Electron beams may also be used as

Electron beams may also be used as a ionizing radiation source with energy ประกอบรวมด้วยd

between 4 MeV and 25 MeV.
15 Specific monochromatic irradiation source could be used for selectively generating X-rays
radiation at energy close to or corresponding to the desired X-ray absorption edge of the atoms ("metal element") constituting inorganic nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs. A preferred source of ionizing radiations is Linear Accelerator (LINAC).

20 A further object of the การประดิษฐ์ relates to a kit ซึ่งประกอบรวมด้วย a biocompatible gel ซึ่งประกอบรวมด้วย
nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs according to the present การประดิษฐ์ (as herein described), optionally together with a therapeutic agent. In a particular รุรุ, the kit ประกอบรวมด้วย, in distinct containers, a biocompatible gel as herein described and a suspension
of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs as herein described (which are intended to be 25 contacted, ตามปกติ mixed, either in situ, i.e. on the target site, or ex vivo before deposition
of the ของผสม on the target site).
A kit ซึ่งประกอบรวมด้วย a biocompatible gel ซึ่งประกอบรวมด้วย nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs as herein described, โดยที่ the biocompatible gel and the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs are in distinct containers is thus herein further described.
30
The following examples illustrate the การประดิษฐ์ without limiting its scope.

BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES

FIGURE I: Tumor tissue delineation using clips
From "Improving the definition of the tumor bed boost with the use of surgical clips and
5 image registration in breast cancer patients" [Int. J. Radiation Oncology Biol. Phys. Vol
78(5) ; 1352-1355 (2010)1 Tumor bed volume delineation: gross tumor volume (GTV)
(red); clinical target volume (CTV) clips = all clips with 0.5-cm margins; planning target volume (PTV) (green) = GTV+CTV clips+0.5-cm lateral and 1-cm superior-inferior margins
10
FIGURE 2: Micro-CT (ICT) images captured 2 days, 8 days and 20 days after gel deposition into the cavity obtained following tumorectomy, showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of
methylcellulose (5% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles 15 aggregates (3.5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or
มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 3: CT images captured 2 days, 9 days and 20 days after gel deposition into the 20 cavity obtained following tumorectomy showing the tumor bed delineation using a
biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of methylcellulose (9%
w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w)
consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been
mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
25
FIGURE 4: Effect of particles concentration on radiation dose enhancement using Monte Carlo calculation.
FIGURE 5: viscosity measurement (A at 20°C and B at 37°C) of a gel composed of 30 hyaluronic acid (3% w/w) and a gel composed of hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย
biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles aggregates (5% w/w) consisting in
hafnium oxide.
FIGURE 6: FTIR spectrum of a gel composed of hyaluronic acid (0.1% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) consisting in hafnium oxide. Comparison with the spectrum of the gel composed of hyaluronic acid and
5 also with the spectrum of nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs consisting in
hafnium oxide.

FIGURE 7: CT images captured 30 minutes (D01), 1 day (D02), 3 days (D04), 8 days
(D09) and 22 days (D23) after gel deposition into the cavity obtained following
10 tumorectomy showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according
to the การประดิษฐ์. The gel is composed of hyaluronic acid (3.8% w/w), hyaluronic acid (2,5% w/w) and auto-cross-linked hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel
15 deposition into the tumor bed.

EXAMPLES

EXAMPLE I: Biocompatible hafnium oxide (Hf02) nanoparticles or nanoparticle 20 aggregates, using sodium hexametaphosphate as coating agent.
A tetramethylammonium hydroxide (TMAOH) solution is added to HfC14 solution. Addition of TMAOH solution is performed until the pH of the final suspension reaches a pH ประกอบรวมด้วยd between 7 and 13. A white precipitate is obtained.
25 The precipitate is further transferred in an autoclave and heated at a temperature ประกอบรวมด้วยd
between 120 °C and 300 °C to perform crystallization. After cooling, the suspension is washed with de-ionized water.
Sodium hexametaphosphate solution is then added to the washed suspension and the pH is adjusted to a pH ประกอบรวมด้วยd between 6 and 8.
30 Sterilization of the nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs suspension is performed prior
in vitro or in vivo experiments.
EXAMPLE 2: Synthesis and physico-chemical characterisation of gold nanoparticles with different sizes.
Gold nanoparticles are obtained by reduction of gold chloride with sodium citrate in 5 aqueous solution. Protocol was adapted from G. Frens Nature Physical Science 241 (1973)
21.
In a typical experiment, HAuC14 solution is heated to boiling. Subsequently, sodium citrate solution is added. The resulting solution is maintained under boiling for an additional period of 5 minutes.
10 The nanoparticle's size is adjusted from 15 nm up to 105 nm by carefully modifying the
citrate versus gold precursor ratio (cf. Table 1).
The as prepared gold nanoparticles' suspensions are then concentrated using an ultrafiltration device with a 30 kDa cellulose membrane.
The resulting suspensions are ultimately filtered through a 0.22 urn cutoff membrane filter
15 under laminar hood and stored at 4°C.
Particle size is determined on more than 200 particles, by using Transmission Electronic
Microscopy (TEM) and by considering the longest nanoparticle dimension of each particle.

