 09.30 am.
In Centre B, five primary healthcare centres each drew
samples from 20 patients (a total of 100 patients) in April
2006 and from 100 patients in September 2006.
Transport
The centres existing transportation means were examined.
For study purposes, some additional situations were
investigated.
Centre A: Transport by coach The samples were placed in
styrofoam transport boxes. They were delivered in special
boxes located at bus stops and were picked up by a public
bus driver who delivered them to hospital porters. The samples
transported this way were positioned randomly and
exposed to outdoor temperatures for approximately 30 min.
The duration of transport was approximately 60 min.
Centre A: Transport by courier The samples were collected
at the primary care centre. These samples were placed in
racks and were positioned upright. The duration of transport
was approximately 10–60 min. The samples were collected
from the GPs twice a day.
Centre A: Transport by mail Samples were sent after centrifugation,
with plasma ‘‘on gel’’. They normally reached the
hospital the next morning. Samples were transported in a
random position. The exposure to outdoor temperature was
variable.
Centre B There is an established routine courier service,
which picks up the blood samples within 8 h after sampling.
In the meantime, all samples are stored at a controlled temperature
of 21"18C in a special thermostated box, and the
stable temperature is maintained during transport. During
transport, the samples are positioned upright. This procedure
is a follow-up of the results of the previous investigation
described in 2005 (1). Duration of transport during this
investigation was 10–15 min.
As an additional transport form we investigated the stability
of samples stored for 4 and 8 h at room temperature.
These samples were transported together and in the same
way as the thermostated samples.
Another possibility for GPs located far from Centre B’s laboratory
is to centrifuge the blood samples, transfer the plasma
to another tube and mail them to the laboratory. Here,
an additional situation was undertaken: mailing of centrifuged
samples ‘‘on gel’’ without plasma separation.
Temperature
Centre A The average temperature for the period in which
the samples were collected during the winter was –4.38C at
night and 1.58C during the day. In August, average temperatures
were above 308C during the investigation. The GPs
that participated had no air-conditioning.
Centre B Samples were stored either at room temperature
or at 21"18C in the special thermostated boxes for 4 or 8 h.
The average temperature for the period in which the samples
were sent by mail during the winter was q18C at night
and 5.08C during the day.
In the summer period, the average night temperature was
138C and 208C during the day.
The sampling time, the arrival of the sample at the hospital
and the analysing time were recorded in the laboratory
information system.
Abbreviations
The investigated combinations of pre-analytical circumstances
are designated A1 to A7 and B1 to B6 for Centre A and
Centre B, respectively. Explanation of these codes is given
in Tables 1 and 2.
Analytical methods
The GPs in Centre A used VenoSafe Lithium Heparin gel
tubes (Lot 0510051) from Terumo Medical Incorporation,
Leuven, Belgium. In Centre B, Lithium Heparin tubes with gel
from Becton Dickinson, BD Diagnostics, Plymouth, England
were used.
All involved participants centrifuged the samples for
7–10 min at 1300–2000=g according to tube manufacturer’s
instructions.
The investigated components are listed in Table 3. The
inclusion criterion was that all components could be analysed
in a single tube. Thus, components such as glucose,
demanding a special blood sampling tube were not
considered.
Plasma concentrations of all investigated components
were analysed in both centres on Modular P from Roche
Diagnostics, with commercial kits from Roche Diagnostics
GmbH, Mannheim, Germany.
A ‘‘0-sample’’ was the blood sample taken, centrifuged
and separated at the doctor’s office within 45–60 min and
considered as the best estimate of a ‘‘true’’ comparison value.
Thereafter, the plasma is considered stable during the
designed protocol period (5–7). The ‘‘0-samples’’ were handled
by laboratory (temperature regulatedsthermostated)
boxes, able to keep a temperature of 21"18C, and were purchased
from ViboCold, Viborg, Denmark.
Analytical quality goals
Limits for acceptable deviation from the 0-sample results
were pre-defined by the authors of this paper (Table 3). CLIA
rules was cited in Tietz (8)x and the relevance of the components
for the GPs were taken into consideration.
Because the analytical coefficient of variation (CV)% for the
single component in the laboratories influences both the
comparison samp
Article in press - uncorrected proof
Stability of heparin blood samples during transport based on
defined pre-analytical quality goals
Esther A. Jensen1,*, Marta Stahl2, Ivan
Brandslund2,4 and Per Grinsted1,3
1 Department of Clinical Biochemistry, Odense
University Hospital, Odense, Denmark
2 Department of Clinical Biochemistry, Vejle Hospital,
Vejle, Denmark
3 Division for General Practice, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
4 Institute of Regional Health Research, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
Abstract
Background: In many countries and especially in
Scandinavia, blood samples drawn in primary healthcare
are sent to a hospital laboratory for analysis. The
samples are exposed to various conditions regarding
storage time, storage temperature and transport
form. As these factors can have a severe impact on
the quality of results, we wanted to study which combination
of transport conditions could fulfil our predefined
goals for maximum allowable error.
Methods: Samples from 406 patients from nine general
practitioners (GPs) in two Danish counties were
sent to two hospitals for analyses, during two periods
(winter and summer). Transport conditions (mail,
courier pick-up, or brought to hospital by public
coach), storage time, storage temperature and centrifugation
requirements were different in the two
counties. Results were tested for deviation from a ‘‘0-
sample’’, the blood sample taken, centrifuged and
separated at the doctor’s office within 45–60 min. This
sample was considered as the best estimate of a comparison
value.
Results: The pre-set quality goals were fulfilled for all
the investigated components for samples transported
to hospital by courier either as whole blood or as ‘‘on
gel’’ after centrifugation, as long as the samples were
stored at 20–258C and centrifuged/analysed within
5–6 h. A total of 4% of the samples sent by mail had
mismatched identity, probably due to plasma being
transferred to a new tube.
Conclusions: Samples can be sent as unprocessed
anticoagulated whole blood if the above mentioned
conditions are met. There is no need for centrifugation
in the primary sector. Neither mailing of samples
with plasma ‘‘on gel’’ nor public transport by
coach bus fulfil our analytical goals.
Clin Chem Lab Med 2008;46:225–34.
*Corresponding author: Esther Jensen, Department of
Clinical Biochemistry, Odense University Hospital, 5000
Odense C, Denmark
Phone: q45-65-412865, Fax: q45-65-411911,
E-mail: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
Received August 18, 2007; accepted October 30, 2007
Keywords: pre-analytical conditions; quality goals;
storage temperature; storage time; transport of blood
samples.
Introduction
In Denmark with a population of 5.5 million, approximately
3 million blood samples are drawn each year
in General Practice (GP) and sent to hospital laboratories
for analyses.
The transport logistics are different for various
counties in Denmark. Samples (whole blood or plasma)
are transported by mail, by ‘‘hospital car’’, taxi,
coach or private transport. In at least one county all
these possibilities are used. Pre-analytical factors also
vary: the samples are drawn in tubes with or without
separation gel, sent with or without centrifugation, or
with centrifugation followed by plasma separation (1,
2). Some hospital laboratories keep the samples at a
constant temperature of 21"18C (1). Also, different
brands of tubes are used.
The pre-analytical conditions have a decisive
impact on the final result and may lead to diagnostic
mistakes. Sinclair et al. (3) describe seasonal pseudohyperkalaemia
during transport of samples. A recently
published paper (4) deals with spurious hyperkalaemia
caused by storage of the sample and transport
conditions.
Centrifugation of blood samples before transport is
time consuming and expensive. Furthermore, transfer
of plasma to another tube increases both the risk of
sample mismatch and infection. Therefore, it is preferable
to transport whole blood. As both the economical
and quality consequences of pre-analytical
solutions are considerable, our aim was to investigate
which combination of storage time, storage temperature
and transport method would allow the use of
primary tubes with whole blood or ‘‘on gel’’ after centrifugation.
All existing procedures in two counties
were investigated.
The focus was on combinations of transport conditions
as such and not on a single factor.
Materials and methods
Subjects
Adult patients that were undergoing routine venous puncture
at their GP were asked to participate. Extra tubes (6 or
7) were drawn and submitted to different pre-analytical conditions.
The sample handling and the pre-analytical procedures
were carried out by the GP’s staff, nurses, secretaries
or laboratory technologists.
226 Jensen et al.: Stability of blood samples
Article in press - uncorrected proof
In Centre A, four GPs recruited a total of 101 patients during
March 2006 and 105 patients during August 2006. The
samples were drawn between 08.00 and 09.30 am.
In Centre B, five primary healthcare centres each drew
samples from 20 patients (a total of 100 patients) in April
2006 and from 100 patients in September 2006.
Transport
The centres existing transportation means were examined.
For study purposes, some additional situations were
investigated.
Centre A: Transport by coach The samples were placed in
styrofoam transport boxes. They were delivered in special
boxes located at bus stops and were picked up by a public
bus driver who delivered them to hospital porters. The samples
transported this way were positioned randomly and
exposed to outdoor temperatures for approximately 30 min.
The duration of transport was approximately 60 min.
Centre A: Transport by courier The samples were collected
at the primary care centre. These samples were placed in
racks and were positioned upright. The duration of transport
was approximately 10–60 min. The samples were collected
from the GPs twice a day.
Centre A: Transport by mail Samples were sent after centrifugation,
with plasma ‘‘on gel’’. They normally reached the
hospital the next morning. Samples were transported in a
random position. The exposure to outdoor temperature was
variable.
Centre B There is an established routine courier service,
which picks up the blood samples within 8 h after sampling.
In the meantime, all samples are stored at a controlled temperature
of 21"18C in a special thermostated box, and the
stable temperature is maintained during transport. During
transport, the samples are positioned upright. This procedure
is a follow-up of the results of the previous investigation
described in 2005 (1). Duration of transport during this
investigation was 10–15 min.
As an additional transport form we investigated the stability
of samples stored for 4 and 8 h at room temperature.
These samples were transported together and in the same
way as the thermostated samples.
Another possibility for GPs located far from Centre B’s laboratory
is to centrifuge the blood samples, transfer the plasma
to another tube and mail them to the laboratory. Here,
an additional situation was undertaken: mailing of centrifuged
samples ‘‘on gel’’ without plasma separation.
Temperature
Centre A The average temperature for the period in which
the samples were collected during the winter was –4.38C at
night and 1.58C during the day. In August, average temperatures
were above 308C during the investigation. The GPs
that participated had no air-conditioning.
Centre B Samples were stored either at room temperature
or at 21"18C in the special thermostated boxes for 4 or 8 h.
The average temperature for the period in which the samples
were sent by mail during the winter was q18C at night
and 5.08C during the day.
In the summer period, the average night temperature was
138C and 208C during the day.
The sampling time, the arrival of the sample at the hospital
and the analysing time were recorded in the laboratory
information system.
Abbreviations
The investigated combinations of pre-analytical circumstances
are designated A1 to A7 and B1 to B6 for Centre A and
Centre B, respectively. Explanation of these codes is given
in Tables 1 and 2.
Analytical methods
The GPs in Centre A used VenoSafe Lithium Heparin gel
tubes (Lot 0510051) from Terumo Medical Incorporation,
Leuven, Belgium. In Centre B, Lithium Heparin tubes with gel
from Becton Dickinson, BD Diagnostics, Plymouth, England
were used.
All involved participants centrifuged the samples for
7–10 min at 1300–2000=g according to tube manufacturer’s
instructions.
The investigated components are listed in Table 3. The
inclusion criterion was that all components could be analysed
in a single tube. Thus, components such as glucose,
demanding a special blood sampling tube were not
considered.
Plasma concentrations of all investigated components
were analysed in both centres on Modular P from Roche
Diagnostics, with commercial kits from Roche Diagnostics
GmbH, Mannheim, Germany.
A ‘‘0-sample’’ was the blood sample taken, centrifuged
and separated at the doctor’s office within 45–60 min and
considered as the best estimate of a ‘‘true’’ comparison value.
Thereafter, the plasma is considered stable during the
designed protocol period (5–7). The ‘‘0-samples’’ were handled
by laboratory (temperature regulatedsthermostated)
boxes, able to keep a temperature of 21"18C, and were purchased
from ViboCold, Viborg, Denmark.
