Diagnostic methods for the detectio

Diagnostic methods for the detection of S. agalactiae in fish are usually
based on bacterial isolation in culture medium. In our experimental
trial, we observed 48.8% detection of S. agalactiae from lethal sampling
associated with bacteriology. However, a low frequency of detection
was observed from nonlethal samples. It should be noted that this experiment
was conducted to investigate the detection of S. agalactiae in
carrier fish,where a lowbacterial load would be expected to be present
in the samples evaluated. The low sensitivity of the bacteriological
methods investigated may have been the result of such low bacterial
loads. An increase in the relative sensitivity is expected in clinical samples
that have a high bacterial load. However, bacterial isolation in culture
medium is a procedure that requires time to obtain a definitive
diagnosis, which enables an increase in the number of infected fish
within a farm. Molecular biology techniques for the diagnosis of this
bacterium have been developed, such as species-specific PCR, nested-
PCR, and qPCR, which allow for highly sensitive and rapid diagnosis of
infection (Jiménez et al., 2011; Mata et al., 2004; Su et al., 2015). From
this statement, the sensitivity of a PCR for the detection of S. agalactiae was evaluated and it was observed that this method, when associated
with lethal sampling, was less sensitive than bacteriology (44.18%).
This result differs from that of Delamare-Deboutteville et al. (2015)
who reported that a PCR assay was more sensitive than bacteriology
for the diagnosis of S. agalactiae. The lower sensitivity of PCR in the current
study may be due to low bacterial load present in the tissue samples,
thereby reducing the bacterial detection. However, when the
samples were tested by qPCR,which ismore sensitive than conventional
PCR, S. agalactiae was detected in 41 of 43 challenged fish. Therefore,
the qPCR assay was able to detect low S. agalactiae load in almost allNile
tilapia tissues evaluated (above 0.22 genome equivalent, data not
shown) and was more sensitive than bacteriology and standard PCR, regardless
of the sample types used. However, if qPCR is available in the
place where the nonlethal samples will be used, the lethal methods
would be more efficient. The current study is the first to compare the efficiency
of bacteriology, PCR, and qPCR for the diagnosis of S. agalactiae
