The effect of CH4 and CO2 on N. gad

The effect of CH4 and CO2 on N. gaditana growth was evaluated
exposing the microalgae culture to atmospheres containing
different compositions of these gases, in batch photobioreactors.
On a second phase, CO2 absorption was evaluated
in a continuous photobioreactor providing direct contact of
the gas with the culture, in a single stage process. Finally, a
two stages process was evaluated, providing gas/liquid contact
in an external unit for mass transfer, which was connected
with the photobioreactor by a continuous circulation
flow.
2.1. Microalgae and culture medium
The microalgae N. gaditana CCMP-527 was provided by the Applied Microbiology Unit from Universidad de Antofagasta,Chile. Microalgae was cultivated using f/2 medium[21] enriched with 12.0 mol m3 NaNO3 and 0.6 mol m3 KH2PO4. Medium was prepared using seawater, collected from Chilean coasts of Araucanı´a region.

2.2. Effect of CH4 and CO2 on microalgae growth A series of batch photobioreactors of 500 cm3 were set-up for this purpose. All were air tight in order to enable their operation
with atmospheres of controlled composition. Fluorescence lamps were used as source of light, providing an average light intensity of 60 mmol m2 s1. Temperature was maintained at 20 ± 2 C. Potential CH4 inhibition was tested using three gas mixtures: 0, 50 and 100% CH4, balanced with N2. Sodium bicarbonate was used as source of carbon, at an initial concentration of 1 g L1. CO2 inhibition was tested using six
gas mixtures: 0.3, 3, 6, 9, 15 and 30% CO2, balanced with N2. In all cases, gas flow rate was adjusted to 100 mL min1 using a peristaltic pump. Photobioreactors were operated without pH control. All experiments were done in duplicate. The specific growth velocity with the different atmospheres was determined through microalgal biomass concentration increase in time. Biomass concentration was determined by volatile suspended solids (VSS).

2.3. Operation of a continuous single stage process for CO2 capture To evaluate CO2 capture when gas is injected directly into the microalgae culture, a continuous 2.2 L photobioreactor was biomass and bioenergy 73 (2015) 102 e109 103 operated. A gas with a composition of 70% N2 and 30% CO2 was injected into the photobioreactor, simulating biogas. Nitrogen was used at this step, instead of methane, for safety reasons. Gas injection was controlled on-line in order to provide a pH in the range 7.5e8.0. Gas recirculation (150 mL min1) was applied to provide mixing of the culture medium in the photobioreactor, and to enhance gaseliquid mass transfer.Applied dilution rate was 0.06 d1 (feed flow of medium: 0.144 L d1). Samples from photobioreactor were periodically taken to measure biomass and dissolved inorganic carbon (DIC) concentrations. Composition of gas entering and leaving the system was also determined.

2.4. Operation of a continuous two stages process for CO2 capture

2.4.1. Photobioreactor connected to complete mixed unit for mass transfer
A continuous 2.2 L photobioreactor was operated coupled to a 0.13 L vessel as gas/liquid mass transfer unit (Fig. 1). Microalgae culture was continuously circulated between the photobioreactor and the mass transfer unit. The system was operated injecting a gas mixture simulating biogas (70% N2; 30% CO2) in the mass transfer unit. Gas injection was controlled on-line in order to keep the photobioreactor pH in
the range 7.5e8.0. Gas recirculation was applied in the mass transfer unit, so it was assumed that its hydraulic behaviour was that of a complete mix compartment. Applied dilution rate in the photobioreactor was 0.06 d1 (feed flow of medium:0.144 L d1).
An air flow of 210 mL min1 was applied in the photobioreactor to provide mixing and a gas/liquid volumetric mass transfer coefficient (KLa) of 2.5 h1 for O2 and 2.3 h1 for CO2. Latter values may be considered representative of raceway reactors, since they present KLa values between 0.2 and 8 h1 when 20 to 5 cm deep [22].AKLa value typical of raceways was applied, since that cultivation system is the most applied for
large scale microalgae cultivation. Samples from the photobioreactor were periodically taken to determine biomass and dissolved inorganic carbon (DIC).
Dissolved oxygen (DO) concentration was measured through an oxygen electrode placed in the photobioreactor. Gas samples were taken from sampling ports located at the entrance and exit of the mass transfer unit for determination of gas composition.