Analytical quality goals
Limits for acceptable deviation from the 0-sample results
were pre-defined by the authors of this paper (Table 3). CLIA
rules was cited in Tietz (8)x and the relevance of the components
for the GPs were taken into consideration.
Because the analytical coefficient of variation (CV)% for the
single component in the laboratories influences both the
comparison samp
0/5000
Clin เคมี Lab 2008 Med; 46 (2): 225-234 2008 โดยวอลเตอร์เดอ Gruyter ••เบอร์ลินนิวยอร์ก ดอย 10.1515/CCLM.2008.053 2007/385
บทความในวารสาร - พิสูจน์ uncorrected
เสถียรภาพของเลือดเฮพารินตัวอย่างในระหว่างการขนส่งตาม
กำหนดเป้าหมายคุณภาพวิเคราะห์ล่วงหน้า
เอสเธอร์ A. Jensen1, *, มาร์ Stahl2, Ivan
Brandslund2, 4 และต่อ Grinsted1, 3
1 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก เดน
โรงพยาบาลมหาวิทยาลัย เดน เดนมาร์ก
2 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาล Vejle,
Vejle เดนมาร์ก
3 แผนกเวชปฏิบัติทั่วไป มหาวิทยาลัย
ประเทศเดนมาร์ก เดน เดนมาร์ก
4 สถาบันวิจัยสุขภาพภูมิภาค มหาวิทยาลัย
ประเทศเดนมาร์ก เดน เดนมาร์ก
นามธรรม
พื้นหลัง: ในหลายประเทศ และโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
สแกนดิเนเวีย ตัวอย่างเลือดที่ออกในการดูแลสุขภาพหลัก
จะถูกส่งไปห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลได้สำหรับการวิเคราะห์ ใน
ตัวอย่างกำลังเผชิญกับเงื่อนไขต่าง ๆ เกี่ยวกับ
เก็บ อุณหภูมิในการเก็บ และขนส่ง
ฟอร์ม ขณะที่ปัจจัยเหล่านี้สามารถมีผลกระทบรุนแรงด้าน
คุณภาพของผลลัพธ์ เราต้องการศึกษาการผสม
ขนส่ง เงื่อนไขสามารถสนองความต้องการของเรากำหนดไว้ล่วงหน้า
เป้าหมายสูงสุดที่ใช้ข้อผิดพลาดได้
วิธี: ตัวอย่างจากผู้ป่วย 406 จากทั่วไป 9
ผู้ (GPs) ในประเทศเดนมาร์กสองถูก
ส่งไปโรงพยาบาลที่สองสำหรับวิเคราะห์ ช่วงที่สอง
(winter and summer) เงื่อนไขในการขนส่ง (จดหมาย,
รับส่งพัสดุ หรือมาโรงพยาบาลโดยสาธารณะ
โค้ช), เก็บ เก็บอุณหภูมิ และ centrifugation
ความต้องแตกต่างกันในสอง
เขต ผลทดสอบสำหรับความแตกต่างจาก '' 0-
ตัวอย่าง '', ตัวอย่างเลือดที่ถ่าย centrifuged และ
คั่นที่สำนักงานแพทย์ภายใน 45 – 60 นาที นี้
ตัวอย่างถือว่าเป็นการประเมินที่ดีที่สุดของการเปรียบเทียบ
ค่า.
ผลลัพธ์: เป้าหมายคุณภาพที่ตั้งไว้ล่วงหน้าได้ดำเนินการทั้งหมด
ประกอบ investigated สำหรับขนส่งตัวอย่าง
โรงพยาบาลโดยพัสดุ เป็นเลือดทั้งหมด หรือเป็น '' บน
เจ '' หลัง centrifugation ตราบเท่าที่ตัวอย่างดี
เก็บที่ C 20 – 258 และ centrifuged/analysed ภายใน
h 5 – 6 มีทั้งหมด 4% ของตัวอย่างที่ส่งทางไปรษณีย์
เอกลักษณ์ อาจเนื่องจากพลาสม่าไม่ตรงกัน
โอนย้ายไปใหม่หลอดได้
บทสรุป: สามารถส่งตัวอย่างยังไม่เป็น
anticoagulated ทั้งเลือดถ้าข้างกล่าว
เงื่อนไขได้ ไม่จำเป็นสำหรับ centrifugation
ในภาคหลัก ไม่ส่งเมล์อย่าง
กับพลาสม่า ''บนเจ '' หรือขนส่งสาธารณะโดย
สนองความต้องการรถโค้ชของเราวิเคราะห์เป้าหมาย
Clin เคมี Lab 2008 Med; 46:225 – 34.
* Corresponding ผู้เขียน: เจนเอสเธอร์ กรม
ชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาลมหาวิทยาลัยเดน 5000
C เดน เดนมาร์ก
โทรศัพท์: q45-65-412865 โทรสาร: q45-65-411911,
อีเมล: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
18 สิงหาคม 2007 ได้รับ 30 ตุลาคม 2007 ที่ยอมรับ
คำสำคัญ: วิเคราะห์ก่อนเงื่อนไข เป้าหมายคุณภาพ;
อุณหภูมิในการเก็บ เก็บเวลา ขนส่งเลือด
ตัวอย่าง.
แนะนำ
ในเดนมาร์ก มีประชากรประมาณ 5.5 ล้าน ประมาณ
ตัวอย่างเลือด 3 ล้านจะออกปีละ
ในทั่วไปปฏิบัติ (GP) และส่งไปยังห้องปฏิบัติการโรงพยาบาล
สำหรับวิเคราะห์
โลจิสติกส์ขนส่งแตกต่างกันสำหรับต่าง ๆ
เขตในเดนมาร์ก ตัวอย่าง (ทั้งเลือดหรือพลาสม่า)
ขนส่งไปรษณีย์ รถ ''โรงพยาบาล '', แท็กซี่,
รถทัวร์หรือขนส่งส่วนบุคคล ในเขตทั้งหมด
เหล่านี้ไปใช้ ก่อนวิเคราะห์ปัจจัยยัง
แตกต่างกัน: ตัวอย่างจะวาดในท่อ หรือไม่
แยกเจ ส่ง หรือ ไม่ centrifugation หรือ
กับ centrifugation ตามแยกพลาสม่า (1,
2) ตัวอย่างที่ทำให้ห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลบาง
21 อุณหภูมิคง "18 C (1) ยัง แตกต่าง
ใช้แบรนด์ของหลอด
เงื่อนไขล่วงหน้าวิเคราะห์มีความเด็ดขาด
ผลกระทบผลขั้นสุดท้าย และอาจนำไปสู่การวินิจฉัย
ผิดพลาด นแคลร์ et al. (3) อธิบาย pseudohyperkalaemia ฤดูกาล
ระหว่างขนส่งตัวอย่าง ที่ล่าสุด
เอกสารเผยแพร่ (4) เกี่ยวข้องกับ hyperkalaemia เก๊
เกิดจากการเก็บตัวอย่างและขนส่ง
เงื่อนไขการ
Centrifugation เลือดตัวอย่างก่อนขนส่ง
ใช้เวลานาน และมีราคาแพง นอกจากนี้ โอน
ของพลาสมากับหลอดอื่นเพิ่มความเสี่ยงทั้งของ
ตัวอย่างไม่ตรงกันและติดเชื้อ จึง มันเป็นกว่า
การขนส่งทั้งหมดเลือด เป็นทั้งการประหยัด
และคุณภาพผลของการวิเคราะห์ก่อน
มีมาก จุดมุ่งหมายของเราคือการ ตรวจสอบ
ที่ใช้เก็บข้อมูลเวลา อุณหภูมิในการเก็บ
และวิธีการขนส่งจะอนุญาตให้ใช้
หลักท่อ กับเลือดทั้งหมด หรือ ''เจ '' หลัง centrifugation
กระบวนงานที่มีอยู่ทั้งหมดในเขตสอง
ถูกสอบสวน
โฟกัสอยู่บนชุดของเงื่อนไขการขนส่ง
ดังกล่าว และไม่ บนตัวเดียวตัว
วัสดุและวิธีการ
เรื่อง
ผู้ป่วยผู้ใหญ่ที่ได้ในระหว่างขั้นตอนการดำเจาะ
ใน GP ของพวกเขาถูกขอให้เข้าร่วม หลอดพิเศษ (6 หรือ
7) ออก และส่งไปที่อื่นก่อนวิเคราะห์เงื่อนไขการ
การจัดการตัวอย่างและขั้นตอนการวิเคราะห์ล่วงหน้า
ถูกดำเนินการ โดยพนักงานของ GP พยาบาล เรื่อง
หรือห้องปฏิบัติการเทคโนโลยี
226 เจน et al.: เสถียรภาพอย่างเลือด
บทความในวารสาร - พิสูจน์ uncorrected
A ในศูนย์ จีพีเอส 4 พิจารณาจำนวนผู้ป่วยที่ 101 ระหว่าง
มีนาคม 2006 และ 105 ผู้ป่วยในระหว่างเดือน 2006 สิงหาคม ใน
ตัวอย่างถูกวาดระหว่าง 08.00 น.และเวลา 21.00 น.
ในศูนย์ B ห้าหลักสุขภาพศูนย์ละวาด
ตัวอย่างจากผู้ป่วย 20 (จำนวนผู้ป่วย 100) ในเดือนเมษายน
2006 และ 100 ผู้ป่วยใน 2549 กันยายน.
ขนส่ง
ศูนย์ขนส่งที่มีอยู่หมายความว่า ได้ตรวจสอบ.
เพื่อวัตถุประสงค์ในการศึกษา สถานการณ์บางอย่างเพิ่มเติมได้
สอบสวน
a:ศูนย์การขนส่ง โดยรถตัวอย่างไว้ใน
styrofoam ขนส่งกล่อง มีการจัดส่งพิเศษ
กล่องอยู่ที่รถ และได้รับสาธารณะ
พนักงานขับรถที่ส่งพวกเขาไปรับฝากของโรงพยาบาล ตัวอย่าง
ขนส่งวิธีนี้ถูกวางแบบสุ่ม และ
สัมผัสกับอุณหภูมิภายนอกประมาณ 30 นาทีสำหรับ
ระยะเวลาการขนส่งได้ประมาณ 60 นาที
a:ศูนย์การขนส่ง โดยพัสดุที่ถูกเก็บรวบรวมตัวอย่าง
ศูนย์ดูแล ตัวอย่างเหล่านี้ไว้ใน
ชั้น และมีตำแหน่งที่ตรงกัน ระยะเวลาการขนส่ง
มีประมาณ 10 – 60 นาที ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวม
จากจีพีเอสสองเป็นวัน
a:ศูนย์ขนส่งทางไปรษณีย์ที่มีส่งตัวอย่างหลังจาก centrifugation,
กับพลาสม่า ''บนเจ '' เข้าถึงโดยปกติ
โรงพยาบาลเช้าวันถัดไป ตัวอย่างที่ถูกขนส่งในการ
ตำแหน่งสุ่ม การสัมผัสอุณหภูมิกลางแจ้งถูก
แปร
ศูนย์ B มีบริการการขนส่งประจำขึ้น ,
ที่เลือกตัวอย่างเลือดภายใน 8 h หลังจากสุ่มตัวอย่าง.
