The time course study indicated that PHB is a growthassociatedproduct  การแปล - The time course study indicated that PHB is a growthassociatedproduct  ไทย วิธีการพูด

The time course study indicated tha

The time course study indicated that PHB is a growthassociated
product in A. fertilissima, and its accumulation
increased significantly when the culture reached the
exponential phase until the stationary phase. The maximum
value, 6.4% (dcw), was achieved on the 14th day of
cultivation. After 20 days, the decrease in the PHB content
might be due to the mobilization of PHB for cellular metabolism to regain the full capacity of photoautotrophic
growth as a source of carbon storage material (Stal 1992).
A pH of 8.5 and a temperature range of 28–32°C were
found optimum for PHB accumulation.
A. fertilissima is quite flexible in utilizing carbon
sources. Intracellular accumulation of PHB, however,
appeared to be carbon source-specific (Table 2), and
maximum rise, i.e. an ∼6-fold increase in PHB content
(up to 34% dcw), was observed in cultures supplemented
with 3 g L−1 citrate. As observed by Chen et al. (2010), the
addition of citrate decreased the activity of phosphofructokinase
by chelating Mg2+, which blocks the glycolytic
pathway, especially the reaction from fructose-6-phosphate
to fructose-1,6-bisphosphate, thus resulting into the elevated
pool of fructose-6-phosphate. An ultimate rise in glucose-6-
phosphate pool was observed by the conversion of fructose-6-
phosphate to glucose-6-phosphate by isomerase, which led to
the increased activity of 6-phosphoglucose dehydrogenase,
the first enzyme of the pentose phosphate pathway (PPP), thus
facilitating the production of a more reduced cofactor,
NADPH via PPP. NADPH is reported to be a prerequisite
for the activity of the enzyme acetoacetyl-CoA reductase for
conversion of acetoacetyl-CoA to β-hydroxybutyryl-CoA.
Therefore, the increased PHB accumulation following citrate
supplementation could be due to the enhanced availability of
NADPH.
Citrate supplementation was found to inhibit biomass
concentration significantly (Table 2). Contrary to this,
fructose supplementation was stimulatory for biomass
production. By increasing the concentration up to
10 g L−1, growth and PHB production increased up to
2.39 and 0.38 g L−1, respectively, against 0.50 and
0.03 g L−1 in the control culture. A further increase in
fructose concentration inhibited the growth of A. fertilissima.
This might be due to the increased osmotic pressure
at high fructose concentration and the imbalance between
glycolysis and metabolic oxidation in cyanobacterial cells
(Tabandeh and Vasheghani-Farahani 2003). The stimulatory
effect of acetate on PHB accumulation, i.e., 27.1% (dcw)
against 6.4% control, could be due to a direct utilization of
acetate to increase the intracellular acetyl-CoA pool at the
expense of free CoA by means of the usual pathway
operating in cyanobacteria (Gibson 1981; Panda and
Mallick 2007). Glucose utilization in cyanobacteria, however,
occurs via PPP. Thus, the positive effect of glucose on
PHB production could be attributable to the increased
supply of the reduced cofactor, NADPH (Lee et al. 1995).