2.4.2. Photobioreactor connected to bubble column operated in counterflow mode
A continuous open-photobioreactor was operated at 25 ± 1 C.Continuous illumination was provided by means of cool white fluorescent light, at 100 ± 20 mmol m2 s1. The photobioreactor consisted of a glass container of a 75 L. Its dimensions were 0.15 m depth, 0.50 m width and 1.0 m height. Applied dilution rate was 0.06 d1 (feed flow of medium: 4.75 L d1). Aeration was applied into the photobioreactor for mixing. Resulting KLa for O2 and CO2 were 4 h1 and 3.6 h1,respectively.The photobioreactor was connected to a 0.7 L bubbling column operated in counterflow mode. Microalgae culture
was continuously circulated between the photobioreactor and the column, by means of a peristaltic pump, in the same way as when operating the system depicted in Fig. 1. Column dimensions were 2.2 m height and 0.02 m diameter. The system was operated injecting real biogas (72 ± 2% CH4; 28 ± 2% CO2) in the bottom of the column. Biogas was produced in a 4.5 L lab-scale UASB reactor. The anaerobic digester was operated
at 30 C, and fed continuously at an organic loading rate (OLR as COD) of 5 g L1 d1, using diluted wine as substrate.Samples were periodically taken from the photobioreactor to determine biomass and DIC concentrations. Gas samples were taken from sampling ports located at the entrance and exit of the column for determination of gas composition.

2.5. Analytical methods
Volatile suspended solids (VSS) and DIC concentrations were
determined according to methods 2540 and 4500 of Standard
Methods [23], respectively. DO was determined by means of a
portable DO meter (Thermo Orion 3-Star RDO). CO2 and O2
concentrations in the gas phase were determined by means of
a PBI Dansensor Checkmate 9900 CO2/O2 Headspace. During
the operation of the continuous photobioreactor connected to
bubble column, gas composition was determined through a
gas chromatograph with thermal conductivity detector (Perkin
Elmer Clarus 500).
The gas/liquid mass transfer coefficient for O2 (KLaO2) was
measured using the dynamic gassing-in method [24], in
seawater without biomass. CO2 mass transfer coefficient
(KLaCO2) was calculated from values determined for O2,
through the relation KLaCO2 ¼ 0; 9KLaO2