ในขณะเดียวกัน เก็บตัวอย่างทั้งหมดที่อุณหภูมิควบคุม
ของ 18C ในกล่อง thermostated พิเศษ 21" และ
มั่นคงอุณหภูมิไว้ระหว่างขนส่ง ระหว่าง
ขนส่ง ตัวอย่างมีตำแหน่งตรงกัน ขั้นตอนนี้
จะติดตามผลของการสอบสวนก่อนหน้านี้
อธิบายในปี 2005 (1) ระยะเวลาการขนส่งในระหว่างนี้
สอบสวนได้ 10 – 15 นาที
เป็นแบบขนส่งเพิ่มเติม เราตรวจสอบความมั่นคง
ตัวอย่างเก็บ 4 และ 8 h ที่อุณหภูมิห้อง
ตัวอย่างเหล่านี้ถูกขนส่งเข้าด้วยกัน และ ในเดียวกัน
วิธีเป็นการ thermostated ตัวอย่างการ
อีกประการหนึ่งสำหรับ GPs ตั้งอยู่ไกลจากห้องปฏิบัติการศูนย์ B
จะบินสม่า centrifuge ตัวอย่างเลือด
ไปยังอีกหลอด และจดหมายเหล่านั้นไปยังห้องปฏิบัติการ ที่นี่,
ดำเนินการสถานการณ์เพิ่มเติม: centrifuged เมล์ของ
ตัวอย่าง ''บนเจ '' โดยไม่แยกพลาสม่า
อุณหภูมิ
ศูนย์ A อุณหภูมิเฉลี่ยสำหรับรอบระยะเวลาที่
ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวมในช่วงฤดูหนาว-4.38 C ที่
คืนและ 1.58 C ระหว่างวัน ในเดือนสิงหาคม เฉลี่ยอุณหภูมิ
ถูกเหนือ 308C ในระหว่างการสอบสวน GPs
ที่เข้าร่วมมีอากาศไม่-ปรับ
ศูนย์ B ตัวอย่างถูกเก็บไว้ในอุณหภูมิห้อง
21" 18C ในกล่อง thermostated พิเศษสำหรับ 4 หรือ 8 h.
อุณหภูมิเฉลี่ยสำหรับรอบระยะเวลาที่ตัวอย่าง
ถูกส่งจดหมายในช่วงฤดูหนาวมี q18C คืน
และ 5.08C ระหว่างวัน
ในช่วงฤดูร้อน อุณหภูมิกลางคืนเฉลี่ย
138C และ C 208 ระหว่างวัน
เวลาสุ่ม การมาถึงของตัวอย่างที่โรงพยาบาล
และบันทึกเวลาการวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการ
ระบบข้อมูล
คำย่อ
ชุด investigated สถานการณ์วิเคราะห์ล่วงหน้า
กำหนด A1 ถึง A7 และ B1 ถึง B6 ศูนย์ A และ
ศูนย์ B ตามลำดับ คำอธิบายของรหัสเหล่านี้ได้
ในตารางที่ 1 และ 2.
วิธีวิเคราะห์
GPs ศูนย์เจ VenoSafe ลิเธียมเฮพารินใช้
ท่อ (ล็อต 0510051) จาก Terumo ประสานแพทย์,
Leuven เบลเยียม ในศูนย์บริการ B ลิเธียมเฮพารินท่อกับเจ
จาก สัน Becton, BD วินิจฉัย พลีมัธ อังกฤษ
ใช้
ร่วมเกี่ยวข้อง centrifuged ตัวอย่างสำหรับ
7 – 10 นาทีที่ 1300 – 2000 = g ตามของผู้ผลิตหลอด
คำแนะนำ.
ส่วนประกอบ investigated จะแสดงในตาราง 3
รวมเกณฑ์ได้ว่า ส่วนประกอบทั้งหมดสามารถ analysed
ในหลอดเดียวกัน ดังนั้น ส่วนประกอบเช่นกลูโคส,
ต้องสุ่มตัวอย่างหลอดเลือดพิเศษไม่
ถือ
พลาสม่าความเข้มข้นของส่วนประกอบทั้งหมด investigated
ถูก analysed ในศูนย์ทั้งบน P Modular จากโรช
วินิจฉัย ด้วยชุดเชิงพาณิชย์จากการวินิจฉัยโรช
GmbH มันน์ไฮม์ ประเทศเยอรมนี
ตัว '' 0-อย่าง '' เป็นตัวอย่างเลือดที่ใช้ centrifuged
และแยกที่สำนักงานแพทย์ภายใน 45 – 60 นาที และ
ถือว่าเป็นการประเมินที่ดีของการเปรียบเทียบ ''จริง '' ค่า
หลัง พลาสม่าถือว่ามีเสถียรภาพในระหว่าง
โพรโทคอลออกแบบระยะเวลา (5-7) มีจัดการ '' 0-ตัวอย่าง ''
โดยห้องปฏิบัติการ (อุณหภูมิ regulatedsthermostated)
กล่อง เก็บอุณหภูมิ 18C 21" และซื้อ
จาก ViboCold, Viborg เดนมาร์ก
คุณภาพวิเคราะห์เป้าหมาย
ขีดจำกัดการยอมรับความแตกต่างจากผลลัพธ์ตัวอย่าง 0
กำหนดไว้ล่วงหน้า โดยผู้เขียนเอกสารนี้ (ตาราง 3) CLIA
กฎถูกอ้างถึงใน Tietz (8) x และความสำคัญของส่วนประกอบ
สำหรับ GPs ถูกนำมาร่วมพิจารณาด้วย
เนื่องจากสัมประสิทธิ์การวิเคราะห์ความแปรปรวน (CV) %สำหรับ
เดียวส่วนประกอบในห้องปฏิบัติการมีผลต่อทั้งการ
samp เปรียบเทียบ
บทความในวารสาร - พิสูจน์ uncorrected
เสถียรภาพของเลือดเฮพารินตัวอย่างในระหว่างการขนส่งตาม
กำหนดเป้าหมายคุณภาพวิเคราะห์ล่วงหน้า
เอสเธอร์ A. Jensen1, *, มาร์ Stahl2, Ivan
Brandslund2, 4 และต่อ Grinsted1, 3
1 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก เดน
โรงพยาบาลมหาวิทยาลัย เดน เดนมาร์ก
2 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาล Vejle,
Vejle เดนมาร์ก
3 แผนกเวชปฏิบัติทั่วไป มหาวิทยาลัย
ประเทศเดนมาร์ก เดน เดนมาร์ก
4 สถาบันวิจัยสุขภาพภูมิภาค มหาวิทยาลัย
ประเทศเดนมาร์ก เดน เดนมาร์ก
นามธรรม
พื้นหลัง: ในหลายประเทศ และโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
สแกนดิเนเวีย ตัวอย่างเลือดที่ออกในการดูแลสุขภาพหลัก
จะถูกส่งไปห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลได้สำหรับการวิเคราะห์ ใน
ตัวอย่างกำลังเผชิญกับเงื่อนไขต่าง ๆ เกี่ยวกับ
เก็บ อุณหภูมิในการเก็บ และขนส่ง
ฟอร์ม ขณะที่ปัจจัยเหล่านี้สามารถมีผลกระทบรุนแรงด้าน
คุณภาพของผลลัพธ์ เราต้องการศึกษาการผสม
ขนส่ง เงื่อนไขสามารถสนองความต้องการของเรากำหนดไว้ล่วงหน้า
เป้าหมายสูงสุดที่ใช้ข้อผิดพลาดได้
วิธี: ตัวอย่างจากผู้ป่วย 406 จากทั่วไป 9
ผู้ (GPs) ในประเทศเดนมาร์กสองถูก
ส่งไปโรงพยาบาลที่สองสำหรับวิเคราะห์ ช่วงที่สอง
(winter and summer) เงื่อนไขในการขนส่ง (จดหมาย,
รับส่งพัสดุ หรือมาโรงพยาบาลโดยสาธารณะ
โค้ช), เก็บ เก็บอุณหภูมิ และ centrifugation
ความต้องแตกต่างกันในสอง
เขต ผลทดสอบสำหรับความแตกต่างจาก '' 0-
ตัวอย่าง '', ตัวอย่างเลือดที่ถ่าย centrifuged และ
คั่นที่สำนักงานแพทย์ภายใน 45 – 60 นาที นี้
ตัวอย่างถือว่าเป็นการประเมินที่ดีที่สุดของการเปรียบเทียบ
ค่า.
ผลลัพธ์: เป้าหมายคุณภาพที่ตั้งไว้ล่วงหน้าได้ดำเนินการทั้งหมด
ประกอบ investigated สำหรับขนส่งตัวอย่าง
โรงพยาบาลโดยพัสดุ เป็นเลือดทั้งหมด หรือเป็น '' บน
เจ '' หลัง centrifugation ตราบเท่าที่ตัวอย่างดี
เก็บที่ C 20 – 258 และ centrifuged/analysed ภายใน
h 5 – 6 มีทั้งหมด 4% ของตัวอย่างที่ส่งทางไปรษณีย์
เอกลักษณ์ อาจเนื่องจากพลาสม่าไม่ตรงกัน
โอนย้ายไปใหม่หลอดได้
บทสรุป: สามารถส่งตัวอย่างยังไม่เป็น
anticoagulated ทั้งเลือดถ้าข้างกล่าว
เงื่อนไขได้ ไม่จำเป็นสำหรับ centrifugation
ในภาคหลัก ไม่ส่งเมล์อย่าง
กับพลาสม่า ''บนเจ '' หรือขนส่งสาธารณะโดย
สนองความต้องการรถโค้ชของเราวิเคราะห์เป้าหมาย
Clin เคมี Lab 2008 Med; 46:225 – 34.
* Corresponding ผู้เขียน: เจนเอสเธอร์ กรม
ชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาลมหาวิทยาลัยเดน 5000
C เดน เดนมาร์ก
โทรศัพท์: q45-65-412865 โทรสาร: q45-65-411911,
อีเมล: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
18 สิงหาคม 2007 ได้รับ 30 ตุลาคม 2007 ที่ยอมรับ
คำสำคัญ: วิเคราะห์ก่อนเงื่อนไข เป้าหมายคุณภาพ;
อุณหภูมิในการเก็บ เก็บเวลา ขนส่งเลือด
ตัวอย่าง.
แนะนำ
ในเดนมาร์ก มีประชากรประมาณ 5.5 ล้าน ประมาณ
ตัวอย่างเลือด 3 ล้านจะออกปีละ
ในทั่วไปปฏิบัติ (GP) และส่งไปยังห้องปฏิบัติการโรงพยาบาล
สำหรับวิเคราะห์
โลจิสติกส์ขนส่งแตกต่างกันสำหรับต่าง ๆ
เขตในเดนมาร์ก ตัวอย่าง (ทั้งเลือดหรือพลาสม่า)
ขนส่งไปรษณีย์ รถ ''โรงพยาบาล '', แท็กซี่,
รถทัวร์หรือขนส่งส่วนบุคคล ในเขตทั้งหมด
เหล่านี้ไปใช้ ก่อนวิเคราะห์ปัจจัยยัง
แตกต่างกัน: ตัวอย่างจะวาดในท่อ หรือไม่
แยกเจ ส่ง หรือ ไม่ centrifugation หรือ
กับ centrifugation ตามแยกพลาสม่า (1,
2) ตัวอย่างที่ทำให้ห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลบาง
21 อุณหภูมิคง "18 C (1) ยัง แตกต่าง
ใช้แบรนด์ของหลอด
เงื่อนไขล่วงหน้าวิเคราะห์มีความเด็ดขาด
ผลกระทบผลขั้นสุดท้าย และอาจนำไปสู่การวินิจฉัย
ผิดพลาด นแคลร์ et al. (3) อธิบาย pseudohyperkalaemia ฤดูกาล
ระหว่างขนส่งตัวอย่าง ที่ล่าสุด
เอกสารเผยแพร่ (4) เกี่ยวข้องกับ hyperkalaemia เก๊
เกิดจากการเก็บตัวอย่างและขนส่ง
เงื่อนไขการ
Centrifugation เลือดตัวอย่างก่อนขนส่ง
ใช้เวลานาน และมีราคาแพง นอกจากนี้ โอน
ของพลาสมากับหลอดอื่นเพิ่มความเสี่ยงทั้งของ
ตัวอย่างไม่ตรงกันและติดเชื้อ จึง มันเป็นกว่า
การขนส่งทั้งหมดเลือด เป็นทั้งการประหยัด
และคุณภาพผลของการวิเคราะห์ก่อน
มีมาก จุดมุ่งหมายของเราคือการ ตรวจสอบ
ที่ใช้เก็บข้อมูลเวลา อุณหภูมิในการเก็บ
และวิธีการขนส่งจะอนุญาตให้ใช้
หลักท่อ กับเลือดทั้งหมด หรือ ''เจ '' หลัง centrifugation
กระบวนงานที่มีอยู่ทั้งหมดในเขตสอง
ถูกสอบสวน
โฟกัสอยู่บนชุดของเงื่อนไขการขนส่ง
ดังกล่าว และไม่ บนตัวเดียวตัว
วัสดุและวิธีการ
เรื่อง
ผู้ป่วยผู้ใหญ่ที่ได้ในระหว่างขั้นตอนการดำเจาะ
ใน GP ของพวกเขาถูกขอให้เข้าร่วม หลอดพิเศษ (6 หรือ
7) ออก และส่งไปที่อื่นก่อนวิเคราะห์เงื่อนไขการ
การจัดการตัวอย่างและขั้นตอนการวิเคราะห์ล่วงหน้า
ถูกดำเนินการ โดยพนักงานของ GP พยาบาล เรื่อง
หรือห้องปฏิบัติการเทคโนโลยี
226 เจน et al.: เสถียรภาพอย่างเลือด
บทความในวารสาร - พิสูจน์ uncorrected
A ในศูนย์ จีพีเอส 4 พิจารณาจำนวนผู้ป่วยที่ 101 ระหว่าง
มีนาคม 2006 และ 105 ผู้ป่วยในระหว่างเดือน 2006 สิงหาคม ใน
ตัวอย่างถูกวาดระหว่าง 08.00 น.และเวลา 21.00 น.