Table 1:
Samples Particle size (nm) Synthesis
Citrate HAuC14
Gold-15 15±2 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 mM
Gold-30 32±10 (la) 7.5 mL 40 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-60 60±10 (lo-) 2 mL 85 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-80 80± 10(10-) 1.2 mL 43 mM 200 mL 0.30 mM
Gold-105 105±25 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 mL 0.33 mM

EXAMPLE 3: Biocompatible hafnium oxide nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 5% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.

5 A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is
added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic
10 stirrer or a spatula.

EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
15
A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration
20 within gel of 3.5% (w/w).

EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.
25
The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection
of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation
into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied
by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity
delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.
EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from
10 example 4.

The objective of this experiment was to assess, by CT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 4

Electron beams may also be used as a ionizing radiation source with energy ประกอบรวมด้วยd

between 4 MeV and 25 MeV.
15  Specific monochromatic irradiation source could be used for selectively generating X-rays
radiation at energy close to or corresponding to the desired X-ray absorption edge of the atoms ("metal element") constituting inorganic nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs. A preferred source of ionizing radiations is Linear Accelerator (LINAC).

20  A further object of the การประดิษฐ์ relates to a kit ซึ่งประกอบรวมด้วย a biocompatible gel ซึ่งประกอบรวมด้วย
nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs according to the present การประดิษฐ์ (as herein described), optionally together with a therapeutic agent. In a particular รุรุ, the kit ประกอบรวมด้วย, in distinct containers, a biocompatible gel as herein described and a suspension
of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs as herein described (which are intended to be 25 contacted, ตามปกติ mixed, either in situ, i.e. on the target site, or ex vivo before deposition 
 of the ของผสม on the target site).
A kit ซึ่งประกอบรวมด้วย a biocompatible gel ซึ่งประกอบรวมด้วย nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs as herein described, โดยที่ the biocompatible gel and the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs are in distinct containers is thus herein further described.
30
The following examples illustrate the การประดิษฐ์ without limiting its scope.

BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES

FIGURE I: Tumor tissue delineation using clips
From "Improving the definition of the tumor bed boost with the use of surgical clips and
5 image registration in breast cancer patients" [Int. J. Radiation Oncology Biol. Phys. Vol
78(5) ; 1352-1355 (2010)1 Tumor bed volume delineation: gross tumor volume (GTV)
(red); clinical target volume (CTV) clips = all clips with 0.5-cm margins; planning target volume (PTV) (green) = GTV+CTV clips+0.5-cm lateral and 1-cm superior-inferior margins
10
FIGURE 2: Micro-CT (ICT) images captured 2 days,  8 days and 20 days after gel deposition into the cavity obtained following tumorectomy, showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of
methylcellulose  (5% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles 15 aggregates (3.5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or
มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 3: CT images captured 2 days, 9 days and 20 days after gel deposition into the 20 cavity obtained following tumorectomy showing the tumor bed delineation using a 
 biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of methylcellulose (9% 
 w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w) 
 consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been 
 mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
25
FIGURE 4: Effect of particles concentration on radiation dose enhancement using Monte Carlo calculation.
FIGURE 5: viscosity measurement (A at 20°C and B at 37°C) of a gel composed of 30 hyaluronic acid (3% w/w) and a gel composed of hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย 
 biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles aggregates (5% w/w) consisting in 
 hafnium oxide.
FIGURE 6: FTIR spectrum of a gel composed of hyaluronic acid (0.1% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) consisting in hafnium oxide. Comparison with the spectrum of the gel composed of hyaluronic acid and
5 also with the spectrum of nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs consisting in
hafnium oxide.

FIGURE 7: CT images captured 30 minutes (D01), 1 day (D02), 3 days (D04), 8 days
(D09) and 22 days (D23) after gel deposition into the cavity obtained following
10 tumorectomy showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according
to the การประดิษฐ์. The gel is composed of hyaluronic acid (3.8% w/w), hyaluronic acid (2,5% w/w) and auto-cross-linked hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel
15 deposition into the tumor bed.

