Plants were harvested at maize grow

Plants were harvested at maize growth stages V6 (sixth leaf emerged with ligule visible), V12 (twelfth leaf emerged with ligule visible), R3 (milk stage) and R6 (physiological maturity, when 50% of the plants showed black layer formation in the grains from the mid-portion of the ears). At each harvest three neighboring plants were cut at the stem base. The shoots were chopped and oven-dried at 60 °C for 48 h and weighed. Sub-samples were finely ground and digested using H2SO4–H2O2. The N content in plant samples was analyzed using the Kjeldahl method (Nelson and Somers, 1973). The remaining digests were used for analysis of P (vanado-molybdate method) by automated colorimetry and K by flame photometry.

The roots were excavated with a shovel and soils were separated into rhizospheric and bulk soils by a shaking method. In addition, at each harvest four 2-cm-diameter soil cores per plot were sampled and one composite sample was collected. In 2012 and 2013, soil cores to a depth of 20 cm in each plot were sampled. In 2014 soil samples were collected from the top 100 cm of the soil profile (at 20-cm depth intervals) in the inter row. All the visible roots in each soil sample from rhizosphere and bulk soil were picked out by hand. The soil samples were sieved (3 mm) and extracted immediately after transfer to the laboratory with 0.01 mol L−1 CaCl2 solution and analyzed for soil Nmin (NH4+-N + NO3−-N) by continuous flow analysis (TRAACS 2000, Bran and Luebbe, Norderstedt, Germany) (Peng et al., 2013). The remaining soil samples were then air-dried. The soil was extracted with 0.05 mol L−1 NaHCO3 for 1 h and the P concentration was analyzed colorimetrically according to the method of Murphy and Riley (1962). The K concentration was analyzed by flame photometer following extraction with 1 mol L−1 NH4OAC (Walker and Barber, 1962). Soil pH was measured using a glass electrode in a 1:2.5 soil/water (H2O) suspension. SOC was determined using dichromate oxidation (Nelson and Somers, 1982). Urease activity was determined by measuring ammonium released from soil amended with urea (Kandeler and Gerber, 1988). Invertase activity was determined using a sucrose solution as a substrate and incubation before measuring the glucose produced using a colorimetric method (Gopal et al., 2007 and Gu et al., 2009).

Maize grain yield was estimated by harvesting the ears in the central area of the 18.0 m2 (six rows, 5 m length) of maize in each plot to obtain fresh weight. All the kernels were oven dried at 60 °C to constant weight and then the ratio of kernels to ears was determined and kernel moisture was calculated. The final grain yield was adjusted to 14% moisture content basis. The number of grains per spike was determined by counting the grains on every spike from 10 randomly selected plants in each plot before harvest. The thousand-kernel weight (TKW) was determined using the weight of three sets of 500 kernels from each plot.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