ในศูนย์ B ห้าหลักสุขภาพศูนย์ละวาด
ตัวอย่างจากผู้ป่วย 20 (จำนวนผู้ป่วย 100) ในเดือนเมษายน
2006 และ 100 ผู้ป่วยใน 2549 กันยายน.
ขนส่ง
ศูนย์ขนส่งที่มีอยู่หมายความว่า ได้ตรวจสอบ.
เพื่อวัตถุประสงค์ในการศึกษา สถานการณ์บางอย่างเพิ่มเติมได้
สอบสวน
a:ศูนย์การขนส่ง โดยรถตัวอย่างไว้ใน
styrofoam ขนส่งกล่อง มีการจัดส่งพิเศษ
กล่องอยู่ที่รถ และได้รับสาธารณะ
พนักงานขับรถที่ส่งพวกเขาไปรับฝากของโรงพยาบาล ตัวอย่าง
ขนส่งวิธีนี้ถูกวางแบบสุ่ม และ
สัมผัสกับอุณหภูมิภายนอกประมาณ 30 นาทีสำหรับ
ระยะเวลาการขนส่งได้ประมาณ 60 นาที
a:ศูนย์การขนส่ง โดยพัสดุที่ถูกเก็บรวบรวมตัวอย่าง
ศูนย์ดูแล ตัวอย่างเหล่านี้ไว้ใน
ชั้น และมีตำแหน่งที่ตรงกัน ระยะเวลาการขนส่ง
มีประมาณ 10 – 60 นาที ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวม
จากจีพีเอสสองเป็นวัน
a:ศูนย์ขนส่งทางไปรษณีย์ที่มีส่งตัวอย่างหลังจาก centrifugation,
กับพลาสม่า ''บนเจ '' เข้าถึงโดยปกติ
โรงพยาบาลเช้าวันถัดไป ตัวอย่างที่ถูกขนส่งในการ
ตำแหน่งสุ่ม การสัมผัสอุณหภูมิกลางแจ้งถูก
แปร
ศูนย์ B มีบริการการขนส่งประจำขึ้น ,
ที่เลือกตัวอย่างเลือดภายใน 8 h หลังจากสุ่มตัวอย่าง.
ในขณะเดียวกัน เก็บตัวอย่างทั้งหมดที่อุณหภูมิควบคุม
ของ 18C ในกล่อง thermostated พิเศษ 21" และ
มั่นคงอุณหภูมิไว้ระหว่างขนส่ง ระหว่าง
ขนส่ง ตัวอย่างมีตำแหน่งตรงกัน ขั้นตอนนี้
จะติดตามผลของการสอบสวนก่อนหน้านี้
อธิบายในปี 2005 (1) ระยะเวลาการขนส่งในระหว่างนี้
สอบสวนได้ 10 – 15 นาที
เป็นแบบขนส่งเพิ่มเติม เราตรวจสอบความมั่นคง
ตัวอย่างเก็บ 4 และ 8 h ที่อุณหภูมิห้อง
ตัวอย่างเหล่านี้ถูกขนส่งเข้าด้วยกัน และ ในเดียวกัน
วิธีเป็นการ thermostated ตัวอย่างการ
อีกประการหนึ่งสำหรับ GPs ตั้งอยู่ไกลจากห้องปฏิบัติการศูนย์ B
จะบินสม่า centrifuge ตัวอย่างเลือด
ไปยังอีกหลอด และจดหมายเหล่านั้นไปยังห้องปฏิบัติการ ที่นี่,
ดำเนินการสถานการณ์เพิ่มเติม: centrifuged เมล์ของ
ตัวอย่าง ''บนเจ '' โดยไม่แยกพลาสม่า
อุณหภูมิ
ศูนย์ A อุณหภูมิเฉลี่ยสำหรับรอบระยะเวลาที่
ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวมในช่วงฤดูหนาว-4.38 C ที่
คืนและ 1.58 C ระหว่างวัน ในเดือนสิงหาคม เฉลี่ยอุณหภูมิ
ถูกเหนือ 308C ในระหว่างการสอบสวน GPs
ที่เข้าร่วมมีอากาศไม่-ปรับ
ศูนย์ B ตัวอย่างถูกเก็บไว้ในอุณหภูมิห้อง
21" 18C ในกล่อง thermostated พิเศษสำหรับ 4 หรือ 8 h.
อุณหภูมิเฉลี่ยสำหรับรอบระยะเวลาที่ตัวอย่าง
ถูกส่งจดหมายในช่วงฤดูหนาวมี q18C คืน
และ 5.08C ระหว่างวัน
ในช่วงฤดูร้อน อุณหภูมิกลางคืนเฉลี่ย
138C และ C 208 ระหว่างวัน
เวลาสุ่ม การมาถึงของตัวอย่างที่โรงพยาบาล
และบันทึกเวลาการวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการ
ระบบข้อมูล
คำย่อ
ชุด investigated สถานการณ์วิเคราะห์ล่วงหน้า
กำหนด A1 ถึง A7 และ B1 ถึง B6 ศูนย์ A และ
ศูนย์ B ตามลำดับ คำอธิบายของรหัสเหล่านี้ได้
ในตารางที่ 1 และ 2.
วิธีวิเคราะห์
GPs ศูนย์เจ VenoSafe ลิเธียมเฮพารินใช้
ท่อ (ล็อต 0510051) จาก Terumo ประสานแพทย์,
Leuven เบลเยียม ในศูนย์บริการ B ลิเธียมเฮพารินท่อกับเจ
จาก สัน Becton, BD วินิจฉัย พลีมัธ อังกฤษ
ใช้
ร่วมเกี่ยวข้อง centrifuged ตัวอย่างสำหรับ
7 – 10 นาทีที่ 1300 – 2000 = g ตามของผู้ผลิตหลอด
คำแนะนำ.
ส่วนประกอบ investigated จะแสดงในตาราง 3
รวมเกณฑ์ได้ว่า ส่วนประกอบทั้งหมดสามารถ analysed
ในหลอดเดียวกัน ดังนั้น ส่วนประกอบเช่นกลูโคส,
ต้องสุ่มตัวอย่างหลอดเลือดพิเศษไม่
ถือ
พลาสม่าความเข้มข้นของส่วนประกอบทั้งหมด investigated
ถูก analysed ในศูนย์ทั้งบน P Modular จากโรช
วินิจฉัย ด้วยชุดเชิงพาณิชย์จากการวินิจฉัยโรช
GmbH มันน์ไฮม์ ประเทศเยอรมนี
ตัว '' 0-อย่าง '' เป็นตัวอย่างเลือดที่ใช้ centrifuged
และแยกที่สำนักงานแพทย์ภายใน 45 – 60 นาที และ
ถือว่าเป็นการประเมินที่ดีของการเปรียบเทียบ ''จริง '' ค่า
หลัง พลาสม่าถือว่ามีเสถียรภาพในระหว่าง
โพรโทคอลออกแบบระยะเวลา (5-7) มีจัดการ '' 0-ตัวอย่าง ''
โดยห้องปฏิบัติการ (อุณหภูมิ regulatedsthermostated)
กล่อง เก็บอุณหภูมิ 18C 21" และซื้อ
จาก ViboCold, Viborg เดนมาร์ก
คุณภาพวิเคราะห์เป้าหมาย
ขีดจำกัดการยอมรับความแตกต่างจากผลลัพธ์ตัวอย่าง 0
กำหนดไว้ล่วงหน้า โดยผู้เขียนเอกสารนี้ (ตาราง 3) CLIA
กฎถูกอ้างถึงใน Tietz (8) x และความสำคัญของส่วนประกอบ
สำหรับ GPs ถูกนำมาร่วมพิจารณาด้วย
เนื่องจากสัมประสิทธิ์การวิเคราะห์ความแปรปรวน (CV) %สำหรับ
เดียวส่วนประกอบในห้องปฏิบัติการมีผลต่อทั้งการ
samp เปรียบเทียบ
การแปล กรุณารอสักครู่..
Clin Chem Lab Med 2008;46(2):225–234 2008 by Walter de Gruyter • Berlin • New York. DOI 10.1515/CCLM.2008.053 2007/385
Article in press - uncorrected proof
Stability of heparin blood samples during transport based on
defined pre-analytical quality goals
Esther A. Jensen1,*, Marta Stahl2, Ivan
Brandslund2,4 and Per Grinsted1,3
1 Department of Clinical Biochemistry, Odense
University Hospital, Odense, Denmark
2 Department of Clinical Biochemistry, Vejle Hospital,
Vejle, Denmark
3 Division for General Practice, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
4 Institute of Regional Health Research, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
Abstract
Background: In many countries and especially in
Scandinavia, blood samples drawn in primary healthcare
are sent to a hospital laboratory for analysis. The
samples are exposed to various conditions regarding
storage time, storage temperature and transport
form. As these factors can have a severe impact on
the quality of results, we wanted to study which combination
of transport conditions could fulfil our predefined
goals for maximum allowable error.
Methods: Samples from 406 patients from nine general
practitioners (GPs) in two Danish counties were
sent to two hospitals for analyses, during two periods
(winter and summer). Transport conditions (mail,
courier pick-up, or brought to hospital by public
coach), storage time, storage temperature and centrifugation
requirements were different in the two
counties. Results were tested for deviation from a ‘‘0-
sample’’, the blood sample taken, centrifuged and
separated at the doctor’s office within 45–60 min. This
sample was considered as the best estimate of a comparison
value.
Results: The pre-set quality goals were fulfilled for all
the investigated components for samples transported
to hospital by courier either as whole blood or as ‘‘on
gel’’ after centrifugation, as long as the samples were
stored at 20–258C and centrifuged/analysed within
5–6 h. A total of 4% of the samples sent by mail had
mismatched identity, probably due to plasma being
transferred to a new tube.
Conclusions: Samples can be sent as unprocessed
anticoagulated whole blood if the above mentioned
conditions are met. There is no need for centrifugation
in the primary sector. Neither mailing of samples
with plasma ‘‘on gel’’ nor public transport by
coach bus fulfil our analytical goals.
Clin Chem Lab Med 2008;46:225–34.
*Corresponding author: Esther Jensen, Department of
Clinical Biochemistry, Odense University Hospital, 5000
Odense C, Denmark
Phone: q45-65-412865, Fax: q45-65-411911,
E-mail: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
Received August 18, 2007; accepted October 30, 2007
Keywords: pre-analytical conditions; quality goals;
storage temperature; storage time; transport of blood
samples.
Introduction
In Denmark with a population of 5.5 million, approximately
3 million blood samples are drawn each year
in General Practice (GP) and sent to hospital laboratories
for analyses.
The transport logistics are different for various
counties in Denmark. Samples (whole blood or plasma)
are transported by mail, by ‘‘hospital car’’, taxi,
coach or private transport. In at least one county all
these possibilities are used. Pre-analytical factors also
vary: the samples are drawn in tubes with or without
separation gel, sent with or without centrifugation, or
with centrifugation followed by plasma separation (1,
2). Some hospital laboratories keep the samples at a
constant temperature of 21"18C (1). Also, different
brands of tubes are used.