EXAMPLES

EXAMPLE I: Biocompatible hafnium oxide (Hf02) nanoparticles or nanoparticle 20 aggregates, using sodium hexametaphosphate as coating agent.
A tetramethylammonium hydroxide  (TMAOH) solution is added to HfC14 solution. Addition of TMAOH solution is performed until the pH of the final suspension reaches a pH ประกอบรวมด้วยd between 7 and 13. A white precipitate is obtained.
25  The precipitate is further transferred in an autoclave and heated at a temperature ประกอบรวมด้วยd
between 120 °C and 300 °C to perform crystallization. After cooling, the suspension is washed with de-ionized water.
Sodium hexametaphosphate solution is then added to the washed suspension and the pH is adjusted to a pH ประกอบรวมด้วยd between 6 and 8.
30  Sterilization of the nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs suspension is performed prior
in vitro or in vivo experiments.
EXAMPLE 2: Synthesis and physico-chemical characterisation of gold nanoparticles with different sizes.
Gold nanoparticles are obtained by reduction of gold chloride with sodium citrate in 5 aqueous solution. Protocol was adapted from G. Frens Nature Physical Science 241 (1973)
21.
In a typical experiment, HAuC14 solution is heated to boiling. Subsequently, sodium citrate solution is added. The resulting solution is maintained under boiling for an additional period of 5 minutes.
10  The nanoparticle's size is adjusted from 15 nm up to 105 nm by carefully modifying the
citrate versus gold precursor ratio (cf. Table 1).
The as prepared gold nanoparticles' suspensions are then concentrated using an ultrafiltration device with a 30 kDa cellulose membrane.
The resulting suspensions are ultimately filtered through a 0.22 urn cutoff membrane filter
15 under laminar hood and stored at 4°C.
Particle size is determined on more than 200 particles, by using Transmission Electronic
Microscopy (TEM) and by considering the longest nanoparticle dimension of each particle.

Table 1:
Samples Particle size (nm) Synthesis
Citrate HAuC14
Gold-15 15±2 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 mM
Gold-30 32±10 (la) 7.5 mL 40 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-60 60±10 (lo-) 2 mL 85 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-80 80± 10(10-) 1.2 mL 43 mM 200 mL 0.30 mM
Gold-105 105±25 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 mL 0.33 mM

EXAMPLE 3: Biocompatible hafnium oxide nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 5% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.

5  A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is
added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic
10 stirrer or a spatula.

EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
15
A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration
20 within gel of 3.5% (w/w).

EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.
25
The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection 
 of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation 
 into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied 
 by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity 
 delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.
EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from
10 example 4.

The objective of this experiment was to assess, by CT  (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 4