in samples obtained by nonlethal sampling.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วิธีการวินิจฉัยสำหรับตรวจหา S. agalactiae ปลามักมีคะแนนเฉลียจากแยกแบคทีเรียในวัฒนธรรม ในการทดลองของเราทดลองใช้ เราสังเกตตรวจจับ 48.8% S. agalactiae จากสุ่มยุทธภัณฑ์เกี่ยวข้องกับ bacteriology อย่างไรก็ตาม ความถี่ต่ำในการตรวจจับพบว่า จากตัวอย่าง nonlethal ควรสังเกตว่า นี้ทดลองดำเนินการตรวจสอบการตรวจสอบของ S. agalactiae ในผู้ขนส่งปลา ที่โหลด lowbacterial คาดว่าจะต้องมีอยู่ในตัวอย่างที่ประเมิน ความไวแสงของแบคทีเรียที่วิธีการตรวจสอบอาจได้รับผลของแบคทีเรียดังกล่าวต่ำโหลด คาดว่าการเพิ่มความไวแสงสัมพัทธ์ในตัวอย่างทางการแพทย์ที่มีการโหลดแบคทีเรียสูง อย่างไรก็ตาม การแยกแบคทีเรียในวัฒนธรรมปานกลางเป็นกระบวนการที่ต้องใช้เวลาในการขอรับสำคัญวินิจฉัย ซึ่งช่วยให้การเพิ่มจำนวนของปลาที่ติดเชื้อภายในฟาร์ม อณูชีววิทยาเทคนิคการวินิจฉัยโรคนี้แบคทีเรียได้รับการพัฒนา เช่น PCR สาย ซ้อน-PCR และ qPCR ซึ่งช่วยให้การวินิจฉัยอย่างรวดเร็ว และมีความสำคัญสูงติดเชื้อ (Jiménez et al. 2011 Mata et al. 2004 Su et al. 2015) จากคำชี้แจงนี้ รับการประเมินความไวของ PCR สำหรับตรวจหา S. agalactiae และพบที่วิธีการนี้ เมื่อเกี่ยวข้องด้วยการสุ่มตัวอย่างตาย ได้น้อยกว่า bacteriology (44.18%)ผลนี้แตกต่างจากที่ของ Delamare Deboutteville et al. (2015)ที่รายงานว่า PCR assay มีความไวมากกว่า bacteriologyสำหรับการวินิจฉัยของ S. agalactiae ลดความไวของ PCR ในปัจจุบันศึกษาอาจจะเกิดจากการโหลดแบคทีเรียต่ำอยู่ในตัวอย่างเนื้อเยื่อจึงช่วยลดการตรวจจับเชื้อแบคทีเรีย อย่างไรก็ตาม เมื่อการตัวอย่างทดสอบ โดย qPCR, ismore ซึ่งมีความไวมากกว่าปกติPCR พบ S. agalactiae ใน 41 43 ท้าทายปลา ดังนั้นทดสอบ qPCR ก็สามารถที่จะตรวจจับต่ำ S. agalactiae โหลดเกือบ allNileเนื้อเยื่อของปลานิลประเมิน (ด้านบนจีโนมที่ 0.22 ข้อมูลเทียบเท่า ไม่แสดง) และความไวมากกว่า bacteriology และ PCR มาตรฐาน คำนึงชนิดตัวอย่างที่ใช้ อย่างไรก็ตาม ถ้า qPCR จะพร้อมใช้งานในการสถานที่ตัวอย่าง nonlethal จะใช้ วิธีการตายจะมีประสิทธิภาพมากขึ้น การศึกษาปัจจุบันเป็นครั้งแรกเพื่อเปรียบเทียบประสิทธิภาพbacteriology, PCR และ qPCR สำหรับการวินิจฉัยของ S. agalactiaeในตัวอย่างที่ได้มา โดยการสุ่มตัวอย่าง nonlethal

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิธีการวินิจฉัยในการตรวจหา S. agalactiae ในปลามักจะ
อยู่บนพื้นฐานของการแยกเชื้อแบคทีเรียในอาหารเลี้ยงเชื้อ ในการทดลองของเรา
ทดลองเราสังเกตการตรวจสอบ 48.8% ของเอส agalactiae จากการสุ่มตัวอย่างตาย
เกี่ยวข้องกับแบคทีเรีย แต่ความถี่ต่ำของการตรวจสอบ
พบว่าจากตัวอย่าง nonlethal มันควรจะตั้งข้อสังเกตว่าการทดลองนี้
ได้ดำเนินการในการตรวจสอบการตรวจสอบของ S. agalactiae ใน
ปลาผู้ให้บริการที่โหลด lowbacterial จะคาดว่าจะถูกนำเสนอ
ในตัวอย่างประเมิน ความไวต่ำของแบคทีเรีย
วิธีการตรวจสอบอาจจะเป็นผลมาจากการติดเชื้อแบคทีเรียดังกล่าวต่ำ
โหลด การเพิ่มขึ้นของความไวญาติคาดว่าในตัวอย่างทางคลินิก
ที่มีภาระแบคทีเรียสูง อย่างไรก็ตามการแยกเชื้อแบคทีเรียในวัฒนธรรมของ
กลางเป็นขั้นตอนที่ต้องใช้เวลาที่จะได้รับที่ชัดเจน
การวินิจฉัยซึ่งจะช่วยให้การเพิ่มจำนวนของปลาที่ติดเชื้อ
ภายในฟาร์ม เทคนิคอณูชีววิทยาสำหรับการวินิจฉัยนี้
แบคทีเรียได้รับการพัฒนาเช่นสายพันธุ์เฉพาะ PCR, nested-
PCR และ qPCR ซึ่งจะช่วยให้การวินิจฉัยและมีความไวสูงอย่างรวดเร็วของ
การติดเชื้อ (Jiménez et al, 2011;.. มาตาฮารีเอตอัล 2004. ซู et al, 2015) จาก
คำสั่งนี้มีความไวของการตรวจหา S. agalactiae ที่ได้รับการประเมินและได้รับการตั้งข้อสังเกตว่าวิธีการนี้เมื่อเกี่ยวข้อง
กับการสุ่มตัวอย่างตายไวน้อยกว่าแบคทีเรีย (44.18%).