The pre-analytical conditions have a decisive
impact on the final result and may lead to diagnostic
mistakes. Sinclair et al. (3) describe seasonal pseudohyperkalaemia
during transport of samples. A recently
published paper (4) deals with spurious hyperkalaemia
caused by storage of the sample and transport
conditions.
Centrifugation of blood samples before transport is
time consuming and expensive. Furthermore, transfer
of plasma to another tube increases both the risk of
sample mismatch and infection. Therefore, it is preferable
to transport whole blood. As both the economical
and quality consequences of pre-analytical
solutions are considerable, our aim was to investigate
which combination of storage time, storage temperature
and transport method would allow the use of
primary tubes with whole blood or ‘‘on gel’’ after centrifugation.
All existing procedures in two counties
were investigated.
The focus was on combinations of transport conditions
as such and not on a single factor.
Materials and methods
Subjects
Adult patients that were undergoing routine venous puncture
at their GP were asked to participate. Extra tubes (6 or
7) were drawn and submitted to different pre-analytical conditions.
The sample handling and the pre-analytical procedures
were carried out by the GP’s staff, nurses, secretaries
or laboratory technologists.
226 Jensen et al.: Stability of blood samples
Article in press - uncorrected proof
In Centre A, four GPs recruited a total of 101 patients during
March 2006 and 105 patients during August 2006. The
samples were drawn between 08.00 and 09.30 am.
In Centre B, five primary healthcare centres each drew
samples from 20 patients (a total of 100 patients) in April
2006 and from 100 patients in September 2006.
Transport
The centres existing transportation means were examined.
For study purposes, some additional situations were
investigated.
Centre A: Transport by coach The samples were placed in
styrofoam transport boxes. They were delivered in special
boxes located at bus stops and were picked up by a public
bus driver who delivered them to hospital porters. The samples
transported this way were positioned randomly and
exposed to outdoor temperatures for approximately 30 min.
The duration of transport was approximately 60 min.
Centre A: Transport by courier The samples were collected
at the primary care centre. These samples were placed in
racks and were positioned upright. The duration of transport
was approximately 10–60 min. The samples were collected
from the GPs twice a day.
Centre A: Transport by mail Samples were sent after centrifugation,
with plasma ‘‘on gel’’. They normally reached the
hospital the next morning. Samples were transported in a
random position. The exposure to outdoor temperature was
variable.
Centre B There is an established routine courier service,
which picks up the blood samples within 8 h after sampling.
In the meantime, all samples are stored at a controlled temperature
of 21"18C in a special thermostated box, and the
stable temperature is maintained during transport. During
transport, the samples are positioned upright. This procedure
is a follow-up of the results of the previous investigation
described in 2005 (1). Duration of transport during this
investigation was 10–15 min.
As an additional transport form we investigated the stability
of samples stored for 4 and 8 h at room temperature.
These samples were transported together and in the same
way as the thermostated samples.
Another possibility for GPs located far from Centre B’s laboratory
is to centrifuge the blood samples, transfer the plasma
to another tube and mail them to the laboratory. Here,
an additional situation was undertaken: mailing of centrifuged
samples ‘‘on gel’’ without plasma separation.
Temperature
Centre A The average temperature for the period in which
the samples were collected during the winter was –4.38C at
night and 1.58C during the day. In August, average temperatures
were above 308C during the investigation. The GPs
that participated had no air-conditioning.
Centre B Samples were stored either at room temperature
or at 21"18C in the special thermostated boxes for 4 or 8 h.
The average temperature for the period in which the samples
were sent by mail during the winter was q18C at night
and 5.08C during the day.
In the summer period, the average night temperature was
138C and 208C during the day.
The sampling time, the arrival of the sample at the hospital
and the analysing time were recorded in the laboratory
information system.
Abbreviations
The investigated combinations of pre-analytical circumstances
are designated A1 to A7 and B1 to B6 for Centre A and
Centre B, respectively. Explanation of these codes is given
in Tables 1 and 2.
Analytical methods
The GPs in Centre A used VenoSafe Lithium Heparin gel
tubes (Lot 0510051) from Terumo Medical Incorporation,
Leuven, Belgium. In Centre B, Lithium Heparin tubes with gel
from Becton Dickinson, BD Diagnostics, Plymouth, England
were used.
All involved participants centrifuged the samples for
7–10 min at 1300–2000=g according to tube manufacturer’s
instructions.
The investigated components are listed in Table 3. The
inclusion criterion was that all components could be analysed
in a single tube. Thus, components such as glucose,
demanding a special blood sampling tube were not
considered.
Plasma concentrations of all investigated components
were analysed in both centres on Modular P from Roche
Diagnostics, with commercial kits from Roche Diagnostics
GmbH, Mannheim, Germany.
A ‘‘0-sample’’ was the blood sample taken, centrifuged
and separated at the doctor’s office within 45–60 min and
considered as the best estimate of a ‘‘true’’ comparison value.
Thereafter, the plasma is considered stable during the
designed protocol period (5–7). The ‘‘0-samples’’ were handled
by laboratory (temperature regulatedsthermostated)
boxes, able to keep a temperature of 21"18C, and were purchased
from ViboCold, Viborg, Denmark.
Analytical quality goals
Limits for acceptable deviation from the 0-sample results
were pre-defined by the authors of this paper (Table 3). CLIA
rules was cited in Tietz (8)x and the relevance of the components
for the GPs were taken into consideration.
Because the analytical coefficient of variation (CV)% for the
single component in the laboratories influences both the
comparison samp
Article in press - uncorrected proof
Stability of heparin blood samples during transport based on
defined pre-analytical quality goals
Esther A. Jensen1,*, Marta Stahl2, Ivan
Brandslund2,4 and Per Grinsted1,3
1 Department of Clinical Biochemistry, Odense
University Hospital, Odense, Denmark
2 Department of Clinical Biochemistry, Vejle Hospital,
Vejle, Denmark
3 Division for General Practice, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
4 Institute of Regional Health Research, University of
Southern Denmark, Odense, Denmark
Abstract
Background: In many countries and especially in
Scandinavia, blood samples drawn in primary healthcare
are sent to a hospital laboratory for analysis. The
samples are exposed to various conditions regarding
storage time, storage temperature and transport
form. As these factors can have a severe impact on
the quality of results, we wanted to study which combination
of transport conditions could fulfil our predefined
goals for maximum allowable error.
Methods: Samples from 406 patients from nine general
practitioners (GPs) in two Danish counties were
sent to two hospitals for analyses, during two periods
(winter and summer). Transport conditions (mail,
courier pick-up, or brought to hospital by public
coach), storage time, storage temperature and centrifugation
requirements were different in the two
counties. Results were tested for deviation from a ‘‘0-
sample’’, the blood sample taken, centrifuged and
separated at the doctor’s office within 45–60 min. This
sample was considered as the best estimate of a comparison
value.
Results: The pre-set quality goals were fulfilled for all
the investigated components for samples transported
to hospital by courier either as whole blood or as ‘‘on
gel’’ after centrifugation, as long as the samples were
stored at 20–258C and centrifuged/analysed within
5–6 h. A total of 4% of the samples sent by mail had
mismatched identity, probably due to plasma being
transferred to a new tube.
Conclusions: Samples can be sent as unprocessed
anticoagulated whole blood if the above mentioned
conditions are met. There is no need for centrifugation
in the primary sector. Neither mailing of samples
with plasma ‘‘on gel’’ nor public transport by
coach bus fulfil our analytical goals.
Clin Chem Lab Med 2008;46:225–34.
*Corresponding author: Esther Jensen, Department of
Clinical Biochemistry, Odense University Hospital, 5000
Odense C, Denmark
Phone: q45-65-412865, Fax: q45-65-411911,
E-mail: Esther.Jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
Received August 18, 2007; accepted October 30, 2007
Keywords: pre-analytical conditions; quality goals;
storage temperature; storage time; transport of blood
samples.
Introduction
In Denmark with a population of 5.5 million, approximately
3 million blood samples are drawn each year
in General Practice (GP) and sent to hospital laboratories
for analyses.
The transport logistics are different for various
counties in Denmark. Samples (whole blood or plasma)
are transported by mail, by ‘‘hospital car’’, taxi,
coach or private transport. In at least one county all
these possibilities are used. Pre-analytical factors also
vary: the samples are drawn in tubes with or without
separation gel, sent with or without centrifugation, or
with centrifugation followed by plasma separation (1,
2). Some hospital laboratories keep the samples at a
constant temperature of 21"18C (1). Also, different
brands of tubes are used.
The pre-analytical conditions have a decisive
impact on the final result and may lead to diagnostic
mistakes. Sinclair et al. (3) describe seasonal pseudohyperkalaemia
during transport of samples. A recently
published paper (4) deals with spurious hyperkalaemia
caused by storage of the sample and transport
conditions.
Centrifugation of blood samples before transport is
time consuming and expensive. Furthermore, transfer
of plasma to another tube increases both the risk of
sample mismatch and infection. Therefore, it is preferable
to transport whole blood. As both the economical
and quality consequences of pre-analytical
solutions are considerable, our aim was to investigate
which combination of storage time, storage temperature
and transport method would allow the use of
primary tubes with whole blood or ‘‘on gel’’ after centrifugation.
All existing procedures in two counties
were investigated.
The focus was on combinations of transport conditions
as such and not on a single factor.
Materials and methods
Subjects
Adult patients that were undergoing routine venous puncture
at their GP were asked to participate. Extra tubes (6 or
7) were drawn and submitted to different pre-analytical conditions.
The sample handling and the pre-analytical procedures
were carried out by the GP’s staff, nurses, secretaries
or laboratory technologists.
226 Jensen et al.: Stability of blood samples
Article in press - uncorrected proof
In Centre A, four GPs recruited a total of 101 patients during
March 2006 and 105 patients during August 2006. The
samples were drawn between 08.00 and 09.30 am.
In Centre B, five primary healthcare centres each drew
samples from 20 patients (a total of 100 patients) in April
2006 and from 100 patients in September 2006.
Transport
The centres existing transportation means were examined.
For study purposes, some additional situations were
investigated.
Centre A: Transport by coach The samples were placed in
styrofoam transport boxes. They were delivered in special
boxes located at bus stops and were picked up by a public
bus driver who delivered them to hospital porters. The samples
transported this way were positioned randomly and
exposed to outdoor temperatures for approximately 30 min.
The duration of transport was approximately 60 min.
Centre A: Transport by courier The samples were collected
at the primary care centre. These samples were placed in
racks and were positioned upright. The duration of transport
was approximately 10–60 min. The samples were collected
from the GPs twice a day.
Centre A: Transport by mail Samples were sent after centrifugation,
with plasma ‘‘on gel’’. They normally reached the
hospital the next morning. Samples were transported in a
random position. The exposure to outdoor temperature was
variable.
Centre B There is an established routine courier service,
which picks up the blood samples within 8 h after sampling.
In the meantime, all samples are stored at a controlled temperature
of 21"18C in a special thermostated box, and the
stable temperature is maintained during transport. During
transport, the samples are positioned upright. This procedure
is a follow-up of the results of the previous investigation
described in 2005 (1). Duration of transport during this
investigation was 10–15 min.
As an additional transport form we investigated the stability
of samples stored for 4 and 8 h at room temperature.
These samples were transported together and in the same
way as the thermostated samples.
Another possibility for GPs located far from Centre B’s laboratory
is to centrifuge the blood samples, transfer the plasma
to another tube and mail them to the laboratory. Here,
an additional situation was undertaken: mailing of centrifuged
samples ‘‘on gel’’ without plasma separation.
Temperature
Centre A The average temperature for the period in which
the samples were collected during the winter was –4.38C at
night and 1.58C during the day. In August, average temperatures
were above 308C during the investigation. The GPs
that participated had no air-conditioning.
Centre B Samples were stored either at room temperature
or at 21"18C in the special thermostated boxes for 4 or 8 h.
The average temperature for the period in which the samples
were sent by mail during the winter was q18C at night
and 5.08C during the day.
In the summer period, the average night temperature was
138C and 208C during the day.