พืชเก็บเกี่ยวในระยะเจริญเติบโตของข้าวโพด V6 (หกใบเกิดกับ ligule มองเห็น), V12 (สิบสองใบเกิดกับ ligule มองเห็น), R3 (นมขั้น) และ R6 (ชั้นทางสรีรวิทยาครบ เมื่อ 50% ของพืชพบว่าดำก่อตัวในธัญพืชจากส่วนกลางของหู) เวลาเก็บเกี่ยวแต่ละ พืชใกล้เคียงสามถูกตัดที่ฐานก้าน หน่อไม้สับ และเตาอบแห้งที่ 60 ° C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง และชั่งน้ำหนัก ตัวอย่างย่อยถูกเตรียม และย่อยใช้ H2SO4 – H2O2 เนื้อหา N ในตัวอย่างพืชถูกวิเคราะห์โดยใช้วิธีเจลดาห์ลเมื่อต้องการ (เนลสันและ Somers, 1973) Digests เหลือถูกใช้สำหรับการวิเคราะห์ของ P (vanado molybdate วิธี) โดยอัตโนมัติ colorimetry และ K โดยเสลี่ยงเปลวไฟรากขุด ด้วยจอบ และดินที่ถูกแยกออกเป็นดิน rhizospheric และเป็นกลุ่ม โดยวิธีการสั่น นอกจากนี้ ที่ดิน 2 ซม.เส้นผ่าศูนย์กลางแต่ละเก็บเกี่ยว 4 แกนต่อพล็อตได้ลิ้มลอง และเก็บตัวอย่างรวมหนึ่ง 2012 และ 2013 แกนดินลึก 20 ซม.ในแต่ละพล็อตได้ลิ้มลอง ใน ตัวอย่างดินที่ถูกเก็บรวบรวมจากด้านบนของโปรไฟล์ดิน (ในช่วงเวลาที่ความลึก 20 ซม.) ในระหว่างแถว 100 ซม. มองเห็นรากในแต่ละตัวอย่างดินจากดินไรโซสเฟียร์และจำนวนมากถูกหยิบออกมาด้วยมือ ตัวอย่างดินแหลกลาญ (3 mm) และสกัดทันทีหลังจากโอนย้ายไปยังห้องปฏิบัติการด้วย 0.01 โมล L−1 CaCl2 และวิเคราะห์ดิน Nmin (NH4 + -N + NO3− N) โดยการวิเคราะห์การไหลอย่างต่อเนื่อง (TRAACS 2000 รำ และ Luebbe, Norderstedt เยอรมนี) (Peng et al. 2013) แล้วถูก air-dried ตัวอย่างดินที่เหลือ ดินถูกสกัด ด้วย 0.05 mol L−1 NaHCO3 สำหรับ 1 h และความเข้มข้นของ P  colorimetrically ตามวิธีการของเมอร์ฟี่และไรลีย์ (1962) ความเข้มข้น K ถูกวิเคราะห์ โดยเครื่องวัดความสว่างของเปลวไฟที่ต่อแยก 1 โมล L−1 NH4OAC (Walker และร้านตัดผม 1962) ค่า pH ของดินถูกวัดโดยใช้อิเล็กโทรดแก้วที่ถูกระงับดิน/น้ำ (H2O) 1:2.5 SOC ก็ตั้งใจใช้ออกซิเดชัน dichromate (เนลสันและ Somers, 1982) มีกำหนดกิจกรรมของเอนไซม์ โดยการวัดแอมโมเนียออกจากดินที่แก้ไขกับยูเรีย (Kandeler และ Gerber, 1988) กำหนดกิจกรรม invertase ใช้โซลูชันซูโครสเป็นสารตั้งต้นและบ่มก่อนวัดกลูโคสที่ผลิตโดยใช้วิธีการเทียบเคียง (ผู้ใช้ et al. 2007 และ Gu et al. 2009)ประมาณเม็ดข้าวโพดผลผลิต โดยการเก็บเกี่ยวหูในบริเวณกลางของ 18.0 m2 (หกแถว ยาว 5 ม.) ของข้าวโพดในแต่ละจุดรับน้ำหนักสด เมล็ดทั้งหมดมีเตาอบแห้งที่อุณหภูมิ 60 ° C น้ำหนักคงแล้วกำหนดอัตราส่วนของเมล็ดที่หู และคำนวณความชื้นเคอร์เนล ผลผลิตเม็ดสุดท้ายถูกปรับปรุงการลำดับเนื้อหาความชื้น 14% จำนวนเมล็ดต่อเข็มถูกกำหนด โดยการนับเมล็ดบนทุกเข็มจาก 10 สุ่มเลือกพืชในแต่ละพล็อตก่อนการเก็บเกี่ยว น้ำหนักพันเคอร์เนล (TKW) ที่ถูกกำหนดโดยใช้น้ำหนักของเมล็ด 500 จากพล็อตแต่ละสามชุด

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

พืชที่ถูกเก็บเกี่ยวในการเจริญเติบโตของข้าวโพดขั้นตอน V6 (ใบที่หกโผล่ออกมาด้วย ligule มองเห็นได้), V12 (ใบที่สิบสองโผล่ออกมาด้วย ligule มองเห็นได้), R3 (เวทีนม) และ R6 (สุกแก่ทางสรีรวิทยาเมื่อ 50% ของพืชที่แสดงให้เห็นการก่อตัวของชั้นสีดำใน ธัญพืชจากกลางส่วนหนึ่งของหู) ที่เก็บเกี่ยวแต่ละสามพืชใกล้เคียงถูกตัดที่โคนก้านใบ หน่อถูกสับและเตาอบแห้งที่อุณหภูมิ 60 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมงและชั่งน้ำหนัก ย่อยกลุ่มตัวอย่างเป็นพื้นดินอย่างประณีตและย่อยสลายโดยใช้ H2SO4-H2O2 เนื้อหาที่ไม่มีในตัวอย่างพืชที่ได้รับการวิเคราะห์โดยใช้วิธี Kjeldahl (เนลสันและซอมเมอร์, 1973) ย่อยสลายที่เหลือถูกนำมาใช้สำหรับการวิเคราะห์ P (วิธี vanado-โมลิบ) โดย colorimetry อัตโนมัติและ K โดยเสลี่ยงเปลวไฟ.