ผลที่ได้นี้แตกต่างจากที่ Delamare- Deboutteville et al, (2015)
ที่รายงานว่ามีการทดสอบโดยวิธี PCR เป็นคนอ่อนไหวมากกว่าแบคทีเรีย
สำหรับการวินิจฉัย S. agalactiae ความไวล่างของ PCR ในปัจจุบัน
การศึกษาอาจจะเป็นเพราะการโหลดต่ำปัจจุบันแบคทีเรียในตัวอย่างเนื้อเยื่อ
จะช่วยลดการตรวจหาเชื้อแบคทีเรีย แต่เมื่อ
กลุ่มตัวอย่างได้รับการทดสอบโดย qPCR ซึ่ง ismore มีความไวกว่าเดิม
PCR, S. agalactiae ถูกตรวจพบใน 41 43 ปลาท้าทาย ดังนั้น
การทดสอบ qPCR ก็สามารถที่จะตรวจสอบการโหลดต่ำ S. agalactiae ในเกือบ allNile
เนื้อเยื่อปลานิลประเมิน (เหนือ 0.22 เทียบเท่าจีโนมข้อมูลไม่
แสดง) และไวกว่าแบคทีเรียและมาตรฐาน PCR โดยไม่คำนึงถึง
ประเภทของกลุ่มตัวอย่างที่ใช้ แต่ถ้า qPCR มีอยู่ใน
สถานที่ที่กลุ่มตัวอย่าง nonlethal จะใช้วิธีการตาย
จะมีประสิทธิภาพมากขึ้น การศึกษาในปัจจุบันเป็นครั้งแรกเพื่อเปรียบเทียบประสิทธิภาพ
ของแบคทีเรีย PCR และ qPCR สำหรับการวินิจฉัย S. agalactiae
ในตัวอย่างที่ได้จากการสุ่มตัวอย่าง nonlethal

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิธีการวินิจฉัยตรวจหาแลคเตียในปลามักจะ .จากแบคทีเรียในการสื่อวัฒนธรรม ในการทดลองการทดลองเราพบ 48.8 % การตรวจหาแลคเตียจากตาย ( Sที่เกี่ยวข้องกับแบคทีเรีย . อย่างไรก็ตาม ความถี่ต่ำของการตรวจจับสังเกตได้จากตัวอย่าง nonlethal . มันควรจะสังเกตว่า การทดลองนี้ศึกษาการตรวจหาแลคเตียใน Sพาหะปลาที่โหลด lowbacterial จะคาดว่าเป็นปัจจุบันในตัวอย่างการประเมิน ความไวต่ำของแบคทีเรียวิธีการศึกษาอาจได้รับผล เช่น แบคทีเรีย ต่ำโหลด การเพิ่มความไวในตัวอย่างทางญาติคาดว่าที่ได้รับเชื้อในปริมาณสูงโหลด อย่างไรก็ตาม ในการเพาะเชื้อแบคทีเรียขนาดกลาง เป็นขั้นตอนที่ต้องใช้เวลาเพื่อให้ได้ชัดเจนการวินิจฉัยที่ช่วยให้มีการเพิ่มจำนวนของปลาที่ติดเชื้อภายในฟาร์ม เทคนิคทางอณูชีววิทยาในการวินิจฉัยโรคนี้ซึ่งได้รับการพัฒนา เช่น เผ่าพันธุ์ - เฉพาะ PCR ซ้อนกัน -เทคนิคและ qpcr ซึ่งให้ความไวสูงและการวินิจฉัยการติดเชื้อ ( Jim é nez et al . , 2011 ; Mata et al . , 2004 ; ซู et al . , 2015 ) จากแถลงการณ์นี้ ความไวของการตรวจหาเชื้อ S . แลคเตียถูกประเมินและพบว่าวิธีนี้ เมื่อเกี่ยวข้องกับที่คนอ่อนไหวน้อยกว่าแบคทีเรียวิทยา ( 44.18 % )ผลที่ได้นี้จะแตกต่างจากที่ของ delamare deboutteville et al . ( 2015 )ที่รายงานว่า PCR assay อ่อนไหวมากกว่าแบคทีเรียสำหรับการวินิจฉัยของ S . แลคเตีย . ลดความไวของวิธี PCR ในปัจจุบันการศึกษาอาจจะเกิดจากแบคทีเรียที่มีอยู่ในเนื้อเยื่อต่ำโหลดตัวอย่างจึงช่วยลดการตรวจหาแบคทีเรีย อย่างไรก็ตาม เมื่อทำการทดสอบโดย qpcr ซึ่งมีความไวมากกว่าปกติPCR , S . แลคเตียที่ตรวจพบใน 41 43 ท้าทายปลา ดังนั้นการ qpcr assay สามารถตรวจหาต่ำ . แลคเตียในเกือบ allnile โหลดปลานิลเนื้อเยื่อประเมิน ( เหนือ ) เท่ากับ 0.22 , ข้อมูลไม่แสดง ) และมีความอ่อนไหวกว่าแบคทีเรียวิทยาและ PCR มาตรฐาน ไม่ว่าของตัวอย่างชนิดที่ใช้ แต่ถ้า qpcr สามารถใช้ได้ในสถานที่ที่ตัวอย่าง nonlethal จะใช้ วิธีการตายจะมีประสิทธิภาพมากขึ้น การศึกษาปัจจุบันเป็นครั้งแรกเพื่อเปรียบเทียบประสิทธิภาพของแบคทีเรีย , PCR และ qpcr สำหรับการวินิจฉัยของ S . แลคเตียในตัวอย่างที่ได้จาก nonlethal การสุ่มตัวอย่าง