The sampling time, the arrival of the sample at the hospital
and the analysing time were recorded in the laboratory
information system.
Abbreviations
The investigated combinations of pre-analytical circumstances
are designated A1 to A7 and B1 to B6 for Centre A and
Centre B, respectively. Explanation of these codes is given
in Tables 1 and 2.
Analytical methods
The GPs in Centre A used VenoSafe Lithium Heparin gel
tubes (Lot 0510051) from Terumo Medical Incorporation,
Leuven, Belgium. In Centre B, Lithium Heparin tubes with gel
from Becton Dickinson, BD Diagnostics, Plymouth, England
were used.
All involved participants centrifuged the samples for
7–10 min at 1300–2000=g according to tube manufacturer’s
instructions.
The investigated components are listed in Table 3. The
inclusion criterion was that all components could be analysed
in a single tube. Thus, components such as glucose,
demanding a special blood sampling tube were not
considered.
Plasma concentrations of all investigated components
were analysed in both centres on Modular P from Roche
Diagnostics, with commercial kits from Roche Diagnostics
GmbH, Mannheim, Germany.
A ‘‘0-sample’’ was the blood sample taken, centrifuged
and separated at the doctor’s office within 45–60 min and
considered as the best estimate of a ‘‘true’’ comparison value.
Thereafter, the plasma is considered stable during the
designed protocol period (5–7). The ‘‘0-samples’’ were handled
by laboratory (temperature regulatedsthermostated)
boxes, able to keep a temperature of 21"18C, and were purchased
from ViboCold, Viborg, Denmark.
Analytical quality goals
Limits for acceptable deviation from the 0-sample results
were pre-defined by the authors of this paper (Table 3). CLIA
rules was cited in Tietz (8)x and the relevance of the components
for the GPs were taken into consideration.
Because the analytical coefficient of variation (CV)% for the
single component in the laboratories influences both the
comparison samp
การแปล กรุณารอสักครู่..
ห้องปฏิบัติการเคมีสำหรับ Med 2008 ; 46 ( 2 ) : 225 – 234 2008 โดยวอลเตอร์ เดอ gruyter - เบอร์ลิน - นิวยอร์ก ดอย 10.1515/cclm.2008.053 2007 / 385
บทความในข่าว - uncorrected หลักฐาน
เสถียรภาพตัวอย่างเลือดของยาในระหว่างการขนส่งตามนิยามเชิงคุณภาพเป้าหมาย
ก่อนเอสเธอร์ . jensen1 , * , มาร์ stahl2 Ivan
brandslund2,4 และต่อ grinsted1,3
1 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาล
มหาวิทยาลัยOdense , เดนมาร์ก
2 ภาควิชาชีวเคมีคลินิกโรงพยาบาล
Vejle Vejle , เดนมาร์ก
3 ส่วนปฏิบัติการทั่วไป มหาวิทยาลัย
Odense ภาคใต้เดนมาร์ก , เดนมาร์ก
4 สถาบันวิจัยและพัฒนาสุขภาพภาคใต้ภูมิภาค มหาวิทยาลัย
Odense เดนมาร์ก , เดนมาร์ก
: พื้นหลังนามธรรมในหลายประเทศและโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
สแกนดิเนเวีย ตัวอย่างเลือดที่วาดใน
สุขภาพปฐมภูมิจะถูกส่งไปยังโรงพยาบาลห้องปฏิบัติการวิเคราะห์
ตัวอย่างเปิดเผยเงื่อนไขต่างๆเกี่ยวกับ
เวลากระเป๋า , อุณหภูมิและรูปแบบการขนส่ง
เป็นปัจจัยเหล่านี้สามารถมีผลกระทบอย่างรุนแรงต่อ
คุณภาพของผลลัพธ์ที่เราต้องการศึกษา ซึ่งการรวมกันของเงื่อนไขการขนส่งที่สามารถเติมเต็มเป้าหมาย
ของเราล่วงหน้าสำหรับความผิดพลาดสูงสุดที่อนุญาต .
วิธีการ :ตัวอย่างจากผู้ป่วย 406 จากเก้าแพทย์ทั่วไป
( GPS ) ใน 2 เดนมาร์กมณฑลถูก
ส่งไปโรงพยาบาล 2 ขึ้น ในระหว่างสองช่วงเวลา
( ฤดูหนาวและฤดูร้อน ) การขนส่ง ( อีเมล์ ,
courier รับหรือส่งมาโรงพยาบาลโดยสาธารณะ
โค้ช ) , กระเป๋า , กระเป๋าและอุณหภูมิที่แตกต่างกันในความต้องการ ดังนี้
สองมณฑลผลทดสอบการเบี่ยงเบนจาก ' ' 0 -
ตัวอย่าง ' ' ตัวอย่างเลือดไปแยกระดับและ
ที่สำนักงานของแพทย์ภายใน 45 - 60 นาที ตัวอย่างนี้
ถูกถือว่าเป็นประมาณการที่ดีที่สุดของการเปรียบเทียบค่า
.
ผลคุณภาพเป้าหมายที่ตั้งไว้ได้ครบถ้วนทั้งหมด
ศึกษาส่วนประกอบ สำหรับตัวอย่างขนส่ง
โรงพยาบาลโดยจัดส่งเป็นเลือด หรือเป็นใน
เจล ' ' หลังการปั่นเหวี่ยง ตราบใดที่จำนวน
เก็บไว้ที่ 20 – 258c ไฟฟ้า / การวิเคราะห์ภายใน
5 – 6 ชั่วโมง รวมเป็น 4 % ของตัวอย่างที่ส่งทางไปรษณีย์มีเอกลักษณ์
ไม่ตรงกัน คงเนื่องจากพลาสมาถูก
ย้ายหลอดใหม่ .
สรุป ตัวอย่างที่สามารถส่งเป็น ความคงตัวทางเคมีทั้งหมด ถ้ายังไม่ได้
สภาพดังกล่าวข้างต้นได้ ไม่ต้องปั่น
ในภาคหลัก หรือส่งเมล์ตัวอย่าง
กับพลาสมาในเจล ' ' หรือการขนส่งสาธารณะ
รถทัวร์ปฏิบัติตามเป้าหมายของเราวิเคราะห์ Lab Chem .
บ Med 2008 ; 46:225 – 34 .
* ที่เขียน : เอสเธอร์ เจนเซ่น ภาควิชา
ชีวเคมีคลินิก , โรงพยาบาลมหาวิทยาลัย , 5000
Odense C ,
: q45-65-412865 โทรศัพท์ , เดนมาร์ก โทรสาร : q45-65-411911 esther.jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
, E - mail :ได้รับ 18 สิงหาคม 2007 ; ยอมรับ 30 ตุลาคม 2550
คำสำคัญ : วิเคราะห์คุณภาพก่อนเงื่อนไข ; เป้าหมาย ; อุณหภูมิ
กระเป๋า ; การเก็บรักษา ; การขนส่งเลือด
.
บทนำ
ในเดนมาร์กมีประชากร 5.5 ล้าน ตัวอย่างเลือดประมาณ
3 ล้านวาดแต่ละปี
ในเวชปฏิบัติทั่วไป ( GP ) และ ส่งโรงพยาบาลห้องปฏิบัติการ
สำหรับวิเคราะห์ข้อมูลการขนส่งโลจิสติกส์จะแตกต่างกันสำหรับมณฑลต่างๆ
ในเดนมาร์ก ตัวอย่าง ( เลือดหรือพลาสมา )
ถูกขนส่งทางไปรษณีย์ โดย 'hospital ' รถ ' ' , แท็กซี่ ,
โค้ชหรือขนส่งเอกชน ในอย่างน้อยหนึ่งเขตทั้งหมด
ความเป็นไปได้เหล่านี้จะใช้ ก่อนการวิเคราะห์ปัจจัยยัง
แตกต่างกัน : ตัวอย่างที่วาดในหลอดที่มีหรือไม่มี
เจลแยกส่งด้วยหรือโดยไม่ต้องปั่น หรือ
ตามด้วยปั่นแยกพลาสมา ( 1
2 ) บางห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลให้ตัวอย่างที่อุณหภูมิคงที่ของนิ
21 " ( 1 ) นอกจากนี้ แบรนด์ที่แตกต่างกัน
ของหลอดที่ใช้ ก่อนวิเคราะห์เงื่อนไขจะมีผลกระทบแตกหัก
เกี่ยวกับผลลัพธ์สุดท้าย และอาจนำไปสู่การวินิจฉัยผิด
ซินแคลร์ et al . ( 3 ) อธิบาย
pseudohyperkalaemia ฤดูกาลในระหว่างการขนส่งตัวอย่าง เมื่อเร็วๆนี้
หัวข้อที่เกี่ยวข้องกับกระดาษ ( 4 ) ทำให้เสียศูนย์
เกิดจากการเก็บตัวอย่างและเงื่อนไขการขนส่ง
.
3 ตัวอย่างเลือดก่อนการขนส่ง
ใช้เวลานานและมีราคาแพง นอกจากนี้ การโอน
พลาสม่าหลอดอีกทั้งเพิ่มความเสี่ยงของ
ตรงกัน ตัวอย่าง และการติดเชื้อ ดังนั้น จะดีกว่า
การขนส่งเลือดทั้งหมด เป็นทั้งประหยัด
และผลวิเคราะห์คุณภาพก่อน
โซลูชั่นเป็นจํานวนมาก เป้าหมายของเราคือเพื่อศึกษา
รวมกันที่เวลากระเป๋าเก็บอุณหภูมิ
และการขนส่งวิธีจะช่วยให้การใช้งานของหลอดเลือดหรือ
หลักทั้งใน ' ' เจลหลังการปั่นเหวี่ยง
ทั้งหมดที่มีอยู่ ขั้นตอนสองเมือง
โฟกัสคือ บนชุดของเงื่อนไขการขนส่ง
ดังกล่าวและไม่ได้เป็นปัจจัยเดียว
วิชาวัสดุและวิธีการ ในผู้ป่วยผู้ใหญ่ที่ได้รับตามปกติ เมื่อเจาะ
ที่ GP ของพวกเขาถูกขอให้เข้าร่วม หลอดพิเศษ ( 6
7 ) เขียนและยื่นให้ที่แตกต่างกันก่อนวิเคราะห์เงื่อนไข .
ตัวอย่างการจัดการและวิเคราะห์กระบวนการ
ก่อนดําเนินการโดยเจ้าหน้าที่ของ GP พยาบาล , เลขานุการ
หรือนักเทคโนโลยีทางห้องปฏิบัติการคุณเจนเซ่น et al . : เสถียรภาพของบทความในตัวอย่างเลือด
-
กดหลักฐาน uncorrected ในศูนย์ , สี่ GPS คัดเลือกรวม 101 ผู้ป่วย
มีนาคม 2006 และ 105 รายในช่วงเดือนสิงหาคม 2549
อย่างมีนัยสำคัญระหว่าง 08.00 และ ไม่มั่นใจ ในศูนย์บริการ B
5 หลักสุขภาพศูนย์แต่ละวาด
ตัวอย่างจาก 20 ราย ( รวม 100 ราย ) เมษายน
2549 และจากผู้ป่วย 100 ในเดือนกันยายน 2549
ศูนย์การขนส่งการขนส่งที่มีอยู่วิธีการศึกษา .
เพื่อวัตถุประสงค์ในการศึกษาสถานการณ์เพิ่มเติมบ้าง
: ศึกษา ศูนย์ขนส่งโดยรถโค้ชจำนวนวางไว้ใน
กล่องการขนส่งโฟม . พวกเขาถูกส่งในกล่องพิเศษ
อยู่ที่ป้ายรถเมล์ และถูกเลือกขึ้นโดยสาธารณะ
คนขับรถบัสที่ส่งให้พนักงานโรงพยาบาล ตัวอย่างวิธีนี้ถูกวางสุ่มส่ง
เปิดรับและอุณหภูมิกลางแจ้งเป็นเวลาประมาณ 30 นาที ระยะเวลาในการขนส่งได้
ประมาณ 60 นาที ศูนย์การขนส่งทางไปรษณีย์ จำนวน
ที่ศูนย์การดูแลหลัก ตัวอย่างเหล่านี้ถูกวางไว้ในชั้นวาง
และตั้งตรง ระยะเวลาในการขนส่ง
ประมาณ 10 – 60 นาที โดยเก็บตัวอย่างจาก GPS สองวัน
.