รากถูกขุดด้วยจอบและดินถูกแยกออกเป็นดิน rhizospheric และเป็นกลุ่มโดยวิธีการเขย่า นอกจากนี้ในแต่ละเก็บเกี่ยวสี่ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 2 ซมแกนดินต่อแปลงเก็บตัวอย่างและตัวอย่างคอมโพสิตหนึ่งถูกเก็บรวบรวม ในปี 2012 และปี 2013 แกนดินที่ความลึก 20 ซม. ในแต่ละแปลงถูกเก็บตัวอย่าง ในปี 2014 เก็บตัวอย่างดินจากด้านบน 100 ซม. ของโปรไฟล์ดิน (ในช่วงเวลาที่ความลึก 20 ซม.) ในแถวระหว่าง ทั้งหมดรากมองเห็นได้ในแต่ละตัวอย่างดินจากบริเวณรากและดินจำนวนมากถูกหยิบออกมาด้วยมือ กลุ่มตัวอย่างดินร่อน (3 มิลลิเมตร) และสกัดทันทีหลังการถ่ายโอนไปยังห้องปฏิบัติการที่มี 0.01 mol L-1 แก้ปัญหา CaCl2 และวิเคราะห์ดิน nMin (NH4 + -N + NO3 - N) โดยการวิเคราะห์การไหลต่อเนื่อง (TRAACS 2000 รำข้าวและ Luebbe, Norderstedt, เยอรมนี) (Peng et al., 2013) ตัวอย่างดินที่เหลืออยู่แล้วอากาศแห้ง ดินถูกสกัดด้วย 0.05 mol L-1 NaHCO3 เป็นเวลา 1 ชั่วโมงและความเข้มข้นของ P วิเคราะห์ colorimetrically ตามวิธีการของเมอร์ฟี่และไรลีย์ (1962) ความเข้มข้น K ได้รับการวิเคราะห์โดยมาตรวัดไฟต่อไปสกัดด้วย 1 mol L-1 NH4OAC (วอล์คเกอร์และตัดผม, 1962) ค่า pH ของดินได้รับการวัดโดยใช้ขั้วไฟฟ้าแก้วใน 1: / น้ำ (H2O) ระงับ 2.5 ดิน SOC ถูกกำหนดโดยใช้ไดโครเมออกซิเดชัน (เนลสันและซอมเมอร์, 1982) กิจกรรม urease ถูกกำหนดโดยการวัดแอมโมเนียมปล่อยออกมาจากดินที่มีการแก้ไขเพิ่มเติมกับปุ๋ยยูเรีย (Kandeler และ Gerber, 1988) กิจกรรม invertase ถูกกำหนดโดยใช้สารละลายน้ำตาลซูโครสเป็นสารตั้งต้นและบ่มก่อนวัดน้ำตาลกลูโคสที่ผลิตโดยใช้วิธีการสี (โกปาล et al., 2007 Gu et al., 2009).

ผลผลิตข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ที่ได้รับการประเมินโดยการเก็บเกี่ยวหูในภาคกลาง พื้นที่ 18.0 m2 (หกแถวยาว 5 เมตร) ของข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ในแต่ละแปลงจะได้รับน้ำหนักสด เมล็ดทั้งหมดถูกนำมาอบแห้งที่อุณหภูมิ 60 ° C ถึงน้ำหนักคงที่แล้วอัตราส่วนของเมล็ดหูถูกกำหนดและความชื้นเมล็ดที่คำนวณได้ ผลผลิตสุดท้ายที่ถูกปรับให้พื้นฐานความชื้น 14% จำนวนเมล็ดต่อเข็มถูกกำหนดโดยการนับจำนวนเมล็ดในทุกเข็มจาก 10 พืชสุ่มเลือกในแต่ละแปลงก่อนการเก็บเกี่ยว พันเคอร์เนลน้ำหนัก (TKW) ถูกกำหนดโดยใช้น้ำหนักของสามชุด 500 เมล็ดจากแต่ละล็อต