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

รับลำแสงอิเล็กตรอนอาจยังสามารถใช้เป็นแหล่งรังสี ionizing กับพลังงาน ประกอบรวมด้วยd ระหว่าง 4 MeV และ 25 MeV15 แหล่งเฉพาะวิธีการฉายรังสียังสามารถใช้สำหรับการเลือกสร้างรังสีเอกซ์รังสีพลังงานใกล้หรือจะต้องเอ็กซ์เรย์ดูดซึมขอบของอะตอม ("โลหะองค์ประกอบ") ค่าเก็บกักอนินทรีย์หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs แหล่งที่มาของการ ionizing radiations ต้องเป็นแบบ (LINAC)20 วัตถุรูปเพิ่มเติมของการประดิษฐ์เกี่ยวข้องกับซึ่งประกอบรวมด้วยชุดซึ่งประกอบรวมด้วยเจชีวภาพเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ตามการประดิษฐ์ปัจจุบัน (ซึ่งเป็นอธิบาย), หรือร่วมกับตัวแทนยา ในรุรุเฉพาะ ประกอบรวมด้วยในชุด บรรจุภัณฑ์ทั้งหมด เจชีวภาพซึ่งเป็นอธิบาย และระงับเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ที่อธิบายไว้ตามนี้ (ซึ่งสามารถ ติดต่อ 25 ตามปกติผสม ซิใดใน เช่นไซต์เป้าหมาย หรือ ex vivo ก่อนสะสม ของการของผสมไซต์เป้าหมาย)ดังต่อไปนี้อธิบายซึ่งประกอบรวมด้วยเป็นชุดเก็บกักซึ่งประกอบรวมด้วยเจชีวภาพ หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ซึ่งเป็นอธิบาย โดยที่เจชีวภาพ และเก็บกัก และ/หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs อยู่ในบรรจุภัณฑ์ที่แตกต่างกัน30ตัวอย่างต่อไปนี้แสดงการการประดิษฐ์โดยไม่จำกัดขอบเขตของคำอธิบายโดยย่อของตัวเลขรูป i:เนื้องอกเนื้อเยื่อ delineation ใช้คลิปจาก "ปรับปรุงนิยามของเพิ่มเตียงเนื้องอก ด้วยการใช้คลิปผ่าตัด และ5 ภาพลงทะเบียนในผู้ป่วยมะเร็งเต้านม" [อินต์ J. รังสีมะเร็งวิทยา Biol. กายภาพ Vol78(5) แพงกว่า-1355 (2010) เนื้องอก 1 เตียงราคาปริมาณ delineation: รวมปริมาตรเนื้องอก (GTV)(สีแดง), คลิปเสียง (CTV) เป้าหมายทางคลินิก =คลิปทั้งหมด มีระยะขอบ 0.5 ซม. วางเป้าหมายปริมาณ (PTV) (สีเขียว) = 0.5 + คลิป GTV + CTV-ซม. 1 ซม. และด้านข้างเป็นห้องรองขอบ10รูปที่ 2: ภาพไมโคร-CT (ICT) จับภาพ 2 วัน 8 วัน และ 20 วันหลังจากรับเจสะสมในช่องต่อ tumorectomy, delineation เตียงเนื้องอกที่ใช้ hydrogel ชีวภาพตามการประดิษฐ์ การแสดงประกอบด้วยเก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วย methylcellulose (5% w/w) และ/หรือเพิ่มเก็บกัก 15 (3.5% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม การเก็บกัก หรือมวลรวมอนุภาคนาโนs ได้ถูกผสมกับเจลก่อนสะสมเจเตียงเนื้องอกรูปที่ 3: ภาพ CT จับภาพ 2 วัน 9 วัน และ 20 วันหลังจากรับเจสะสมในช่อง 20 ต่อ tumorectomy แสดงเนื้องอกเตียง delineation ใช้เป็น ประกอบด้วย hydrogel ชีวภาพตามการประดิษฐ์ methylcellulose (9% เก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วย w/w) หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม การเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ผสมกับเจลก่อนสะสมเจเตียงเนื้องอก25รูปที่ 4: ผลของความเข้มข้นของอนุภาครังสียามัธยมใช้คำนวณ Carlo มอนรูปที่ 5: วัดความหนืด (A ที่ 20° C) และ B ที่ 37 ° C ของเจประกอบด้วยกรด hyaluronic 30 (3% w/w) และเจประกอบด้วยกรด hyaluronic (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย เก็บกักชีวภาพและ/หรือเพิ่มเก็บกัก (5% w/w) ประกอบด้วยใน แฮฟเนียมออกไซด์รูปที่ 6: สเปคตรัม FTIR ของเจประกอบด้วยการเก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วยกรด hyaluronic (0.1% w/w) หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม เปรียบเทียบกับสเปกตรัมของเจประกอบด้วยกรด hyaluronic และ5 also with the spectrum of nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs consisting inhafnium oxide.FIGURE 