Similar explanation could also be valid for the increased
PHB contents in fructose-, sucrose-, and maltosesupplemented
cultures. Interestingly, co-feeding A. fertilissima
cultures with 3 g L−1 citrate and 3 g L−1 acetate
stimulated PHB accumulation up to 65.9% (dcw). This
could be explained by the combined effects of the precursor
available in plenty, i.e., acetate, and the cofactor NADPH
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
The time course study indicated that PHB is a growthassociatedproduct in A. fertilissima, and its accumulationincreased significantly when the culture reached theexponential phase until the stationary phase. The maximumvalue, 6.4% (dcw), was achieved on the 14th day ofcultivation. After 20 days, the decrease in the PHB contentmight be due to the mobilization of PHB for cellular metabolism to regain the full capacity of photoautotrophicgrowth as a source of carbon storage material (Stal 1992).A pH of 8.5 and a temperature range of 28–32°C werefound optimum for PHB accumulation.A. fertilissima is quite flexible in utilizing carbonsources. Intracellular accumulation of PHB, however,appeared to be carbon source-specific (Table 2), andmaximum rise, i.e. an ∼6-fold increase in PHB content(up to 34% dcw), was observed in cultures supplementedwith 3 g L−1 citrate. As observed by Chen et al. (2010), theaddition of citrate decreased the activity of phosphofructokinaseby chelating Mg2+, which blocks the glycolyticpathway, especially the reaction from fructose-6-phosphateto fructose-1,6-bisphosphate, thus resulting into the elevatedpool of fructose-6-phosphate. An ultimate rise in glucose-6-phosphate pool was observed by the conversion of fructose-6-phosphate to glucose-6-phosphate by isomerase, which led tothe increased activity of 6-phosphoglucose dehydrogenase,the first enzyme of the pentose phosphate pathway (PPP), thusfacilitating the production of a more reduced cofactor,NADPH via PPP. NADPH is reported to be a prerequisitefor the activity of the enzyme acetoacetyl-CoA reductase forconversion of acetoacetyl-CoA to β-hydroxybutyryl-CoA.Therefore, the increased PHB accumulation following citratesupplementation could be due to the enhanced availability ofNADPH.Citrate supplementation was found to inhibit biomassconcentration significantly (Table 2). Contrary to this,fructose supplementation was stimulatory for biomassproduction. By increasing the concentration up to10 g L−1, growth and PHB production increased up to2.39 and 0.38 g L−1, respectively, against 0.50 and0.03 g L−1 in the control culture. A further increase infructose concentration inhibited the growth of A. fertilissima.This might be due to the increased osmotic pressureat high fructose concentration and the imbalance betweenglycolysis and metabolic oxidation in cyanobacterial cells(Tabandeh and Vasheghani-Farahani 2003). The stimulatoryeffect of acetate on PHB accumulation, i.e., 27.1% (dcw)against 6.4% control, could be due to a direct utilization ofacetate to increase the intracellular acetyl-CoA pool at theexpense of free CoA by means of the usual pathwayoperating in cyanobacteria (Gibson 1981; Panda andMallick 2007). Glucose utilization in cyanobacteria, however,occurs via PPP. Thus, the positive effect of glucose onPHB production could be attributable to the increasedsupply of the reduced cofactor, NADPH (Lee et al. 1995).Similar explanation could also be valid for the increasedPHB contents in fructose-, sucrose-, and maltosesupplementedcultures. Interestingly, co-feeding A. fertilissimacultures with 3 g L−1 citrate and 3 g L−1 acetatestimulated PHB accumulation up to 65.9% (dcw). Thiscould be explained by the combined effects of the precursoravailable in plenty, i.e., acetate, and the cofactor NADPH
