growth and Simpson et al. [52] foun

growth and Simpson et al. [52] found that only 0.0075%
chitosan was needed to inhibit the growth of E.coli.
These variations were suggested to be due to the existing
di€erences in the degree of acetylation of chitosan;
chitosan with a degree of acetylation of 7.5% was more
e€ective than chitosan with a degree of acetylation of 15%.
Sudharshan et al. [19] studied the antimicrobial e€ect
of water-soluble chitosans such as chitosan lactate,
chitosan hydroglutamate and chitosan derived from
Absidia coerulea fungi, on di€erent bacterial cultures.
They observed that chitosan glutamate and chitosan
lactate were also bactericidal against both gram-positive
and gram-negative bacteria in the range of one to ®ve
log cycle reduction within one hour. In that same study
these authors reported that chitosan was no longer
bactericidal at pH 7 due to two major reasons, namely
presence of a signi®cant proportion of uncharged amino
groups and poor solubility of chitosan. These results are
in agreement with ®ndings of Papineau et al. [17] in a
similar study where a concentration of 0.2 mg/mL chitosan
lactate appeared most e€ective against E.coli with
a corresponding population drop of 2 and 4 log cycles
within 2 min and 1 h exposure, respectively. These
authors observed that chitosan glutamate was also
e€ective against yeast cultures such as Saccharomyces
cerevisiae and Rhodotorula glutensis and inactivation
was rapid and complete within 17 min when exposed to
1 mg/mL chitosan lactate. However, in contrast to the
®ndings of Sudharshan et al. [19], Papineau et al. [17]
observed that chitosan hydroglutamate was a more
e€ective antagonist than chitosan lactate. Results further
suggested that chitosan acted mainly on the outer
surface of the bacteria. At a lower concentration, the
polycationic chitosan did probably bind to the negatively
charged bacterial surface to cause agglutination, while
at higher concentrations the larger number of positive
charges may have imparted a net positive charge to the
bacterial surfaces to keep them in suspension.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เจริญเติบโตและซิมป์สัน et al. [52] พบว่า 0.0075% เท่านั้นไคโตซานต้องการยับยั้งการเจริญเติบโตของ E.coliเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ถูกแนะนำจะเป็น เพราะที่มีอยู่erences di ในปริญญา acetylation ของไคโตซานไคโตซานกับระดับของ acetylation 7.5% ได้มากขึ้นe ective กว่าไคโตซานกับระดับของ acetylation 15%Sudharshan et al. [19] ศึกษาอีต้านจุลชีพ ectของ chitosans