7: CT images captured 30 minutes (D01), 1 day (D02), 3 days (D04), 8 days(D09) and 22 days (D23) after gel deposition into the cavity obtained following10 tumorectomy showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel accordingto the การประดิษฐ์. The gel is composed of hyaluronic acid (3.8% w/w), hyaluronic acid (2,5% w/w) and auto-cross-linked hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel15 deposition into the tumor bed.EXAMPLESEXAMPLE I: Biocompatible hafnium oxide (Hf02) nanoparticles or nanoparticle 20 aggregates, using sodium hexametaphosphate as coating agent.A tetramethylammonium hydroxide (TMAOH) solution is added to HfC14 solution. Addition of TMAOH solution is performed until the pH of the final suspension reaches a pH ประกอบรวมด้วยd between 7 and 13. A white precipitate is obtained.25 The precipitate is further transferred in an autoclave and heated at a temperature ประกอบรวมด้วยdbetween 120 °C and 300 °C to perform crystallization. After cooling, the suspension is washed with de-ionized water.Sodium hexametaphosphate solution is then added to the washed suspension and the pH is adjusted to a pH ประกอบรวมด้วยd between 6 and 8.30 Sterilization of the nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs suspension is performed priorin vitro or in vivo experiments.EXAMPLE 2: Synthesis and physico-chemical characterisation of gold nanoparticles with different sizes.Gold nanoparticles are obtained by reduction of gold chloride with sodium citrate in 5 aqueous solution. Protocol was adapted from G. Frens Nature Physical Science 241 (1973)21.In a typical experiment, HAuC14 solution is heated to boiling. Subsequently, sodium citrate solution is added. The resulting solution is maintained under boiling for an additional period of 5 minutes.10 The nanoparticle's size is adjusted from 15 nm up to 105 nm by carefully modifying thecitrate versus gold precursor ratio (cf. Table 1).The as prepared gold nanoparticles' suspensions are then concentrated using an ultrafiltration device with a 30 kDa cellulose membrane.The resulting suspensions are ultimately filtered through a 0.22 urn cutoff membrane filter15 under laminar hood and stored at 4°C.Particle size is determined on more than 200 particles, by using Transmission ElectronicMicroscopy (TEM) and by considering the longest nanoparticle dimension of each particle.Table 1:Samples Particle size (nm) SynthesisCitrate HAuC14Gold-15 15±2 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 mMGold-30 32±10 (la) 7.5 mL 40 mM 500 mL 0.25 mMGold-60 60±10 (lo-) 2 mL 85 mM 500 mL 0.25 mMGold-80 80± 10(10-) 1.2 mL 43 mM 200 mL 0.30 mMGold-105 105±25 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 mL 0.33 mMEXAMPLE 3: Biocompatible hafnium oxide nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 5% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.5 A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, isadded to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic10 stirrer or a spatula.EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.15A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration20 within gel of 3.5% (w/w).

EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.
25
The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection
of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation
into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied
by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity
delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.
EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from
10 example 4.

The objective of this experiment was to assess, by CT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 4

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

คานอิเล็กตรอนก็อาจจะใช้เป็นแหล่งรังสีที่มีพลังงานประกอบรวมด้วย d ระหว่างวันที่ 4 และ 25 MeV MeV. 15 เฉพาะแหล่งที่มาของการฉายรังสีเดียวสามารถนำมาใช้สำหรับการคัดเลือกสร้างรังสีเอกซ์รังสีพลังงานที่ใกล้เคียงหรือตรงกับX- ต้องการ ขอบดูดซึมรังสีของอะตอม ("ธาตุโลหะ") ประกอบอนุภาคนาโนนินทรีย์หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที เป็นแหล่งที่ต้องการของรังสีโอโซนเป็นเชิงเส้น Accelerator (Linac). 20 วัตถุต่อไปของการประดิษฐ์ที่เกี่ยวข้องกับชุดซึ่งประกอบรวมด้วยเจลชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนและ/ หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ตามปัจจุบันการ ประดิษฐ์ (ตามที่อธิบายไว้ในที่นี้) ทางเลือกร่วมกับตัวแทนในการรักษา ในรุรุเฉพาะชุดประกอบรวมด้วยในภาชนะบรรจุที่แตกต่างกัน, เจลชีวภาพตามที่อธิบายไว้ในเอกสารฉบับนี้และระงับของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนในฐานะที่นี้อธิบาย(ซึ่งมีวัตถุประสงค์ที่จะ 25 ติดต่อตามปกติผสมทั้งใน แหล่งกำเนิดเช่นบนเว็บไซต์เป้าหมายหรือ ex vivo ก่อนการสะสมของของผสมบนเว็บไซต์เป้าหมาย). ชุดซึ่งประกอบรวมด้วยเจลชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ตามที่อธิบายไว้ในที่นี้โดย ที่เจลชีวภาพและนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s อยู่ในภาชนะบรรจุที่แตกต่างกันจึงไว้ในที่นี้อธิบายต่อไป. 30 ตัวอย่างต่อไปนี้แสดงให้เห็นถึงการประดิษฐ์โดยไม่ จำกัด ขอบเขต. อธิบายสั้น ๆ ของตัวเลขรูปI: การวิเคราะห์เนื้อเยื่อมะเร็งโดยใช้ คลิปจาก"การปรับปรุงความหมายของการเพิ่มเตียงเนื้องอกที่มีการใช้คลิปการผ่าตัดและการลงทะเบียนภาพที่ 5 ในผู้ป่วยโรคมะเร็งเต้านม" [Int เจรังสี Biol สรวง ฉบับที่78 (5) 1352-1355 (2010) 1 เนื้องอกวิเคราะห์ปริมาณเตียง: ปริมาณเนื้องอกขั้นต้น (GTV) (สีแดง); ปริมาณเป้าหมายทางคลินิก (CTV) = คลิปคลิปทั้งหมดที่มีอัตรากำไรขั้นต้น 0.5 ซม ปริมาณเป้าหมายการวางแผน (PTV) (สีเขียว) = GTV + คลิป CTV + 0.5 ซมด้านข้างและ 1 ซมอัตรากำไรขั้นต้นดีกว่าด้อยกว่า10 รูปที่ 2: Micro-CT (ICT) ภาพที่ถ่าย 2 วัน, 8 วันและ 20 วันหลังจากการสะสมเจล เข้าไปในโพรงที่ได้รับต่อไปนี้ tumorectomy แสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมทิล(5% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรืออนุภาคนาโน 15 มวลรวม (3.5% w / w การ ) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนs ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก. รูปที่ 3: ภาพ CT จับ 2 วัน, 9 วันและ 20 วันหลังจากการสะสมเจลลงใน 20 ช่องที่ได้รับต่อไปนี้ tumorectomy การแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ที่ประกอบด้วยเมทิล(9% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (3.5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ . อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก. 25 รูปที่ 4: ผลกระทบของอนุภาคเข้มข้นในการเพิ่มประสิทธิภาพของปริมาณรังสีที่ใช้คำนวณ Monte Carlo. รูปที่ 5: การวัดความหนืด (A ที่ 20 ° C และ B ที่ 37 ° C) ของเจลประกอบด้วย 30 กรดไฮยาลูโร (3% w / w) และเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ/ หรืออนุภาคนาโน มวลรวม (5% w / w) ประกอบด้วย. ฮาฟเนียมออกไซด์รูปที่ 6: คลื่นความถี่ FTIR เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (0.1% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (0.26% น้ำหนัก / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ เปรียบเทียบกับสเปกตรัมของเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรและ5 ยังมีสเปกตรัมของอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์. รูปที่ 7: ภาพ CT จับ 30 นาที (D01), 1 วันที่ (D02) 3 วัน (D04) 8 วัน(D09) และ 22 วัน (D23) หลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้10 tumorectomy แสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามเพื่อการประดิษฐ์ เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรของ (3.8% w / w), กรดไฮยาลูโร (2,5% w / w) และอัตโนมัติ cross-linked กรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีเจล15 ทับถมเป็นเตียงเนื้องอก. ตัวอย่างเช่นฉัน: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์ (Hf02) หรืออนุภาคนาโนอนุภาคนาโน 20 มวลโดยใช้ hexametaphosphate โซเดียมเป็นตัวแทนการเคลือบ ไฮดรอกไซ Tetramethylammonium (TMAOH) วิธีการแก้ปัญหาจะถูกเพิ่มในการแก้ปัญหา HfC14 