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ผลของ CO2 และ CH4 ในการเจริญเติบโตของเอ็น gaditana
ถูกประเมินเปิดเผยวัฒนธรรมสาหร่ายเพื่อบรรยากาศที่มีองค์ประกอบที่แตกต่างกันของก๊าซเหล่านี้ในชุด
photobioreactors.
ในระยะที่สองการดูดซึม CO2
ถูกประเมินในphotobioreactor
อย่างต่อเนื่องให้ติดต่อโดยตรงของก๊าซกับวัฒนธรรมในกระบวนการขั้นตอนเดียว ในที่สุดทั้งสองขั้นตอนขั้นตอนที่ถูกประเมินให้ติดต่อก๊าซ / ของเหลวในหน่วยภายนอกสำหรับการถ่ายโอนมวลซึ่งมีการเชื่อมต่อกับphotobioreactor โดยการไหลเวียนอย่างต่อเนื่องไหล. 2.1 สาหร่ายกลางและวัฒนธรรมสาหร่ายเอ็น gaditana CCMP-527 ถูกจัดให้โดยหน่วยจุลชีววิทยาประยุกต์จาก Universidad de Antofagasta, ชิลี สาหร่ายได้รับการปลูกฝังการใช้ f / 2 กลาง [21] อุดมไปด้วย 12.0 mol m3 NaNO3 และ 0.6 mol m3 KH2PO4 กลางถูกจัดทำขึ้นโดยใช้น้ำทะเลที่เก็บได้จากชายฝั่งชิลีในภูมิภาคAraucanı'a. 2.2 ผลของ CO2 และ CH4 ต่อการเจริญเติบโตสาหร่ายชุด photobioreactors ชุดของ 500 cm3 ถูกกำหนดขึ้นเพื่อการนี้ ทุกคนแน่นอากาศเพื่อให้การดำเนินงานของพวกเขาที่มีบรรยากาศขององค์ประกอบการควบคุม โคมไฟเรืองแสงถูกนำมาใช้เป็นแหล่งที่มาของแสงให้แสงความเข้มเฉลี่ย 60 มิลลิโมล m2 s1 อุณหภูมิไว้ที่ 20 ± 2 องศาเซลเซียสที่มีศักยภาพการยับยั้ง CH4 ได้รับการทดสอบโดยใช้ก๊าซผสมสาม: 0, 50 และ 100% CH4, สมดุลกับ N2 โซเดียมไบคาร์บอเนตถูกใช้เป็นแหล่งที่มาของคาร์บอนที่มีความเข้มข้นเริ่มต้นของ 1 กรัม L1 ยับยั้ง CO2 ได้รับการทดสอบโดยใช้หกก๊าซผสม: 0.3, 3, 6, 9, 15 และ 30% CO2, N2 สมดุลกับ ในทุกกรณีที่อัตราการไหลของก๊าซมีการปรับถึง 100 มิลลิลิตร min1 ใช้ปั๊ม peristaltic photobioreactors เข้ารับการผ่าตัดโดยไม่มีการควบคุมค่า pH การทดลองทั้งหมดถูกทำในที่ซ้ำกัน ความเร็วการเจริญเติบโตจำเพาะกับบรรยากาศที่แตกต่างกันได้รับการพิจารณาผ่านการเพิ่มความเข้มข้นของชีวมวลสาหร่ายในเวลา ความเข้มข้นของชีวมวลถูกกำหนดโดยสารแขวนลอยระเหย (VSS). 2.3 การดำเนินงานของกระบวนการขั้นตอนเดียวอย่างต่อเนื่องสำหรับการจับ CO2 เพื่อประเมินจับ CO2 เมื่อก๊าซฉีดโดยตรงลงในวัฒนธรรมของสาหร่ายที่ต่อเนื่อง 2.2 ลิตร photobioreactor เป็นชีวมวลและพลังงานชีวภาพ 73 (2015) 102 103 e109 ดำเนินการ ก๊าซที่มีองค์ประกอบของ 70% N2 และ CO2 30% ถูกฉีดเข้าไปใน photobioreactor ที่จำลองการผลิตก๊าซชีวภาพ ไนโตรเจนถูกนำมาใช้ในขั้นตอนนี้แทนของก๊าซมีเทนสำหรับเหตุผลด้านความปลอดภัย การฉีดก๊าซที่ถูกควบคุมในบรรทัดเพื่อให้ค่า pH ใน 7.5e8.0 ช่วงที่ หมุนเวียนก๊าซ (150 มิลลิลิตร min1) ถูกนำมาใช้เพื่อให้การผสมของอาหารเลี้ยงเชื้อใน photobioreactor และเพื่อเพิ่มมวล gaseliquid อัตราการเจือจาง transfer.Applied เป็น 0.06 d1 (การไหลเวียนของฟีดของกลาง: 0.144 L d1) ตัวอย่างจาก photobioreactor ถูกนำมาเป็นระยะในการวัดชีวมวลและละลายคาร์บอนนินทรีย์ (DIC) ความเข้มข้น องค์ประกอบของก๊าซเข้าและออกจากระบบยังถูกกำหนด. 2.4 การดำเนินงานอย่างต่อเนื่องของกระบวนการขั้นตอนที่สองสำหรับการจับ CO2 2.4.1 photobioreactor เชื่อมต่อให้เสร็จสมบูรณ์หน่วยผสมสำหรับการถ่ายโอนมวลอย่างต่อเนื่อง2.2 ลิตร photobioreactor ดำเนินการคู่กับเรือ L 0.13 ก๊าซ / หน่วยของเหลวถ่ายเทมวล (รูปที่ 1). วัฒนธรรมสาหร่ายถูกหมุนเวียนอย่างต่อเนื่องระหว่าง photobioreactor และหน่วยการถ่ายโอนมวล ระบบได้รับการดำเนินการฉีดก๊าซผสมจำลองก๊าซชีวภาพ (70% N2; CO2 30%) ในหน่วยการถ่ายโอนมวล การฉีดก๊าซที่ถูกควบคุมในบรรทัดเพื่อให้ค่า pH photobioreactor ใน7.5e8.0 ช่วง หมุนเวียนก๊าซถูกนำมาใช้ในหน่วยการถ่ายโอนมวลจึงสันนิษฐานว่าพฤติกรรมของไฮดรอลิเป็นที่ของช่องผสมที่สมบูรณ์ อัตราการลดสัดส่วนการประยุกต์ใช้ใน photobioreactor เป็น 0.06 d1 (การไหลเวียนของฟีดของกลาง: 0.144 L d1). การไหลของอากาศ 210 มิลลิลิตร min1 ถูกนำมาใช้ใน photobioreactor เพื่อให้การผสมและก๊าซ / ของเหลวค่าสัมประสิทธิ์การถ่ายเทมวลปริมาตร (กล้า) 2.5 h1 สำหรับ O2 และ 2.3 h1 สำหรับ CO2 ค่าหลังอาจได้รับการพิจารณาเป็นตัวแทนของเครื่องปฏิกรณ์ร่องน้ำเนื่องจากพวกเขานำเสนอค่ากล้าระหว่าง 0.2 และ 8 h1 เมื่อ 20-5 ซม. ลึก [22] ค่า .AKLa ทั่วไปของ raceways ถูกนำมาใช้ตั้งแต่ระบบการเพาะปลูกที่ถูกนำมาใช้มากที่สุดสำหรับสาหร่ายขนาดใหญ่การเพาะปลูก ตัวอย่างจาก photobioreactor ถูกนำเป็นระยะ ๆ เพื่อตรวจสอบชีวมวลและละลายคาร์บอนนินทรีย์ (DIC). ออกซิเจนละลาย (DO) ความเข้มข้นวัดขั้วไฟฟ้าผ่านออกซิเจนวางไว้ใน photobioreactor ตัวอย่างก๊าซถูกนำมาจากการสุ่มตัวอย่างพอร์ตตั้งอยู่ที่ทางเข้าและทางออกของหน่วยการถ่ายโอนมวลสำหรับการกำหนดองค์ประกอบของก๊าซ. 2.4.2 photobioreactor เชื่อมต่อกับคอลัมน์ฟองดำเนินการในโหมดทวนเปิดphotobioreactor ดำเนินการอย่างต่อเนื่องที่ 25 ± 1 ส่องสว่าง C.Continuous ถูกจัดให้โดยวิธีการของไฟเรืองแสงสีขาวที่ 100 ± 20 มิลลิโมล m2 s1 photobioreactor ประกอบด้วยภาชนะแก้ว 75 ลิตรขนาดของมันมีความลึก 0.15 เมตร 0.50 เมตรความกว้างและความสูง 1.0 เมตร อัตราการเจือจางประยุกต์เป็น 0.06 d1 (การไหลเวียนของฟีดของกลาง: 4.75 L d1) ถูกนำมาใช้การเติมอากาศลงไปใน photobioreactor สำหรับผสม ส่งผลให้กล้าสำหรับ O2 และ CO2 ถูก h1 4 และ 3.6 h1, ตามลำดับ photobioreactor เชื่อมต่อกับคอลัมน์เดือด L 0.7 ดำเนินการในโหมดทวน วัฒนธรรมสาหร่ายถูกหมุนเวียนอย่างต่อเนื่องระหว่าง photobioreactor และคอลัมน์โดยใช้วิธีการปั๊ม peristaltic ในลักษณะเดียวกับเมื่อระบบปฏิบัติการที่ปรากฎในรูป 1. ขนาดคอลัมน์มีความสูง 2.2 เมตรและ 0.02 เมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง ระบบที่ได้รับการดำเนินการฉีดก๊าซชีวภาพที่แท้จริง (72 ± 2% CH4; 28 ± 2% CO2) ในด้านล่างของคอลัมน์ ก๊าซชีวภาพที่ผลิตใน 4.5 L ห้องปฏิบัติการขนาด UASB เครื่องปฏิกรณ์ บ่อหมักไร้อากาศดำเนินการวันที่ 30 C และเลี้ยงอย่างต่อเนื่องในอัตราที่บรรทุกสารอินทรีย์ (โอแอลอาเป็นซีโอดี) 5 กรัม L1 d1 ใช้ไวน์เจือจางเป็น substrate.Samples ถูกนำมาเป็นระยะ ๆ จาก photobioreactor เพื่อตรวจสอบความเข้มข้นของชีวมวลและ DIC ตัวอย่างก๊าซถูกนำมาจากการสุ่มตัวอย่างพอร์ตตั้งอยู่ที่ทางเข้าและทางออกของคอลัมน์สำหรับการกำหนดองค์ประกอบของก๊าซ. 2.5 วิธีการวิเคราะห์สารแขวนลอยระเหย (VSS) และความเข้มข้นของ DIC ถูกกำหนดตามวิธีการ2540 4500 และมาตรฐานวิธีการ[23] ตามลำดับ DO ถูกกำหนดโดยวิธีการแบบพกพาDO เมตร (Thermo Orion RDO 3 ดาว) CO2 และ O2 ความเข้มข้นของก๊าซในขั้นตอนที่ถูกกำหนดโดยวิธีการของPBI Dansensor รุกฆาต 9900 CO2 / O2 Headspace ในระหว่างการดำเนินงานของ photobioreactor อย่างต่อเนื่องเชื่อมต่อกับคอลัมน์ฟององค์ประกอบก๊าซถูกกำหนดผ่านก๊าซChromatograph กับเครื่องตรวจจับการนำความร้อน (Perkin Elmer Clarus 500). ก๊าซ / ของเหลวค่าสัมประสิทธิ์การถ่ายเทมวล O2 (KLaO2) ได้รับการวัดโดยใช้gassing- แบบไดนามิก วิธี [24] ในน้ำทะเลโดยไม่ต้องชีวมวล ค่าสัมประสิทธิ์การถ่ายเทมวล CO2 (KLaCO2) ที่คำนวณจากค่ากำหนดสำหรับ O2, ผ่านความสัมพันธ์ KLaCO2 ¼ 0; 9KLaO2

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ผลของคาร์บอนไดออกไซด์ต่อการเจริญเติบโตและร่าง . gaditana ประเมิน
เปิดเผยสาหร่ายวัฒนธรรมบรรยากาศที่มีก๊าซ
องค์ประกอบที่แตกต่างกันเหล่านี้ ใน photobioreactors ชุด .
ในขั้นตอนที่สอง , CO2 absorption ประเมิน
ในอย่างต่อเนื่อง photobioreactor ให้ติดต่อโดยตรงของ
แก๊สกับวัฒนธรรม ในกระบวนการขั้นตอนเดียว ในที่สุด ,
2 ขั้นตอน กระบวนการประเมินให้ของเหลวก๊าซ / ติดต่อ
ในหน่วยภายนอกสำหรับการถ่ายโอนมวล ซึ่งเกี่ยวข้องกับ photobioreactor
โดยการหมุนเวียนต่อเนื่องไหล
.
2.1 . เลี้ยงสาหร่ายและสาหร่าย gaditana
กลางวัฒนธรรม ที่ ccmp-527 จัดโดยสาขาจุลชีววิทยาประยุกต์หน่วยจาก Universidad de Antofagasta , ชิลี สาหร่ายขนาดเล็ก คือ การปลูกใช้ F / 2 ) [ 21 ] อุดมไปด้วย 12.0 NaNO3 M3 โดย 06 โมล M3 kh2po4 . กลางเตรียมใช้น้ำทะเลที่รวบรวมได้จากชายฝั่งของ araucan ı´ภูมิภาคชิลี .

. . ผลของคาร์บอนไดออกไซด์ต่อการเจริญเติบโตของสาหร่ายและร่างชุดของชุด photobioreactors 500 cm3 ถูกตั้งขึ้นเพื่อวัตถุประสงค์นี้ ทั้งหมดเครื่องแน่น เพื่อให้งานของพวกเขาด้วยบรรยากาศ
ควบคุมองค์ประกอบ โคมไฟเรืองแสงที่ถูกใช้เป็นแหล่งของแสงให้ความเข้มแสงเฉลี่ย 60 mmol M2 S1 . อุณหภูมิไว้ที่ 20 ± 2 c . อาจยับยั้งร่างทดลองใช้ก๊าซผสม 3 : 0 , 50 และ 100 % ร่างสมดุลกับ 2 . โซเดียมไบคาร์บอเนตที่ใช้เป็นแหล่งคาร์บอนที่ความเข้มข้นเริ่มต้นของ L1 1 กรัม ทดสอบการใช้ CO2 และก๊าซผสม 6
: 0.3 , 3 , 6 , 9 , 15 และ 30 เปอร์เซ็นต์สมดุลกับ CO2 , N2 . ในทุกกรณีอัตราการไหลของแก๊สปรับ 100 ml min1 ใช้ปั๊ม peristaltic . photobioreactors ดำเนินการโดยไม่มีการควบคุม PH ทุกชุดการทดลองทำเลียนแบบ การเจริญเติบโตความเร็วที่เฉพาะเจาะจงกับบรรยากาศต่าง ๆถูกกำหนดผ่านความเข้มข้นสาหร่ายชีวมวลเพิ่มขึ้นในเวลา ถูกกำหนดโดยกำหนดความเข้มข้นของแข็งแขวนลอยระเหย ( VSS ) .

2.3การดำเนินงานอย่างต่อเนื่องขั้นตอนเดียวกระบวนการเพื่อดักจับก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์เพื่อดักจับก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์เมื่อก๊าซจะถูกฉีดโดยตรงเข้าไปในสาหร่ายวัฒนธรรมต่อเนื่อง 2.2 ลิตร photobioreactor เป็นพลังงานชีวมวล และ 73 ( 2015 ) e109 102 103 ที่ดําเนินการ เป็นก๊าซที่มีองค์ประกอบของไนโตรเจน 70 % และ CO2 ร้อยละ 30 ถูกฉีดเข้าไปใน photobioreactor จำลอง , ก๊าซชีวภาพ ไนโตรเจนที่ใช้ในขั้นตอนนี้ แทนที่จะเป็นก๊าซมีเทนสำหรับเหตุผลด้านความปลอดภัย การฉีดก๊าซควบคุมออนไลน์เพื่อให้ pH 7.5e8.0 . การหมุนเวียนก๊าซ ( min1 150 มิลลิลิตร ) มีวัตถุประสงค์เพื่อให้การผสมของวัฒนธรรมสื่อใน photobioreactor และเพื่อเพิ่มการถ่ายเทมวล gaseliquid . อัตราการเจือจางที่ใช้คือ 0.06 D1 ( ให้อาหารไหลกลาง : 0.144 l D1 )ตัวอย่างจาก photobioreactor อยู่เป็นระยะ ๆ ถ่ายวัด ชีวมวลและอนินทรีย์คาร์บอนละลาย ( DIC ) เข้มข้น องค์ประกอบของก๊าซที่เข้าและออกจากระบบได้ รวมทั้งกำหนด

2.4 . การดำเนินงานแบบต่อเนื่องสองขั้นตอนกระบวนการเพื่อดักจับก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์

เครื่องมือกำจัดเพื่อย้าย . photobioreactor เชื่อมต่อเสร็จสมบูรณ์หน่วยผสมสำหรับการถ่ายโอนมวล
ต่อเนื่อง 2 .2 L photobioreactor ดำเนินการควบคู่กับเรือเป็น 0.13 ล. เป็นก๊าซ / หน่วยการถ่ายโอนมวลของของเหลว ( รูปที่ 1 ) สาหร่ายวัฒนธรรมต่อเนื่องหมุนเวียนระหว่าง photobioreactor และหน่วยการถ่ายโอนมวล ระบบการฉีดแก๊สผสมจากก๊าซชีวภาพ ( 70 % N2 ; CO2 30% ) ในหน่วยการถ่ายโอนมวล การฉีดก๊าซควบคุมออนไลน์เพื่อให้ photobioreactor ใน
อช่วง 7.5e8.0 . การหมุนเวียนก๊าซที่ใช้ในหน่วยการถ่ายโอนมวล จึงสันนิษฐานว่าพฤติกรรมชลศาสตร์ของส่วนผสมที่สมบูรณ์ ใช้อัตราเจือจางใน photobioreactor คือ 0.06 D1 ( ให้อาหารไหลกลาง : 0.144 l D1 ) .
อากาศการไหลของ min1 210 มล. ในการประยุกต์ photobioreactor ให้ผสมก๊าซ / ปริมาตรมวลค่าสัมประสิทธิ์การถ่ายเทของเหลว ( กล้า ) 25 H1 สำหรับ O2 และ 2.3 H1 สำหรับ CO2 ค่าหลังอาจจะถือว่าเป็นตัวแทนของเครื่องปฏิกรณ์ร่องน้ำ เพราะปัจจุบันกล้าค่าระหว่าง 0.2 และ 8 H1 เมื่อ 20 5 ซม. ลึก [ 22 ] akla ค่าปกติของรางที่ใช้ เนื่องจากว่าระบบการปลูก คือ ใช้มากที่สุดสำหรับ
เพาะสาหร่ายขนาดใหญ่ตัวอย่างจาก photobioreactor อยู่เป็นระยะ ๆวัดชีวมวลและอนินทรีย์คาร์บอนละลาย ( DIC )
( ทำ ) ปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำความเข้มข้นออกซิเจนวัดผ่านขั้วไฟฟ้าอยู่ใน photobioreactor . ตัวอย่างแก๊สที่ได้จากพอร์ตตั้งอยู่ในทางเข้าและทางออกของหน่วยการถ่ายโอนมวลสำหรับการกำหนดองค์ประกอบของก๊าซ ) .

2.4.2 .photobioreactor เชื่อมต่อกับฟองคอลัมน์ดำเนินการในโหมดกระแสลมทวน
ต่อเนื่องเปิด photobioreactor ดำเนินการ 25 ± 1 C ต่อเนื่องรัศมีโดยวิธีการเย็นสีขาวเรืองแสงแสงที่ 100 ± 20 mmol M2 S1 . การ photobioreactor ประกอบด้วยภาชนะแก้วของ 75 ลิตร ขนาดของมันคือ 0.15 เมตร ลึก 0.50 เมตร ความกว้างและ 1.0 เมตรสูง อัตราการเจือจางที่ใช้คือ 006 D1 ( ให้อาหารไหลปานกลาง : 4.75 ชั้น D1 ) อากาศที่ใช้ใน photobioreactor สำหรับผสม สำหรับ O2 และ CO2 เป็นผลสมบูรณ์ คือ 4 H1 และ 3.6 H1 , respectively.the photobioreactor ถูกเชื่อมต่อกับ 0.7 ลิตรน้ำหยอดในกระแสลมทวนคอลัมน์โหมด .
วัฒนธรรมสาหร่ายขนาดเล็กเป็นอย่างต่อเนื่องหมุนเวียนระหว่าง photobioreactor และคอลัมน์ โดยวิธีการของปั๊ม peristaltic ,ในลักษณะเดียวกันกับเมื่อใช้งานระบบแสดงในรูปที่ 1 ขนาดคอลัมน์เท่ากับ 2.2 เมตร ความสูงและ 0.02 เมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง ระบบการฉีดก๊าซที่แท้จริง ( 72 ± 2% ร่าง ; 28 ± 2% CO2 ) ในด้านล่างของคอลัมน์ ก๊าซชีวภาพที่ผลิตในขนาด 4.5 ลิตร Lab ระบบเครื่องปฏิกรณ์ โดยไร้ซึ่งการ
ที่ 30 องศาเซลเซียส และเลี้ยงอย่างต่อเนื่องที่อัตราภาระอินทรีย์ ( เช่นอัตรา 5 กรัมซีโอดี ) d1 L1 ,การใช้ไวน์เจือจางเป็นสับสเตรท กลุ่มตัวอย่างได้มาจาก photobioreactor เป็นระยะ ๆเพื่อตรวจสอบปริมาณและความเข้มข้นของ DIC . ตัวอย่างแก๊สที่ได้จากพอร์ตตั้งอยู่ในทางเข้าและทางออกของคอลัมน์ที่กำหนด ขององค์ประกอบของก๊าซ ) .

2.5 วิธีการวิเคราะห์
ของแข็งแขวนลอยระเหย ( VSS ) และความเข้มข้นของ DIC มี