Litchi PPO and POD were extracted b

Litchi PPO and POD were extracted by homogenizing the pericarp (2.5 g) in 10 ml of 0.05 M potassium phosphate buffer solution (pH 6.2), 1 M KCl and 2% polyvinylpolypyrroridone (PVPP). The homogenate was centrifuged for 30 min at 13,500 rpm and 4 O C, and then the supernatant was collected as the crude enzyme extract. The assay of PPO activity was performed according to the method of Jiang & Fu, 7 using 2.0 ml of 0.05 M potassium phosphate buffer (pH 7.5), 0.2 ml of 0.2 M 4-methyl-catechol and 0.5 ml of enzyme extract. The increase of absorbance at 420 nm was recorded automatically for 5 min. The assay of POD activity was performed according to the method of Nagle & Haard, 17using 2.5 ml of 0.01 M sodium acetate buffer (pH 6.0), 0.05 ml of 0.1% guaiacol, 0.1 ml of 0.1% H2O2 , and 0.05 ml of enzyme extract. The absorbance was recorded at 470 nm. One unit of enzyme activity was defined as the amount that causes an increase of 0.01 in absorbance per min. Protein content was determined according to the method of Lowry et al.
18

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Litchi PPO และ POD ถูกสกัด โดย homogenizing pericarp (2.5 g) ใน 10 ml ของ 0.05 M โพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.2), 1 M KCl และ 2% polyvinylpolypyrroridone (PVPP) Homogenate ถูก centrifuged สำหรับ 13,500 รอบต่อนาทีและ 4 O C 30 นาที และ supernatant ถูกรวบรวมเป็นสารสกัดเอนไซม์ดิบแล้ว ทดสอบกิจกรรม PPO ทำตามวิธีของเจียง& Fu 7 ใช้ 2.0 ml 0.05 M โพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.5), ml 0.2 0.2 M 4-methyl-catechol และ 0.5 ml ของเอนไซม์แยก การเพิ่มขึ้นของ absorbance ที่ 420 nm ถูกบันทึกโดยอัตโนมัติสำหรับ 5 นาที ทำการวิเคราะห์กิจกรรมเท่านั้นตามวิธีการของ Nagle & Haard, 17using 2.5 ml ของ 0.01 M โซเดียม acetate บัฟเฟอร์ (pH 6.0), 0.05 ml ของ guaiacol 0.1, 0.1 ml ของ 0.1% H2O2 และ 0มล 05 ของสารสกัดเอนไซม์ Absorbance ที่ถูกบันทึกไว้ที่ 470 nm หน่วยหนึ่งของเอนไซม์ถูกกำหนดเป็นยอดเงินที่ทำให้เกิดการเพิ่มขึ้นของ 0.01 ใน absorbance ต่อโปรตีนส่วนลด ถูกกำหนดตามวิธีของ al. et Lowry
18

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ลิ้นจี่ PPO และ POD ถูกสกัดโดยการผสมยางเปลือก (2.5 กรัม) ใน 10 มล. 0.05 M โพแทสเซียมฟอสเฟตสารละลายบัฟเฟอร์ (pH 6.2) 1 M KCl และ 2% polyvinylpolypyrroridone (PVPP) homogenate ถูกปั่นเป็นเวลา 30 นาทีที่ 13,500 รอบต่อนาทีและ 4 OC แล้วใสถูกเก็บรวบรวมเป็นสารสกัดเอนไซม์ดิบ การวิเคราะห์ของกิจกรรม PPO ได้ดำเนินการตามวิธีการของเจียงและ Fu, 7 ใช้ 2.0 มล. 0.05 M โพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.5), 0.2 มล. 0.2 M 4-methyl-catechol และ 0.5 มล. ของสารสกัดเอนไซม์ การเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงที่ 420 นาโนเมตรจะถูกบันทึกโดยอัตโนมัติเป็นเวลา 5 นาที การวิเคราะห์ของกิจกรรม POD ได้ดำเนินการตามวิธีการของ Nagle และ Haard, 17using 2.5 มล. 0.01 M โซเดียมอะซิเตทบัฟเฟอร์ (pH 6.0), 0.05 มล. 0.1% guaiacol, 0.1 มล. 0.1% H2O2 และ 0.05 มล. ของสารสกัดเอนไซม์ . การดูดกลืนแสงที่ถูกบันทึกไว้ที่ 470 นาโนเมตร หน่วยหนึ่งของกิจกรรมของเอนไซม์ถูกกำหนดเป็นจำนวนเงินที่เป็นสาเหตุของการเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงใน 0.01 ต่อนาที ปริมาณโปรตีนถูกกำหนดตามวิธีการของโลว์รีย์และอัล
18

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

PPO ลิ้นจี่และฝักถูกสกัดโดยการผสมยางที่เปลือก ( 2.5 กรัม ) ใน 10 มิลลิลิตร 0.05 M ฟอสเฟตโพแทสเซียมสารละลายบัฟเฟอร์ pH 6.2 ) 1 M . 2 % polyvinylpolypyrroridone ( pvpp ) โดยแยกเป็นระดับ 30 นาทีที่ 13 , 500 รอบต่อนาทีและ 4 o C จากนั้นนำกลุ่มตัวอย่างเป็นเอนไซม์ที่สกัด . ( ของกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ได้ดำเนินการตามวิธีการของเจียง&ฟุใช้ 2.0 มิลลิลิตร 0.05 M โพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.5 ) , 0.2 มล. 0.2 M 4-methyl-catechol และ 0.5 มิลลิลิตรเอนไซม์สกัดเข้มข้น การเพิ่มขึ้นของค่าการดูดกลืนแสงที่ 420 นาโนเมตร ถูกบันทึกโดยอัตโนมัติใน 5 นาที ( กิจกรรมฝักมีการปฏิบัติตามวิธีการของ เนเกิล& haard 17using 2.5 ml , 0.01 M โซเดียมอะซิเตตบัฟเฟอร์ ( pH 6.0 ) , 0.05 ml 0.1% ค่า 0.1 ml 0.1% H2O2 , และ 005 มิลลิลิตรเอนไซม์สกัดเข้มข้น นเท่ากับ 470 นาโนเมตร หนึ่งหน่วยของเอนไซม์ถูกกำหนดไว้เป็นจำนวนที่เพิ่มขึ้นของ 0.01 นสาเหตุในนาทีต่อปริมาณโปรตีนที่ถูกกำหนดตามวิธีการของโลว์รีย์ et al .
18