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
เวลาที่ศึกษา พบว่า growthassociated PHB คือผลิตภัณฑ์ใน . fertilissima และการสะสมเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญเมื่อวัฒนธรรมถึงเอกซ์โพเนนเชียลเฟสถึงเฟสอยู่กับที่ สูงสุดมูลค่า 6.4 % ( dcw ) อยู่ได้ 14 วันของการเพาะปลูก หลังจาก 20 วัน ลดปริมาณ PHBอาจจะเกิดจากการระดมของ PHB สำหรับเซลล์เพื่อฟื้นจนเต็มความจุของ photoautotrophicการเจริญเติบโต เป็นแหล่งสะสมคาร์บอนของวัสดุ ( เหล็ก 1992 )พีเอช 8.5 และช่วงอุณหภูมิ 28 - 32 องศา C คือเจอที่เหมาะสมสำหรับการสะสม PHB1 . fertilissima มีความยืดหยุ่นมากในการใช้คาร์บอนแหล่งที่มา การสะสมภายในเซลล์ของ PHB อย่างไรก็ตามปรากฏเป็นแหล่งเฉพาะ คาร์บอน ( ตารางที่ 2 ) และเพิ่มขึ้นสูงสุด คือ การ∼ 6 เท่าเป็นเพิ่มปริมาณไนโตรเจน( ถึง 34 % dcw ) พบในวัฒนธรรมอาหารกับ 3 G L − 1 ซิเตรต . เท่าที่สังเกตโดย Chen et al . ( 2010 )นอกจากนี้ลดลงกิจกรรมของ phosphofructokinase ซิเตรตโดย mg2 + ต่ำ ซึ่ง glycolytic บล็อกเส้นทาง โดยเฉพาะปฏิกิริยาจาก fructose-6-phosphateเพื่อ fructose-1,6-bisphosphate จึงส่งผลให้ในระดับต่ำสระว่ายน้ำของ fructose-6-phosphate . การเพิ่มขึ้นสูงสุดใน glucose-6 -พูล ฟอสเฟต สังเกตได้จากการเปลี่ยนแปลงของ fructose-6 -ฟอสเฟตเพื่อ glucose-6-phosphate โดยไอโซเมอเรส ซึ่งนำไปสู่เพิ่มกิจกรรมของ 6-phosphoglucose ดีไฮโดรจีเนสเอนไซม์ของวิถีเพนโตสฟอสเฟต ( PPP ) , จึงการส่งเสริมการผลิตของมากกว่าโคแฟกเตอร์ลดลง ,nadph ผ่าน PPP . nadph รายงานจะต้องเพื่อให้กิจกรรมของ เอนไซม์ acetoacetyl COA เตสสำหรับการแปลง acetoacetyl COA ให้บีตา - hydroxybutyryl COA .ดังนั้น การเพิ่มการสะสม PHB ต่อไปนี้ซิเตรทอาหารเสริม อาจจะเนื่องจากการเพิ่มความพร้อมของnadph .ซิเตรตเสริมพบว่ายับยั้ง ชีวมวลความเข้มข้นอย่างมีนัยสำคัญ ( ตารางที่ 2 ) ต่อนี้คือการใช้มวลชีวภาพฟรักโทสการผลิต โดยการเพิ่มความเข้มข้นขึ้น10 g L − 1 , การเจริญเติบโตและการผลิต PHB เพิ่มขึ้น2.39 และ 0.38 g L − 1 ) กับ 0.50 และ0.03 กรัมต่อลิตร− 1 ในวัฒนธรรมที่ควบคุม เพิ่มเติมเพิ่มในฟรุคโตสความเข้มข้นยับยั้งการเจริญเติบโตของ fertilissima .นี้อาจจะเนื่องจากการเพิ่มขึ้นของความดันออสโมติกที่ความเข้มข้นสูงฟรักโทสและความไม่สมดุลระหว่างไกลโคลิซิสและการเผาผลาญอาหารในร่างกายเซลล์ระบบยู( tabandeh และ vasheghani farahani 2003 ) การผลของอะซิเตทในการสะสม PHB คือทั้ง % ( dcw )กับการควบคุม 6.4 เปอร์เซ็นต์ อาจเป็นเพราะมีการใช้โดยตรงอะซิทิล COA พูลเพิ่มเซลล์ที่ค่าใช้จ่ายของ COA ฟรีโดยใช้เส้นทางปกติปฏิบัติการในไซยาโนแบคทีเรีย ( Gibson 1981 ; แพนด้าและมัลลิก 2007 ) การใช้กลูโคสในไซยาโนแบคทีเรีย อย่างไรก็ตามเกิดขึ้นผ่าน PPP . ดังนั้น จึงมีผลบวกของกลูโคสในการผลิต PHB อาจ attributable เพื่อเพิ่มอุปทานลดลง ปัจจัยร่วม nadph ( ลี , et al . 1995 )คำอธิบายที่คล้ายกันสามารถใช้ได้สำหรับการเพิ่มขึ้นPHB เนื้อหาฟรักโทส - ซูโครส - และ maltosesupplementedวัฒนธรรม ทั้งนี้ การให้ fertilissima Co .วัฒนธรรมกับ 3 G L − 1 ซิเตรตและ 3 g L − 1 อะซิเตทกระตุ้นการสะสม PHB ขึ้นมาเพียร์สัน ( dcw ) นี้สามารถอธิบายได้จากผลของการควบรวมมีอยู่มากมาย เช่น อะซิเตท และโคแฟกเตอร์ nadph
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2024 I Love Translation. All reserved.

E-mail: