Introduction
The efficient use of natural resources for bioethanol production
has been explored by several research groups
(Balat 2011; Binod et al. 2010; Sarkar et al. 2012). At
present, most bioethanol is produced from food crops
such as corn grain or sugar cane (Kim & Dale 2004;
Sanchez & Cardona 2008); however, the use of starch
and sugar for the production of bioethanol competes
with crops for food supplies. As an alternative, a lignocellulosic
biomass product such as corn stover, corn fiber,
rice straw, bagasse or wheat straw could become indispensable
resources for bioethanol production. In Japan,
for example, approximately 75% of rice straw is not used
effectively which could therefore be an abundant feedstock
for bioethanol production.
Plant cell walls are composed of three main components:
cellulose, hemicellulose, and lignin. To achieve
high-efficiency ethanol production, it is desirable to use
both the glucose and xylose contained in the cellulose
and hemicellulose (Kuhad et al. 2011). However, few
types of yeast such as Scheffersomyces stipitis (formerlyknown as Pichia stipitis), Candida shehatae, and
Spathaspora passalidarum have been found capable of
xylose fermentation (Hou 2012; Jeffries et al. 2007; Prior
et al. 1989); simultaneous utilization of these sugars has
been problematic. The most generally used yeast strain
in current bioethanol production processes, Saccharomyces
cerevisiae, can ferment glucose derived from cellulose
to ethanol; however, it normally lacks the ability
to produce ethanol by fermenting the xylose present in
hemicellulose (Jeffries & Jin 2004; Kuhad et al. 2011).
Thus, there has been extensive exploration to develop
yeasts which can produce bioethanol from xylose with a
high yield. Toward this end, researchers have tried to
genetically improve S. cerevisiae and to co-culture two
strains. The genetic improvement strategies are founded
on the metabolism of wild xylose fermentable yeast, such
as S. stipitis. For example, xylose reductase and xylitoldehydrogenase genes from S. stipitis have been introduced
into S. cerevisiae in order to make yeast with an
improved xylose-fermenting ability (Kim et al. 2010;
Madhavan et al. 2009). Recombinant yeasts are impractical
for industrial use since they require special containment
to confine the engineered microorganisms. The use of
recombinant yeasts also increases the initial investment
and maintenance costs. On the other hand, the co-cultureprocesses are also said to be effective for fermenting
both glucose and xylose. The process involves simultaneously
utilizing two different yeasts (e.g., S. cerevisiae
and S. stipitis) which are cultured and grown together
in the same reactor (Fu et al. 2009; Yadav et al. 2011).
The main bottleneck in this process so far has been the
compatibility of these two strains, as one yeast inhibits