นอกจากนี้วิธีการแก้ปัญหา TMAOH จะดำเนินการจนถึงค่า pH ของการระงับสุดท้ายถึงค่า pH ประกอบรวมด้วยงระหว่างวันที่ 7 และ 13 ตะกอนสีขาวจะได้รับ. 25 ตะกอนจะถูกโอนต่อไปในหม้อนึ่งความดันและให้ความร้อนที่อุณหภูมิประกอบรวมด้วย d ระหว่าง 120 ° C และ 300 ° C ที่จะดำเนินการตกผลึก หลังจากที่ระบายความร้อนจะถูกระงับการล้างด้วยน้ำบริสุทธิ์. สารละลายโซเดียม hexametaphosphate แล้วจะถูกเพิ่มในการระงับการล้างและพีเอชจะมีการปรับค่า pH ที่จะประกอบรวมด้วย d ระหว่างวันที่ 6 และ 8 30 ทำหมันของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโน ระงับ s จะดำเนินการก่อนในหลอดทดลองหรือการทดลองในร่างกาย. ตัวอย่างที่ 2:. การสังเคราะห์และลักษณะทางกายภาพและทางเคมีของอนุภาคนาโนทองคำที่มีขนาดที่แตกต่างกันอนุภาคนาโนทองคำจะได้รับการลดลงของคลอไรด์ทองกับโซเดียมซิเตรทใน5 สารละลาย พิธีสารดัดแปลงมาจากจี Frens ธรรมชาติวิทยาศาสตร์กายภาพ 241 (1973) 21. ในการทดลองโดยทั่วไปวิธีการแก้ปัญหา HAuC14 อุ่นให้เดือด ต่อมาการแก้ปัญหาโซเดียมซิเตรทจะถูกเพิ่ม วิธีการแก้ปัญหาที่เกิดขึ้นจะยังคงอยู่ภายใต้การเดือดเป็นระยะเวลาครั้งละ 5 นาที. 10 ขนาดอนุภาคนาโนที่จะมีการปรับจาก 15 นาโนเมตรถึง 105 นาโนเมตรโดยระมัดระวังการปรับเปลี่ยนซิเตรตเมื่อเทียบกับอัตราส่วนสารตั้งต้นทอง(cf ตารางที่ 1). ที่จัดทำขึ้นเป็นอนุภาคนาโนทอง ' สารแขวนลอยที่มีความเข้มข้นจากนั้นใช้อุปกรณ์กรองด้วยเมมเบรนเซลลูโลส kDa 30. สนองที่เกิดขึ้นจะถูกกรองในที่สุดผ่านตัวกรองเมมเบรนตัดโกศ 0.22 15 ภายใต้ประทุนราบเรียบและเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส. ขนาดอนุภาคจะถูกกำหนดในกว่า 200 อนุภาคโดย โดยใช้การส่งอิเล็กทรอนิกส์. กล้องจุลทรรศน์ (TEM) และเมื่อพิจารณาจากมิติอนุภาคนาโนที่ยาวที่สุดของอนุภาคแต่ละตารางที่1: ตัวอย่างขนาดอนุภาค (นาโนเมตร) การสังเคราะห์สารซิเตรตHAuC14 ทอง 15 15 ± 2 (1U) 20 มล 30 มิลลิลิตร 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง30 32 ± 10 (ลา) 7.5 มิลลิลิตร 40 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง60 60 ± 10 (lo-) 2 มิลลิลิตร 85 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง80 80 ± 10 (10) 1.2 มิลลิลิตร 43 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.30 มิลลิทอง 105 105 ± 25 (1a) 1.2 มิลลิลิตร 39 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.33 มิลลิตัวอย่างที่3: Biocompatible ฮาฟเนียมนาโนออกไซด์และ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 5% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 5 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1 คือการเพิ่มปริมาณของเจลตามปกติกับลิเมอร์(เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 4.5% w / w การและ 5,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายเข้มข้นภายในเจล 3.5% (w / w) การเตรียมการที่ได้รับเพื่อให้มีการผสมตามปกติกับแม่เหล็ก10 กวนหรือไม้พาย. ตัวอย่างที่ 4: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 9% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 15 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1, มีการเพิ่มปริมาณการเจลตามปกติกับลิเมอร์ (เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 8,5% w / w การและ 9,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายความเข้มข้น20 ภายในเจล 3.5% (w / w). ตัวอย่างที่ 5: การประเมินโดยไมโครตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (UCT) ที่มีคุณภาพของ "การนอนเนื้องอก" การวาดภาพที่ได้รับเมื่อใช้อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจากตัวอย่าง 3. 25 วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย UCT (ตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). การทดสอบ เจลจากตัวอย่าง 3 ถูกปลูกฝัง (ฝาก) ลงในช่องด้านซ้ายโดยผ่าตัดของHCT 116 xenografted เนื้องอก (มะเร็งลำไส้ใหญ่ของมนุษย์เซลล์มะเร็ง) ในหนูเปลือย 30 การวิเคราะห์ UCT ได้ดำเนินการ 2 วัน, 8 วันและ 20 วันหลังการปลูกถ่ายเจลเข้าไปในโพรงที่เหลือจากการผ่าตัดของเนื้องอกเพื่อประเมินปริมาณที่ถูกครอบครองโดยอนุภาคนาโนและ/ หรือมวลรวมอนุภาคนาโนในเตียงเนื้องอกมากกว่า เวลา. สำหรับเรื่องนี้มีการแบ่งส่วนคู่มือ (ภูมิภาคที่น่าสนใจ (ROIs)) ที่ได้ดำเนินการไปรอบ ๆ โพรงผ่าตัด จากนั้น thresholding ข้างต้น 120 HU ได้ดำเนินการภายในโพรงผ่าตัดเพื่อประเมินการปรากฏตัวของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนและเพื่อประเมินทั้งสถานที่และปริมาณการครอบครองโดยอนุภาคนาโนเหล่านั้นหรือมวลรวมอนุภาคนาโนสำหรับทั้ง5 หนู รูปที่ 2 ที่มีการจัดแสดงภาพ ii.CT มากกว่าประมาณ 80% ของช่องการวาดภาพเร็วที่สุดเท่าที่2 วันหลังการผ่าตัดและการฝังเจล. ตัวอย่างที่ 6: การประเมินโดยการตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (CT) ที่มีคุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพได้เมื่อใช้ อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจาก10 ตัวอย่าง 4. วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย CT (เอ็กซ์เรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). เจลทดสอบจากตัวอย่างที่ 4