ละลายน้ำเช่นไคโตซานแลคเตทhydroglutamate ไคโตซานและไคโตซานที่ได้มาจากเชื้อ Absidia coerulea บน di ระหว่างการผลิตแบคทีเรียวัฒนธรรมพวกเขาสังเกตว่า กลูตาไคโตซาน และไคโตซานน้ำนมก็ให้เห็นว่าจากทั้งแบคทีเรียแกรมบวกและแบคทีเรียแกรมลบในช่วงของการ ® veลดรอบการบันทึกภายในหนึ่งชั่วโมง ในการศึกษาเดียวกันนั้นผู้เขียนเหล่านี้รายงานว่า ไคโตซานไม่ไม่ให้เห็นว่าที่ค่า pH 7 เนื่องจากสองหลักเหตุผล คือของ signi ® ไม่สามารถสัดส่วนของ uncharged อะมิโนกลุ่มและไม่ละลายของไคโตซาน ผลลัพธ์เหล่านี้สอดคล้อง ® ndings ของ Papineau et al. [17] ในการเหมือนเรียนความเข้มข้นของไคโตซาน 0.2 mg/mLแลคเตทปรากฏ ส่วนใหญ่อี ective กับ E.coli ด้วยปล่อยประชากรที่สอดคล้องรอบล็อก 2 และ 4 ของภายใน 2 นาทีและ 1 ชั่วโมงแสง ตามลำดับ เหล่านี้ผู้เขียนสังเกตว่า กลูตาไคโตซานก็e ective กับยีสต์วัฒนธรรมเช่น Saccharomycescerevisiae และ Rhodotorula glutensis และยกอย่างรวดเร็ว และเสร็จสมบูรณ์ภายใน 17 นาทีเมื่อสัมผัสแลคเตทไคโตซาน 1 mg/mL อย่างไรก็ตาม ในตรงกันข้ามกับการ® ndings ของ Sudharshan et al. [19], Papineau ร้อยเอ็ด [17]พบว่า ไคโตซาน hydroglutamate ได้มากขึ้นศัตรู ective e กว่าไคโตซานแลคเตท ผลลัพธ์เพิ่มเติมแนะนำไคโตซานที่อยู่ชั้นนอกส่วนใหญ่พื้นผิวของแบคทีเรีย ที่ความเข้มข้นต่ำ การไคโตซาน polycationic อาจไม่ผูกกับการลบในขณะที่ชาร์จผิวแบคทีเรียทำให้เกิดมูกที่ความเข้มข้นสูงขนาดใหญ่จำนวนบวกค่าธรรมเนียมอาจ imparted ประจุบวกสุทธิเพื่อการพื้นผิวที่แบคทีเรียเพื่อให้พวกเขาในการระงับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การเจริญเติบโตและซิมป์สัน, et al [52] พบว่ามีเพียง 0.0075%
ไคโตซานเป็นสิ่งที่จำเป็นในการยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อ E.coli ได้.
การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ได้รับการแนะนำให้จะเกิดจากการที่มีอยู่
di ?? erences ในระดับของ acetylation ของไคโตซานนั้น
ไคโตซานที่มีระดับของ acetylation ของ 7.5 % ได้มากขึ้น
E ?? ective กว่าไคโตซานที่มีระดับของ acetylation 15%.
Sudharshan et al, [19] การศึกษายาต้านจุลชีพ E ?? ect
ของไคโตซานที่ละลายน้ำได้เช่นแลคเตทไคโตซาน
hydroglutamate ไคโตซานและไคโตซานที่ได้มาจาก
Absidia coerulea เชื้อราบน di ?? ต่างกันแบคทีเรียวัฒนธรรม.
พวกเขาตั้งข้อสังเกตว่ากลูตาเมตไคโตซานและไคโตซาน
ให้น้ำนมก็มีการฆ่าเชื้อแบคทีเรียกับ ทั้งแกรมบวก
และแบคทีเรียแกรมลบในช่วงหนึ่งที่จะ®ve
เข้าสู่ระบบลดวงจรภายในหนึ่งชั่วโมง ในการศึกษาเดียวกันกับที่
ผู้เขียนเหล่านี้รายงานว่าไคโตซานก็ไม่ได้
ฆ่าเชื้อแบคทีเรียที่ pH 7 เนื่องจากเหตุผลสองประการที่สำคัญคือ
การปรากฏตัวของสัดส่วนsigni®cantของอะมิโนที่ไม่มีประจุ
กลุ่มและการละลายที่ดีของไคโตซาน ผลลัพธ์เหล่านี้มี
ในข้อตกลงกับ®ndingsของปิโน่, et al [17] ใน
การศึกษาที่คล้ายกันที่ความเข้มข้น 0.2 mg / ml ไคโตซาน
ให้น้ำนมมากที่สุดปรากฏ E ?? ective กับ E.coli ที่มี