ศูนย์การขนส่ง โดยตัวอย่างจดหมายถูกส่งหลังจากปั่น
, กับพลาสมาในเจล ' ' ปกติก็ถึง
โรงพยาบาลในเช้าวันรุ่งขึ้น จำนวนขนใน
ตำแหน่งแบบสุ่ม การสัมผัสกับอุณหภูมิกลางแจ้งได้
b ตัวแปร มีการก่อตั้งศูนย์บริการขนส่ง
ตามปกติ ,ซึ่งหยิบตัวอย่างเลือดภายใน 8 ชั่วโมง หลังจากศึกษา .
ในขณะเดียวกัน กลุ่มตัวอย่างทั้งหมดจะถูกเก็บไว้ที่ควบคุมอุณหภูมิ
21 " 18C ในกล่อง thermostated พิเศษและ
อุณหภูมิคงที่จะยังคงในระหว่างการขนส่ง ระหว่าง
การขนส่งตัวอย่าง ตั้งอยู่ตรง ขั้นตอนนี้
เป็นติดตามผลก่อนหน้าการสืบสวน
อธิบายใน 2548 ( 1 )ระยะเวลาในการขนส่งในระหว่างการสอบสวนนี้
10 – 15 นาที
เป็นการเพิ่มการขนส่งรูปแบบเพื่อความมั่นคง
ตัวอย่างเก็บได้นาน 4 และ 8 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง
ตัวอย่างเหล่านี้ขนส่งด้วยกัน และในทางเดียวกัน
อีกอย่าง thermostated ตัวอย่าง ความเป็นไปได้สำหรับ GPS ตั้งอยู่ห่างจากศูนย์บริการ B ของห้องปฏิบัติการ
คือเครื่องตัวอย่างเลือด พลาสมา
โอนหลอดอื่นและส่งพวกเขาไปยังห้องปฏิบัติการ ที่นี่
สถานการณ์เพิ่มเติมมีวัตถุประสงค์ : จดหมายของไฟฟ้า
ตัวอย่างในเจล ' ' โดยไม่แยกพลาสมาอุณหภูมิ .
ศูนย์อุณหภูมิเฉลี่ยในช่วงเวลาที่
โดยเก็บตัวอย่างในช่วงฤดูหนาวคือ– 4.38c ที่
ตอนกลางคืน และ 1.58c ในระหว่างวัน ในเดือนสิงหาคม อุณหภูมิเฉลี่ย
ข้างบน 308c ในระหว่างการสอบสวน GPS
5 ไม่มีเครื่องปรับอากาศ
ศูนย์ B จำนวนที่เก็บไว้ที่อุณหภูมิห้องหรือที่
21 " 18C ในกล่อง thermostated พิเศษสำหรับ 4 หรือ 8 H .
อุณหภูมิเฉลี่ยในช่วงเวลาที่กลุ่มตัวอย่าง
ถูกส่งทางไปรษณีย์ในช่วงฤดูหนาวคือ q18c ตอนกลางคืน
5.08c ในระหว่างวันและ .
ในช่วงฤดูร้อนอุณหภูมิเฉลี่ยและ 138c คืน
208c ในระหว่างวัน และเวลาการมาถึงของตัวอย่างในโรงพยาบาล
และวิเคราะห์เวลาที่ถูกบันทึกไว้ในระบบข้อมูลทางห้องปฏิบัติการ
.
ชุดก่อนย่อตรวจสอบสถานการณ์วิเคราะห์
เป็นเขต A1 และ B1 B6 กับ A7 กับศูนย์และ
ศูนย์ B ตามลำดับ คำอธิบายของรหัสเหล่านี้จะได้รับ
ตารางที่ 1 และ 2
วิธีการวิเคราะห์
GPS ในศูนย์ใช้ venosafe เฮลิเธียมเจล
หลอด ( มาก 0510051 ) จากบริษัทการแพทย์การ
Leuven , เบลเยียม ในศูนย์บริการ B เฮลิเธียมหลอดเจล
จากเบคตอนดิกคินสัน BD การวินิจฉัย พลีมัธ อังกฤษ
ส่วนผู้ใช้ไฟฟ้าตัวอย่าง
7 – 10 นาทีที่ 1300 - 2000 = G ตามท่อของผู้ผลิต
คําแนะนํา .
ศึกษาส่วนประกอบอยู่ในตารางที่ 3
รวมเกณฑ์ที่ส่วนประกอบทั้งหมดจะถูกวิเคราะห์
ในหลอดเดียว ดังนั้น ส่วนประกอบ เช่น กลูโคส
เรียกร้องพิเศษหลอดเลือดจำนวนไม่
ถือว่าความเข้มข้นของพลาสม่าทั้งหมดตรวจสอบส่วนประกอบ
วิเคราะห์ทั้งในศูนย์ในโมดูล P จากโรช
การวินิจฉัยกับโฆษณาชุดจากโรชวินิจฉัย
GmbH , Mannheim , เยอรมนี .
' '0-sample ' ' คือตัวอย่างเลือดไปที่ระดับ
และแยกที่ office ของหมอภายใน 45 - 60 นาทีและ
ถือว่าเป็นประมาณการที่ดีที่สุด ' 'true ' ' เปรียบเทียบค่า
หลังจากนั้นถือว่ามั่นคงในพลาสมา
ระยะเวลาโพรโทคอล ( 5 – 7 ) ' ' '
'0-samples จัดการโดย ห้องปฏิบัติการ ( regulatedsthermostated อุณหภูมิ )
กล่อง สามารถเก็บที่อุณหภูมิ 21 " นิ และถูกซื้อจาก Viborg , เดนมาร์ก vibocold
, .
เป้าหมายคุณภาพวิเคราะห์ข้อ จำกัด สำหรับการยอมรับการเบี่ยงเบนจากผล 0-sample
ถูกกำหนดไว้ล่วงหน้าโดยผู้เขียนของบทความนี้ ( ตารางที่ 3 ) กฎ clia
ที่ถูกอ้างถึงใน tietz ( 8 ) x และความเกี่ยวข้องของส่วนประกอบ
สำหรับ GPS คือ พิจารณาจากค่าสัมประสิทธิ์ของความผันแปร
เพราะวิเคราะห์ ( CV ) %
ส่วนประกอบเดียวในห้องปฏิบัติการอิทธิพลทั้ง
เปรียบเทียบ Def
บทความในข่าว - uncorrected หลักฐาน
เสถียรภาพตัวอย่างเลือดของยาในระหว่างการขนส่งตามนิยามเชิงคุณภาพเป้าหมาย
ก่อนเอสเธอร์ . jensen1 , * , มาร์ stahl2 Ivan
brandslund2,4 และต่อ grinsted1,3
1 ภาควิชาชีวเคมีคลินิก โรงพยาบาล
มหาวิทยาลัยOdense , เดนมาร์ก
2 ภาควิชาชีวเคมีคลินิกโรงพยาบาล
Vejle Vejle , เดนมาร์ก
3 ส่วนปฏิบัติการทั่วไป มหาวิทยาลัย
Odense ภาคใต้เดนมาร์ก , เดนมาร์ก
4 สถาบันวิจัยและพัฒนาสุขภาพภาคใต้ภูมิภาค มหาวิทยาลัย
Odense เดนมาร์ก , เดนมาร์ก
: พื้นหลังนามธรรมในหลายประเทศและโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
สแกนดิเนเวีย ตัวอย่างเลือดที่วาดใน
สุขภาพปฐมภูมิจะถูกส่งไปยังโรงพยาบาลห้องปฏิบัติการวิเคราะห์
ตัวอย่างเปิดเผยเงื่อนไขต่างๆเกี่ยวกับ
เวลากระเป๋า , อุณหภูมิและรูปแบบการขนส่ง
เป็นปัจจัยเหล่านี้สามารถมีผลกระทบอย่างรุนแรงต่อ
คุณภาพของผลลัพธ์ที่เราต้องการศึกษา ซึ่งการรวมกันของเงื่อนไขการขนส่งที่สามารถเติมเต็มเป้าหมาย
ของเราล่วงหน้าสำหรับความผิดพลาดสูงสุดที่อนุญาต .
วิธีการ :ตัวอย่างจากผู้ป่วย 406 จากเก้าแพทย์ทั่วไป
( GPS ) ใน 2 เดนมาร์กมณฑลถูก
ส่งไปโรงพยาบาล 2 ขึ้น ในระหว่างสองช่วงเวลา
( ฤดูหนาวและฤดูร้อน ) การขนส่ง ( อีเมล์ ,
courier รับหรือส่งมาโรงพยาบาลโดยสาธารณะ
โค้ช ) , กระเป๋า , กระเป๋าและอุณหภูมิที่แตกต่างกันในความต้องการ ดังนี้
สองมณฑลผลทดสอบการเบี่ยงเบนจาก ' ' 0 -
ตัวอย่าง ' ' ตัวอย่างเลือดไปแยกระดับและ
ที่สำนักงานของแพทย์ภายใน 45 - 60 นาที ตัวอย่างนี้
ถูกถือว่าเป็นประมาณการที่ดีที่สุดของการเปรียบเทียบค่า
.
ผลคุณภาพเป้าหมายที่ตั้งไว้ได้ครบถ้วนทั้งหมด
ศึกษาส่วนประกอบ สำหรับตัวอย่างขนส่ง
โรงพยาบาลโดยจัดส่งเป็นเลือด หรือเป็นใน
เจล ' ' หลังการปั่นเหวี่ยง ตราบใดที่จำนวน
เก็บไว้ที่ 20 – 258c ไฟฟ้า / การวิเคราะห์ภายใน
5 – 6 ชั่วโมง รวมเป็น 4 % ของตัวอย่างที่ส่งทางไปรษณีย์มีเอกลักษณ์
ไม่ตรงกัน คงเนื่องจากพลาสมาถูก
ย้ายหลอดใหม่ .
สรุป ตัวอย่างที่สามารถส่งเป็น ความคงตัวทางเคมีทั้งหมด ถ้ายังไม่ได้
สภาพดังกล่าวข้างต้นได้ ไม่ต้องปั่น
ในภาคหลัก หรือส่งเมล์ตัวอย่าง
กับพลาสมาในเจล ' ' หรือการขนส่งสาธารณะ
รถทัวร์ปฏิบัติตามเป้าหมายของเราวิเคราะห์ Lab Chem .
บ Med 2008 ; 46:225 – 34 .
* ที่เขียน : เอสเธอร์ เจนเซ่น ภาควิชา
ชีวเคมีคลินิก , โรงพยาบาลมหาวิทยาลัย , 5000
Odense C ,
: q45-65-412865 โทรศัพท์ , เดนมาร์ก โทรสาร : q45-65-411911 esther.jensen@ouh.regionsyddanmark.dk
, E - mail :ได้รับ 18 สิงหาคม 2007 ; ยอมรับ 30 ตุลาคม 2550
คำสำคัญ : วิเคราะห์คุณภาพก่อนเงื่อนไข ; เป้าหมาย ; อุณหภูมิ
กระเป๋า ; การเก็บรักษา ; การขนส่งเลือด
.
