The two plastid regions and the nuclear gene were chosen because they have proven to be most informative markers for Bromeliaceae Amplifications were carried out in aVeriti Thermal Cycler (Applied Biosystem Corp., Foster City. California). Plastid regions were amplified with 10 µL reactions following Palma-Silva et al, (2009). The nuclear region PHYC was amplified with 10 µL as follows: 1x taq buffer (Fermentas), 1.5 mM MgCl2 (Fermentas), 100 µmol deoxynucleotide triphosphate, 10 pmol of each primer, 1 U Taq DNA polymerase (Fermentas) and 10-20 ng of DNA template, using a standard cycling program: 2 min denaturation at 95 °C denaturation for 30 s, 30 s annealing at 59 °C, and 2 min. The PCR products were cleaned using ExoSAP-IT (USB Corp., Cleveland, Ohio) following the manufacturer’s protocol. Cycle sequencing was carried out with the Big Dye Terminaator kit v.3.1 (Applied Biosystem Corp., Foster City. California) with an initial 60 s denaturation at 95 °C, followed by 30 cycles at 96 °C denaturation for 10 s, 10 s annealing at 50 °C, and 2 min extension at 60 °C. The sequences were generated on an ABI 3730 DNA Analyzer seqencer.
The two plastid regions and the nuclear gene were chosen because they have proven to be most informative markers for Bromeliaceae Amplifications were carried out in aVeriti Thermal Cycler (Applied Biosystem Corp., Foster City. California). Plastid regions were amplified with 10 µL reactions following Palma-Silva et al, (2009). The nuclear region PHYC was amplified with 10 µL as follows: 1x taq buffer (Fermentas), 1.5 mM MgCl2 (Fermentas), 100 µmol deoxynucleotide triphosphate, 10 pmol of each primer, 1 U Taq DNA polymerase (Fermentas) and 10-20 ng of DNA template, using a standard cycling program: 2 min denaturation at 95 °C denaturation for 30 s, 30 s annealing at 59 °C, and 2 min. The PCR products were cleaned using ExoSAP-IT (USB Corp., Cleveland, Ohio) following the manufacturer’s protocol. Cycle sequencing was carried out with the Big Dye Terminaator kit v.3.1 (Applied Biosystem Corp., Foster City. California) with an initial 60 s denaturation at 95 °C, followed by 30 cycles at 96 °C denaturation for 10 s, 10 s annealing at 50 °C, and 2 min extension at 60 °C. The sequences were generated on an ABI 3730 DNA Analyzer seqencer.
การแปล กรุณารอสักครู่..

ทั้งสองภูมิภาค plastid และยีนนิวเคลียร์ได้รับการแต่งตั้งเพราะพวกเขาได้พิสูจน์แล้วว่าเป็นเครื่องหมายของข้อมูลมากที่สุดสำหรับ Bromeliaceae เครื่องขยายเสียงได้ดำเนินการใน aVeriti Thermal Cycler (ประยุกต์ Biosystem คอร์ป, ฟอสเตอร์ซิตี. แคลิฟอร์เนีย) ภูมิภาค plastid ถูกขยายด้วยปฏิกิริยาต่อไปนี้ 10 ไมโครลิตร Palma-ซิลวา, et al, (2009) PHYC ภูมิภาคนิวเคลียร์ถูกขยาย 10 ไมโครลิตรดังนี้บัฟเฟอร์ 1x Taq (Fermentas) 1.5 มิลลิ MgCl2 (Fermentas) 100 ไมโครโมล deoxynucleotide triphosphate 10 pmol ของแต่ละไพรเมอร์ 1 U Taq ดีเอ็นเอโพลิเมอร์ (Fermentas) และ 10-20 นาโนกรัม แม่แบบดีเอ็นเอโดยใช้โปรแกรมการขี่จักรยานมาตรฐาน: 2 นาที denaturation ที่ 95 ° C denaturation 30 วินาที, 30 วินาทีการอบที่ 59 องศาเซลเซียสและ 2 นาที ผลิตภัณฑ์ PCR ถูกทำความสะอาดโดยใช้ ExoSAP-IT (USB คอร์ป, คลีฟแลนด์, โอไฮโอ) ดังต่อไปนี้โปรโตคอลของผู้ผลิต ลำดับวงจรได้ดำเนินการกับย้อมบิ๊ก Terminaator ชุด v.3.1 (ประยุกต์ Biosystem คอร์ป, ฟอสเตอร์ซิตี. แคลิฟอร์เนีย) ที่มีการสูญเสียสภาพธรรมชาติเริ่มต้น 60 s ที่ 95 ° C ตามด้วย 30 รอบที่ 96 ° C denaturation 10 วินาที, 10 หลอม s ที่ 50 ° C และ 2 นาทีส่วนขยายที่ 60 ° C ลำดับถูกสร้างขึ้นบน ABI 3730 วิเคราะห์ดีเอ็นเอ seqencer
การแปล กรุณารอสักครู่..