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

พืชที่ถูกเก็บเกี่ยวที่ระยะการเจริญเติบโตของข้าวโพด V6 ( ใบที่หกเกิดขึ้น ด้วยความเอื้อเฟื้อเกื้อกูลมองเห็น ) , V12 ( 12 ใบเกิดขึ้น ด้วยความเอื้อเฟื้อเกื้อกูลมองเห็น ) R3 ( ระยะน้ำนม ) และ R6 ( สรีรวิทยา ) เมื่อ 50% ของพืชที่พบชั้นสีดำก่อตัวในธัญพืชจากส่วนกลางของหู ) ในการเก็บเกี่ยวแต่ละสามเพื่อนบ้านปลูกตัดก้านดอกฐาน ยอดสับและเตาอบ อบแห้งที่อุณหภูมิ 60 องศา C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง และชั่งน้ำหนัก ตัวอย่างย่อยที่ถูกบดละเอียดและย่อยโดยใช้กรดซัลฟิวริกและแบตเตอรี่ . N เนื้อหาในตัวอย่างพืชมาวิเคราะห์โดยใช้วิธีเจลดาห์ล ( Nelson และ Somers , 1973 ) ที่ย่อยสลายเหลือวิเคราะห์ของ P ( vanado โมลิบเดตวิธี ) โดยอัตโนมัติและเม็ด K ด้วยเปลวไฟแสง .รากถูกขุดด้วยพลั่วและดินออกเป็น rhizospheric และเป็นกลุ่มดินโดยวิธีเขย่า . นอกจากนี้ ในการเก็บเกี่ยวแต่ละสี่ 2-cm-diameter ดินแกนต่อแปลง จำนวนหนึ่ง คอมโพสิตและการเก็บตัวอย่าง . ในปี 2012 และ 2013 ดินแกนให้ลึก 20 ซม. ในแต่ละแปลง จำนวน . ในปี 2014 โดยเก็บตัวอย่างดินจากด้านบน 100 ซม. ของดิน ( ที่ 20 เซนติเมตร ช่วง ) ระหว่างแถว ทั้งหมดที่เห็นในตัวอย่างดินจากรากแต่ละรากและดินขนาดใหญ่ถูกหยิบออกมาจากมือ ตัวอย่างดินมีขนาด 3 มม. ) และสกัดทันที หลังจากที่ย้ายไปปฏิบัติการกับ 0.01 mol − 1 ลิตรผลิตโซลูชั่นและวิเคราะห์ดิน nmin ( NH4 + - + 3 − - n ) โดยการวิเคราะห์การไหลอย่างต่อเนื่อง ( traacs 2000 แบรนและลู๊บนอร์เดอร์ชเต็ดท์ , เยอรมนี , ) ( Peng et al . , 2013 ) อีกตัวอย่างดินและอากาศแห้ง ดินถูกสกัดด้วย 0.05 mol − 1 ลิตรโซเดียมไบคาร์บอเนต 1 H และ P colorimetrically สมาธิวิเคราะห์ตามวิธีการของ เมอร์ฟี่ และ ไรลี่ย์ ( 1962 ) ความเข้มข้นของ K โดยใช้เปลวไฟ , ต่อไปนี้การสกัดด้วย 1 mol − 1 ( L nh4oac วอล์คเกอร์และช่างตัดผม , 1962 ) ดิน คือการวัดโดยใช้ขั้วไฟฟ้าแก้วใน 1:2.5 / ดิน น้ำ ( H2O ) ระงับ สำหรับใช้วิเคราะห์ใช้ปฏิกิริยาออกซิเดชัน ( Nelson และ Somers , 1982 ) กิจกรรมที่ถูกกำหนดโดยวัดที่มีแอมโมเนียออกจากดินที่ผสมกับยูเรีย ( และ kandeler Gerber , 1988 ) กิจกรรมเย็นถูกกำหนดโดยใช้สารละลายซูโครสเป็นสารตั้งต้น และฟักตัวก่อนวัดกลูโคสที่ผลิตโดยใช้พระชานุ ( Gopal et al . , 2007 และกู et al . , 2009 )ข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ ผลผลิตประมาณโดยการเก็บเกี่ยวหูในพื้นที่ภาคกลางของ 18.0 M2 ( หกแถว 5 เมตรความยาวของข้าวโพดในแต่ละแปลง เพื่อให้ได้น้ำหนักสด เมล็ดทั้งหมดเป็นเตาอบ อบแห้งที่อุณหภูมิ 60 องศา C น้ำหนักคงที่แล้ว อัตราส่วนของเมล็ดหูได้มุ่งมั่นและความชื้นเมล็ดคือการคำนวณ ส่วนผลผลิตสุดท้ายคือ ปรับให้มีความชื้นร้อยละ 14 โดย จำนวนเม็ดต่อชั่วคราวถูกกำหนดโดยการนับเมล็ดข้าวทุกเข็มจาก 10 สุ่มพืชในแต่ละแปลงก่อนการเก็บเกี่ยว พันเมล็ด น้ำหนัก ( tkw ) คือการพิจารณาน้ำหนักของชุด 3 500 เมล็ดจากแต่ละแปลง