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

อิเล็กตรอนลำแสงอาจยังสามารถใช้เป็นแหล่งพลังงานรังสีประกอบรวมด้วย D

ระหว่าง 4 mev และ 25 อิเล็กตรอนโวลต์
15 เฉพาะสําหรับ การฉายรังสีสามารถใช้สำหรับเลือกแหล่งผลิตรังสีเอกซ์
รังสีที่ปิดพลังงานหรือตรงกับที่ต้องการขอบการดูดกลืนรังสีเอ็กซ์ของอะตอม ( " องค์ประกอบ " ประกอบอนินทรีย์อนุภาคโลหะ ) หรือมวลรวมอนุภาคนาโน A ที่ต้องการแหล่ง ionizing รังสี คือ เครื่องเร่งอนุภาค ( ไลแนค

)20 ต่อวัตถุของการประดิษฐ์เกี่ยวข้องกับชุดซึ่งประกอบรวมด้วยเป็นแสดงซึ่งประกอบรวมด้วย
เจลอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ตามการการประดิษฐ์ปัจจุบัน ( ในที่นี้เลือกไว้ ) ร่วมกับตัวแทนผู้ ในรุรุเฉพาะประกอบรวมด้วย , ชุด ,ในภาชนะที่แตกต่างกัน , เจลแสดงเป็นในที่นี้อธิบายและระงับ
ของอนุภาคหรือมวลรวมอนุภาคนาโน s เช่นในที่นี้อธิบายไว้ ( ซึ่งมีวัตถุประสงค์จะ 25 ติดต่อตามปกติผสมทั้งในแหล่งกำเนิด เช่นในเว็บไซต์เป้าหมายหรือ ex vivo ก่อนสะสม
ของของผสมบนเว็บไซต์
เป้าหมาย )ชุดซึ่งประกอบรวมด้วยแสดงซึ่งประกอบรวมด้วยเป็นเจลนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน s เช่นในที่นี้อธิบาย โดยที่เจลทางชีวภาพและนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน s อยู่ในภาชนะบรรจุที่แตกต่างกัน จึงเป็นอีก 30

ในที่นี้อธิบายตัวอย่างต่อไปนี้แสดงให้เห็นถึงการประดิษฐ์โดยไม่จํากัดขอบเขตของมัน

คําอธิบายของตัวเลข

รูปที่ฉัน : เนื้องอกเนื้อเยื่อ การใช้คลิป
จาก " ปรับปรุงคำนิยามของเนื้องอกเตียงเพิ่ม ด้วยการใช้ผ่าตัดคลิป
5 ภาพทะเบียนผู้ป่วยมะเร็งเต้านม " [ Int . J . การฉายรังสีมะเร็ง วท บ วท . ว. . Vol
78 ( 5 )1352-1355 ( 2010 ) 1 ก้อนปริมาตร : ปริมาตรการเนื้องอกขั้นต้น ( วี )
( สีแดง ) ; ปริมาณเป้าหมายทางคลินิก ( CTV ) คลิป = คลิปทั้งหมดด้วย 0.5-cm ขอบ ; ปริมาณเป้าหมายการวางแผน ( พีทีวี ) ( สีเขียว ) = วี CTV คลิป 0.5-cm ด้านข้างและ 1-cm เหนือขอบด้านล่าง

รูปที่ 2 : 10 กะรัต ( ไมโคร ไอซีที ) ภาพที่ถ่าย 2 วัน 8 วัน และ 20 วัน หลังจากเจลสะสมเข้าไปในโพรงได้ tumorectomy ต่อไปนี้ ,แสดงการใช้เจลเนื้องอกเตียงแสดงไปตามการประดิษฐ์ประกอบด้วย
เมธิลเซลลูโลส ( 5% w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ อนุภาคนาโน 15 มวลรวม ( 3.5 % w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโนและ / หรือ
มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้ถูกผสมกับเจลก่อนเจลสะสมเป็นเนื้องอกที่เตียง
รูปที่ 3 : CT ภาพที่ถ่าย 2 วัน 9 วัน และ 20 วัน หลังจากเจลสะสมใน 20 ช่องได้ตาม tumorectomy แสดงเนื้องอกเตียงการใช้
i แสดงไปตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมธิลเซลลูโลส ( 9 %

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.