ประชากรลดลงสอดคล้องกันของ 2 และ 4 รอบล็อก
ภายใน 2 นาทีและการสัมผัส H 1 ตามลำดับ เหล่านี้
ผู้เขียนตั้งข้อสังเกตว่ากลูตาเมตไคโตซานยังเป็น
E ?? ective กับวัฒนธรรมยีสต์เช่น Saccharomyces
cerevisiae และ Rhodotorula glutensis และการใช้งาน
เป็นอย่างรวดเร็วและสมบูรณ์ภายในวันที่ 17 นาทีเมื่อสัมผัสกับ
1 mg / ml แลคเตทไคโตซาน แต่ในทางตรงกันข้ามกับ
®ndingsของ Sudharshan et al, [19], ปิโน่, et al [17]
ตั้งข้อสังเกตว่า hydroglutamate ไคโตซานเป็นมากขึ้น
E ?? ศัตรู ective กว่าน้ำนมไคโตซาน ผลการค้นหาเพิ่มเติม
บอกว่าไคโตซานทำหน้าที่หลักในด้านนอก
พื้นผิวของเชื้อแบคทีเรีย ที่มีความเข้มข้นต่ำกว่า
ไคโตซาน polycationic ไม่น่าจะเชื่อมโยงกับทางลบ
พื้นผิวของเชื้อแบคทีเรียที่เรียกเก็บจะก่อให้เกิดการเกาะติดกันในขณะ
ที่ความเข้มข้นที่สูงขึ้นจำนวนมากบวก
ค่าใช้จ่ายอาจจะคลี่คลายประจุบวกสุทธิกับ
พื้นผิวของแบคทีเรียเพื่อให้พวกเขาในการระงับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเจริญเติบโตและซิมป์สัน et al . [ 52 ] 0.0075 % พบว่าไคโตซาน ต้องยับยั้งการเจริญเติบโตของ E.coliการเปลี่ยนแปลงเหล่านี้แนะนำให้เนื่องจากที่มีอยู่ดิ € erences ในระดับของการกันของไคโตซาน ;ไคโตซานกับระดับของการกัน 7.5 ได้มากขึ้นE € ective กว่าไคโตซานกับระดับของการกัน 15 %sudharshan et al . [ 19 ] ศึกษาเชื้อ E €ฯลฯของไคโตซาน เช่น ไคโตซานี่ละลายน้ำ ,hydroglutamate ไคโตซานและไคโตซานที่ได้มาจากabsidia สูตรรา ใน ดิ € erent แบคทีเรียวัฒนธรรมพวกเขาพบว่า ไคโตซาน ไคโตซาน ผงชูรส และและยังฆ่าเชื้อแบคทีเรียทั้งแกรมบวกกับและ แบคทีเรียแกรมลบในช่วงหนึ่ง®ได้เข้าสู่ระบบวงจรลดภายในหนึ่งชั่วโมง ในการศึกษาเดียวกันผู้เขียนเหล่านี้ รายงานว่า ไคโตซาน อีกต่อไปฆ่าเชื้อแบคทีเรียที่ pH 7 เนื่องจาก 2 เหตุผลหลัก คือการแสดงของ signi ®ลาดเทสัดส่วนไม่มีประจุไฟฟ้า อะมิโนกลุ่มและความน่าสงสารของไคโตซาน ผลลัพธ์เหล่านี้เห็นด้วยกับ® ndings ของ ปาปิโน et al . [ 17 ] ในที่คล้ายกันการศึกษาที่ความเข้มข้น 0.2 มก. / มล. และไคโตซานและปรากฏมากที่สุด E € ective กับชนิดกับหยด ประชากรที่ 2 และ 4 รอบเข้าสู่ระบบภายใน 2 นาที และ 1 ชั่วโมง การเปิดรับแสง ตามลำดับ เหล่านี้ผู้เขียนพบว่าไคโตซานกลูตาเมตเป็นยังE € ective กับยีสต์ Saccharomyces วัฒนธรรมเช่นจาก Rhodotorula glutensis และใช้งานและเป็นอย่างรวดเร็วและเสร็จภายใน 17 นาทีเมื่อสัมผัส1 มก. / มล. และไคโตซาน . แต่ตรงกันข้าม® ndings ของ sudharshan et al . [ 19 ] , ปาปิโน et al . [ 17 ]สังเกตได้ว่า ไคโตซาน hydroglutamate เป็นเพิ่มเติมE € ective ปฏิปักษ์แลคกว่าไคโตซาน . ผลลัพธ์เพิ่มเติมแนะนำว่า ไคโตแซนที่ทำส่วนใหญ่ในภายนอกพื้นผิวของแบคทีเรีย ที่ความเข้มข้นต่ำ ,polycationic ไคโตซานก็อาจจะผูกไปในเชิงลบประจุพื้นผิวแบคทีเรียที่จะก่อให้เกิดการจับกลุ่ม ในขณะที่ที่ความเข้มข้นสูง ขนาดใหญ่ จำนวน บวกค่าธรรมเนียมอาจมีการเพิ่มสุทธิเป็นบวก ค่าแบคทีเรียบนพื้นผิวเพื่อให้ระบบ