the growth of the other (Bader et al. 2010; Cardona &
Sanchez 2007; Chen 2011). Both strategies are being
pursued. We therefore consider that a single natural
yeast strain is desirable for industrial use.
แนะนำ
การใช้ทรัพยากรอย่างมีประสิทธิภาพธรรมชาติสำหรับการผลิตเอทานอล
ที่ได้รับการสำรวจโดยกลุ่มวิจัยหลาย
(Balat 2011. binod et al, 2010;. ซาร์การ์ตอัล 2012) ที่
ปัจจุบันเอทานอลส่วนใหญ่ผลิตจากพืชอาหาร
เช่นข้าวข้าวโพดหรืออ้อย (คิมและเดล 2004;
ซานเชสและโดนา 2008); แต่การใช้งานของแป้ง
และน้ำตาลสำหรับการผลิตเอทานอลแข่งขัน
กับพืชอาหารสำหรับอุปกรณ์ เป็นทางเลือกลิกโนเซลลูโลส
ผลิตภัณฑ์ชีวมวลเช่นเปลือกข้าวโพดฝักอ่อนเส้นใยข้าวโพด
ฟางข้าวชานอ้อยหรือฟางข้าวสาลีอาจกลายเป็นที่จำเป็น
สำหรับการผลิตทรัพยากรเอทานอล ในประเทศญี่ปุ่น
เช่นประมาณ 75% ของฟางข้าวที่ไม่ได้ใช้
อย่างมีประสิทธิภาพซึ่งดังนั้นจึงอาจจะเป็นวัตถุดิบที่อุดมสมบูรณ์
สำหรับการผลิตเอทานอลผนังเซลล์ของพืชจะประกอบด้วยสามองค์ประกอบหลัก: เซลลูโลสเฮมิเซลลูโลสและลิกนิน เพื่อให้บรรลุการผลิตเอทานอลที่มีประสิทธิภาพสูงเป็นที่พึงปรารถนาที่จะใช้ทั้งกลูโคสและไซโลสที่มีอยู่ในเซลลูโลสเฮมิเซลลูโลสและ (Kuhad และคณะ. 2011) แต่ไม่กี่ชนิดของยีสต์เช่น Scheffersomyces stipitis (formerlyknown เป็น Pichia stipitis), Candida shehatae และSpathaspora passalidarum ได้พบความสามารถในการหมักไซโลส (Hou 2012. เจฟฟรีส์และอัล 2007 ก่อนที่อัล et. 1989); ใช้พร้อมกันของน้ำตาลเหล่านี้ได้เป็นปัญหา สายพันธุ์ยีสต์ที่ใช้โดยทั่วไปมากที่สุดในปัจจุบันกระบวนการผลิตเอทานอล, Saccharomyces cerevisiae สามารถหมักน้ำตาลที่ได้จากเซลลูโลสเอทานอล; แต่ก็ปกติขาดความสามารถในการผลิตเอทานอลโดยการหมักไซโลสในปัจจุบันเฮมิเซลลูโลส (เจฟฟรีส์และจิน 2004. Kuhad et al, 2011) ดังนั้นจึงได้มีการสำรวจที่ครอบคลุมเพื่อพัฒนายีสต์ที่สามารถผลิตเอทานอลจากไซโลสที่มีผลตอบแทนสูง . ในช่วงท้ายนี้นักวิจัยได้พยายามที่จะปรับปรุงพันธุกรรม S. cerevisiae และจะร่วมวัฒนธรรมสองสายพันธุ์ และแนวทางการปรับปรุงทางพันธุกรรมจะก่อตั้งขึ้นในการเผาผลาญของยีสต์หมักไซโลป่าดังกล่าวเป็นเอ stipitis ตัวอย่างเช่นไซโลสและดั xylitoldehydrogenase ยีนจาก stipitis เอสได้รับการแนะนำใน S. cerevisiae เพื่อให้ยีสต์ที่มีไซโล-หมักสามารถปรับปรุงให้ดีขึ้น (Kim et al, 2010;. . ธา et al, 2009) ยีสต์ recombinant จะทำไม่ได้สำหรับใช้ในอุตสาหกรรมตั้งแต่ที่พวกเขาต้องการบรรจุพิเศษที่จะ จำกัด จุลินทรีย์วิศวกรรม การใช้ยีสต์ recombinant ยังเพิ่มการลงทุนเริ่มต้นและค่าบำรุงรักษา ในขณะที่ผู้ร่วม cultureprocesses ยังจะกล่าวว่าเป็นที่มีประสิทธิภาพสำหรับการหมักทั้งกลูโคสและไซโลส กระบวนการเกี่ยวกับการพร้อมกันทั้งสองใช้ยีสต์ที่แตกต่างกัน (เช่น S. cerevisiae และเอ stipitis) ซึ่งเป็นที่เพาะเลี้ยงและเติบโตร่วมกันในเครื่องปฏิกรณ์เดียวกัน (Fu et al, 2009;.. ดัฟ et al, 2011) คอขวดที่สำคัญในขั้นตอนนี้เพื่อ ห่างไกลได้รับการทำงานร่วมกันของทั้งสองสายพันธุ์เป็นหนึ่งยีสต์ยับยั้งการเจริญเติบโตของอื่น ๆ (Bader et al, 2010;. โดนาและซานเชส 2007 เฉิน 2011) กลยุทธ์ทั้งสองจะได้รับการดำเนินการ ดังนั้นเราจึงพิจารณาว่าธรรมชาติเดียวยีสต์สายพันธุ์ที่เป็นที่พึงปรารถนาสำหรับใช้ในอุตสาหกรรม
การแปล กรุณารอสักครู่..