บทนำ
ในเดนมาร์กมีประชากร 5.5 ล้าน ตัวอย่างเลือดประมาณ
3 ล้านวาดแต่ละปี
ในเวชปฏิบัติทั่วไป ( GP ) และ ส่งโรงพยาบาลห้องปฏิบัติการ
สำหรับวิเคราะห์ข้อมูลการขนส่งโลจิสติกส์จะแตกต่างกันสำหรับมณฑลต่างๆ
ในเดนมาร์ก ตัวอย่าง ( เลือดหรือพลาสมา )
ถูกขนส่งทางไปรษณีย์ โดย 'hospital ' รถ ' ' , แท็กซี่ ,
โค้ชหรือขนส่งเอกชน ในอย่างน้อยหนึ่งเขตทั้งหมด
ความเป็นไปได้เหล่านี้จะใช้ ก่อนการวิเคราะห์ปัจจัยยัง
แตกต่างกัน : ตัวอย่างที่วาดในหลอดที่มีหรือไม่มี
เจลแยกส่งด้วยหรือโดยไม่ต้องปั่น หรือ
ตามด้วยปั่นแยกพลาสมา ( 1
2 ) บางห้องปฏิบัติการโรงพยาบาลให้ตัวอย่างที่อุณหภูมิคงที่ของนิ
21 " ( 1 ) นอกจากนี้ แบรนด์ที่แตกต่างกัน
ของหลอดที่ใช้ ก่อนวิเคราะห์เงื่อนไขจะมีผลกระทบแตกหัก
เกี่ยวกับผลลัพธ์สุดท้าย และอาจนำไปสู่การวินิจฉัยผิด
ซินแคลร์ et al . ( 3 ) อธิบาย
pseudohyperkalaemia ฤดูกาลในระหว่างการขนส่งตัวอย่าง เมื่อเร็วๆนี้
หัวข้อที่เกี่ยวข้องกับกระดาษ ( 4 ) ทำให้เสียศูนย์
เกิดจากการเก็บตัวอย่างและเงื่อนไขการขนส่ง
.
3 ตัวอย่างเลือดก่อนการขนส่ง
ใช้เวลานานและมีราคาแพง นอกจากนี้ การโอน
พลาสม่าหลอดอีกทั้งเพิ่มความเสี่ยงของ
ตรงกัน ตัวอย่าง และการติดเชื้อ ดังนั้น จะดีกว่า
การขนส่งเลือดทั้งหมด เป็นทั้งประหยัด
และผลวิเคราะห์คุณภาพก่อน
โซลูชั่นเป็นจํานวนมาก เป้าหมายของเราคือเพื่อศึกษา
รวมกันที่เวลากระเป๋าเก็บอุณหภูมิ
และการขนส่งวิธีจะช่วยให้การใช้งานของหลอดเลือดหรือ
หลักทั้งใน ' ' เจลหลังการปั่นเหวี่ยง
ทั้งหมดที่มีอยู่ ขั้นตอนสองเมือง
โฟกัสคือ บนชุดของเงื่อนไขการขนส่ง
ดังกล่าวและไม่ได้เป็นปัจจัยเดียว
วิชาวัสดุและวิธีการ ในผู้ป่วยผู้ใหญ่ที่ได้รับตามปกติ เมื่อเจาะ
ที่ GP ของพวกเขาถูกขอให้เข้าร่วม หลอดพิเศษ ( 6
7 ) เขียนและยื่นให้ที่แตกต่างกันก่อนวิเคราะห์เงื่อนไข .
ตัวอย่างการจัดการและวิเคราะห์กระบวนการ
ก่อนดําเนินการโดยเจ้าหน้าที่ของ GP พยาบาล , เลขานุการ
หรือนักเทคโนโลยีทางห้องปฏิบัติการคุณเจนเซ่น et al . : เสถียรภาพของบทความในตัวอย่างเลือด
-
กดหลักฐาน uncorrected ในศูนย์ , สี่ GPS คัดเลือกรวม 101 ผู้ป่วย
มีนาคม 2006 และ 105 รายในช่วงเดือนสิงหาคม 2549
อย่างมีนัยสำคัญระหว่าง 08.00 และ ไม่มั่นใจ ในศูนย์บริการ B
5 หลักสุขภาพศูนย์แต่ละวาด
ตัวอย่างจาก 20 ราย ( รวม 100 ราย ) เมษายน
2549 และจากผู้ป่วย 100 ในเดือนกันยายน 2549
ศูนย์การขนส่งการขนส่งที่มีอยู่วิธีการศึกษา .
เพื่อวัตถุประสงค์ในการศึกษาสถานการณ์เพิ่มเติมบ้าง
: ศึกษา ศูนย์ขนส่งโดยรถโค้ชจำนวนวางไว้ใน
กล่องการขนส่งโฟม . พวกเขาถูกส่งในกล่องพิเศษ
อยู่ที่ป้ายรถเมล์ และถูกเลือกขึ้นโดยสาธารณะ
คนขับรถบัสที่ส่งให้พนักงานโรงพยาบาล ตัวอย่างวิธีนี้ถูกวางสุ่มส่ง
เปิดรับและอุณหภูมิกลางแจ้งเป็นเวลาประมาณ 30 นาที ระยะเวลาในการขนส่งได้
ประมาณ 60 นาที ศูนย์การขนส่งทางไปรษณีย์ จำนวน
ที่ศูนย์การดูแลหลัก ตัวอย่างเหล่านี้ถูกวางไว้ในชั้นวาง
และตั้งตรง ระยะเวลาในการขนส่ง
ประมาณ 10 – 60 นาที โดยเก็บตัวอย่างจาก GPS สองวัน
.
ศูนย์การขนส่ง โดยตัวอย่างจดหมายถูกส่งหลังจากปั่น
, กับพลาสมาในเจล ' ' ปกติก็ถึง
โรงพยาบาลในเช้าวันรุ่งขึ้น จำนวนขนใน
ตำแหน่งแบบสุ่ม การสัมผัสกับอุณหภูมิกลางแจ้งได้
b ตัวแปร มีการก่อตั้งศูนย์บริการขนส่ง
ตามปกติ ,ซึ่งหยิบตัวอย่างเลือดภายใน 8 ชั่วโมง หลังจากศึกษา .
ในขณะเดียวกัน กลุ่มตัวอย่างทั้งหมดจะถูกเก็บไว้ที่ควบคุมอุณหภูมิ
21 " 18C ในกล่อง thermostated พิเศษและ
อุณหภูมิคงที่จะยังคงในระหว่างการขนส่ง ระหว่าง
การขนส่งตัวอย่าง ตั้งอยู่ตรง ขั้นตอนนี้
เป็นติดตามผลก่อนหน้าการสืบสวน
อธิบายใน 2548 ( 1 )ระยะเวลาในการขนส่งในระหว่างการสอบสวนนี้
10 – 15 นาที
เป็นการเพิ่มการขนส่งรูปแบบเพื่อความมั่นคง
ตัวอย่างเก็บได้นาน 4 และ 8 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง
ตัวอย่างเหล่านี้ขนส่งด้วยกัน และในทางเดียวกัน
อีกอย่าง thermostated ตัวอย่าง ความเป็นไปได้สำหรับ GPS ตั้งอยู่ห่างจากศูนย์บริการ B ของห้องปฏิบัติการ
คือเครื่องตัวอย่างเลือด พลาสมา
โอนหลอดอื่นและส่งพวกเขาไปยังห้องปฏิบัติการ ที่นี่
สถานการณ์เพิ่มเติมมีวัตถุประสงค์ : จดหมายของไฟฟ้า
ตัวอย่างในเจล ' ' โดยไม่แยกพลาสมาอุณหภูมิ .
ศูนย์อุณหภูมิเฉลี่ยในช่วงเวลาที่
โดยเก็บตัวอย่างในช่วงฤดูหนาวคือ– 4.38c ที่
ตอนกลางคืน และ 1.58c ในระหว่างวัน ในเดือนสิงหาคม อุณหภูมิเฉลี่ย
ข้างบน 308c ในระหว่างการสอบสวน GPS
5 ไม่มีเครื่องปรับอากาศ
ศูนย์ B จำนวนที่เก็บไว้ที่อุณหภูมิห้องหรือที่
21 " 18C ในกล่อง thermostated พิเศษสำหรับ 4 หรือ 8 H .
อุณหภูมิเฉลี่ยในช่วงเวลาที่กลุ่มตัวอย่าง
ถูกส่งทางไปรษณีย์ในช่วงฤดูหนาวคือ q18c ตอนกลางคืน
5.08c ในระหว่างวันและ .
ในช่วงฤดูร้อนอุณหภูมิเฉลี่ยและ 138c คืน
208c ในระหว่างวัน และเวลาการมาถึงของตัวอย่างในโรงพยาบาล
และวิเคราะห์เวลาที่ถูกบันทึกไว้ในระบบข้อมูลทางห้องปฏิบัติการ
.
ชุดก่อนย่อตรวจสอบสถานการณ์วิเคราะห์
เป็นเขต A1 และ B1 B6 กับ A7 กับศูนย์และ
ศูนย์ B ตามลำดับ คำอธิบายของรหัสเหล่านี้จะได้รับ
ตารางที่ 1 และ 2
วิธีการวิเคราะห์
GPS ในศูนย์ใช้ venosafe เฮลิเธียมเจล
หลอด ( มาก 0510051 ) จากบริษัทการแพทย์การ
Leuven , เบลเยียม ในศูนย์บริการ B เฮลิเธียมหลอดเจล
จากเบคตอนดิกคินสัน BD การวินิจฉัย พลีมัธ อังกฤษ
ส่วนผู้ใช้ไฟฟ้าตัวอย่าง
7 – 10 นาทีที่ 1300 - 2000 = G ตามท่อของผู้ผลิต
คําแนะนํา .
ศึกษาส่วนประกอบอยู่ในตารางที่ 3
รวมเกณฑ์ที่ส่วนประกอบทั้งหมดจะถูกวิเคราะห์
ในหลอดเดียว ดังนั้น ส่วนประกอบ เช่น กลูโคส
เรียกร้องพิเศษหลอดเลือดจำนวนไม่
ถือว่าความเข้มข้นของพลาสม่าทั้งหมดตรวจสอบส่วนประกอบ
วิเคราะห์ทั้งในศูนย์ในโมดูล P จากโรช
การวินิจฉัยกับโฆษณาชุดจากโรชวินิจฉัย
GmbH , Mannheim , เยอรมนี .
' '0-sample ' ' คือตัวอย่างเลือดไปที่ระดับ
และแยกที่ office ของหมอภายใน 45 - 60 นาทีและ
ถือว่าเป็นประมาณการที่ดีที่สุด ' 'true ' ' เปรียบเทียบค่า
หลังจากนั้นถือว่ามั่นคงในพลาสมา
ระยะเวลาโพรโทคอล ( 5 – 7 ) ' ' '
'0-samples จัดการโดย ห้องปฏิบัติการ ( regulatedsthermostated อุณหภูมิ )
กล่อง สามารถเก็บที่อุณหภูมิ 21 " นิ และถูกซื้อจาก Viborg , เดนมาร์ก vibocold
, .
เป้าหมายคุณภาพวิเคราะห์ข้อ จำกัด สำหรับการยอมรับการเบี่ยงเบนจากผล 0-sample
ถูกกำหนดไว้ล่วงหน้าโดยผู้เขียนของบทความนี้ ( ตารางที่ 3 ) กฎ clia
ที่ถูกอ้างถึงใน tietz ( 8 ) x และความเกี่ยวข้องของส่วนประกอบ
สำหรับ GPS คือ พิจารณาจากค่าสัมประสิทธิ์ของความผันแปร
เพราะวิเคราะห์ ( CV ) %
ส่วนประกอบเดียวในห้องปฏิบัติการอิทธิพลทั้ง
เปรียบเทียบ Def
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- identical
- เส้นก๋วยเตี๋ยว
- เดี๋ยวฉันเอาให้คุณ
- เธอเข้าใจฉันนะเพราะฉันเป็นคนไทยไม่ใช่คนอ
- ฉันพยายามที่จะคุยกับคุณ
- I do not want to be anyone's options.
- Furthermore, the absorbance spectra and
- singapore immigration service
- ขอบคุณ
- fed
- ฉันไม่โกรธแต่ฉันไม่ชอบคนลามก
- Rotation
- Good night happy in this life. Blanket t
- ถ้าคุณมีครอบครัวแล้วฉันจะไม่ยุ่งกับคุณ
- Con me stai benema io ti amo più di gioc
- Where the post office is ?
- kill 1 mature bighorn with a heart shot
- คุกกี้ที่สูงสุดถูกสังเกตสำหรับคุกกี้ที่ท
- at this
- ทำแบบฝึกหัดบทที่2
- aspect photography
- Truth be told, I'd almost forgotten abou
- ฉันเข้าใจเวลาคุณอยู่ที่บ้านคุณคงไม่พร้อม
- ศรปักหัวใจของฉัน
