- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2.4. Analytical methodsTo determine
2.4. Analytical methods
To determine total cell count the samples were serially diluted with sterile saline solution (0.85% w/v NaCl). The appropriately diluted samples (0.1 ml) were plated and incubated at 30 °C for 24 h to form fully developed colonies. The cell count was estimated by counting colonies grown on nutrient agar medium using a haemacytometer [25]. For all counts, the average of at least three replicate plates was used for each tested dilution. In order to establish the reliability and reproducibility of the plate count technique, 10 independent samples were drawn (at the same time) from the shake flask experiment and were serially diluted and plated. Each dilution was plated in three different plates and the colonies were counted and the standard deviation was calculated using Microsoft Excel's built-in STDEV function (“non-biased” or “n−1” method). The standard deviation was 6%.
The wastewater characteristics such as pH, suspended solids (SS), MLSS, COD ammonia were analyzed following standard methods [26] and the cyanide content was analyzed using a modified ninhydrin method as follows [27]: wastewater sample was centrifuged at 6200 rpm, for 5 min. Then, 2 ml of supernatant was mixed with 2 ml ninhydrin solution. After 10 min incubation at room temperature, the absorbance was measured at 485 nm using spectrophotometer (UV-1201 Shimadzu). Samples were analyzed in triplicates. Standard deviations were less than 5% of the average.
3. Results and discussion
3.1. Characteristics of cassava mill wastewater
Table 1 shows the composition of cassava wastewater. The high organic content of 16,000 mg l−1 in the wastewater found in this study is in agreement with those found typically in large scale starch processing industries [28] and [29]. These organic pollutants originate from the washing and extracting processes in the tapioca industry [30] and [31]. In order to produce 1 ton of starch, a tapioca processing factory discharges about 12 m3 of wastewater containing 6125–13,500 mg l−1 (COD), 1466–7600 mg l−1 (SS) and pH 4.5–5.0 [32] and [33]. These values indicate that the wastewater is highly biodegradable and therefore, there is no need for the supply of external organic carbon source for cyanide-degrading microoganisms. The wastewater pH was low (pH 5.5) and probably arises from the acidification process of starch due to organic acid production [34]. The low carbohydrate content (16 mg l−1) of the wastewater was in agreement with this observation. A high cyanide concentration of 86 mg l−1 was observed in this study comparing the other cassava mill wastewater studies (Table 1) and this could arise from the different variety of cassava that is being treated. Elsewhere, cyanide concentration in cassava mill wastewater was reported contain up to 200 mg l−1 depending on the cyanoglycoside content of the cassava varieties
To determine total cell count the samples were serially diluted with sterile saline solution (0.85% w/v NaCl). The appropriately diluted samples (0.1 ml) were plated and incubated at 30 °C for 24 h to form fully developed colonies. The cell count was estimated by counting colonies grown on nutrient agar medium using a haemacytometer [25]. For all counts, the average of at least three replicate plates was used for each tested dilution. In order to establish the reliability and reproducibility of the plate count technique, 10 independent samples were drawn (at the same time) from the shake flask experiment and were serially diluted and plated. Each dilution was plated in three different plates and the colonies were counted and the standard deviation was calculated using Microsoft Excel's built-in STDEV function (“non-biased” or “n−1” method). The standard deviation was 6%.
The wastewater characteristics such as pH, suspended solids (SS), MLSS, COD ammonia were analyzed following standard methods [26] and the cyanide content was analyzed using a modified ninhydrin method as follows [27]: wastewater sample was centrifuged at 6200 rpm, for 5 min. Then, 2 ml of supernatant was mixed with 2 ml ninhydrin solution. After 10 min incubation at room temperature, the absorbance was measured at 485 nm using spectrophotometer (UV-1201 Shimadzu). Samples were analyzed in triplicates. Standard deviations were less than 5% of the average.
3. Results and discussion
3.1. Characteristics of cassava mill wastewater
Table 1 shows the composition of cassava wastewater. The high organic content of 16,000 mg l−1 in the wastewater found in this study is in agreement with those found typically in large scale starch processing industries [28] and [29]. These organic pollutants originate from the washing and extracting processes in the tapioca industry [30] and [31]. In order to produce 1 ton of starch, a tapioca processing factory discharges about 12 m3 of wastewater containing 6125–13,500 mg l−1 (COD), 1466–7600 mg l−1 (SS) and pH 4.5–5.0 [32] and [33]. These values indicate that the wastewater is highly biodegradable and therefore, there is no need for the supply of external organic carbon source for cyanide-degrading microoganisms. The wastewater pH was low (pH 5.5) and probably arises from the acidification process of starch due to organic acid production [34]. The low carbohydrate content (16 mg l−1) of the wastewater was in agreement with this observation. A high cyanide concentration of 86 mg l−1 was observed in this study comparing the other cassava mill wastewater studies (Table 1) and this could arise from the different variety of cassava that is being treated. Elsewhere, cyanide concentration in cassava mill wastewater was reported contain up to 200 mg l−1 depending on the cyanoglycoside content of the cassava varieties
0/5000
2.4 การวิเคราะห์วิธี
กำหนดเซลล์รวม ตัวอย่างถูก serially ผสมกับใส่เกลือ (0.85% w/v NaCl) ตัวอย่างที่เหมาะสมแตกออก (0.1 มล.) ถูกชุบ และ incubated ที่ 30 ° C ใน 24 ชมแบบอาณานิคมพัฒนาเต็ม จำนวนเซลล์ที่ประเมิน โดยนับอาณานิคมปลูกใน agar ธาตุอาหารปานกลางใช้ haemacytometer [25] สำหรับการตรวจนับทั้งหมด ค่าเฉลี่ยของแผ่นน้อย 3 replicate ถูกใช้สำหรับเจือจางการทดสอบแต่ละ เพื่อสร้างความน่าเชื่อถือและ reproducibility ของเทคนิคนับจาน 10 ตัวอย่างอิสระออก (พร้อมกัน) จากการทดลองการสั่นหนาว และ serially ผสม และชุบ เจือจางแต่ละถูกชุบในแผ่นแตกต่างกันสาม และอาณานิคมถูกนับ และคำนวณส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานโดยใช้ฟังก์ชัน STDEV ภายใน Microsoft Excel (วิธี "ไม่ใช่ลำเอียง" หรือ "n−1") ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานเป็น 6%.
The น้ำเสียลักษณะเช่น pH ระงับของแข็ง (SS), MLSS แอมโมเนีย COD ได้วิเคราะห์ตามวิธีการมาตรฐาน [26] และเนื้อหาไซยาไนด์ถูกวิเคราะห์โดยใช้วิธี ninhydrin แก้ไขได้ดังนี้ [27]: ตัวอย่างน้ำเสียถูก centrifuged ที่ 6200 rpm สำหรับ 5 นาที แล้ว 2 ml ของ supernatant ถูกผสม ด้วยโซลูชั่น ninhydrin 2 ml หลังจาก 10 นาทีการบ่มที่อุณหภูมิห้อง absorbance ที่ถูกวัดที่ 485 nm โดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-1201 Shimadzu) ตัวอย่างที่วิเคราะห์ใน triplicates ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานไม่น้อยกว่า 5% ของค่าเฉลี่ย
3 ผลลัพธ์และสนทนา
3.1 ลักษณะของน้ำทิ้งโรงงานมันสำปะหลัง
ตารางที่ 1 แสดงส่วนประกอบของน้ำเสียมันสำปะหลัง เนื้อหาอินทรีย์สูงของ 16l−1 000 มิลลิกรัมในน้ำเสียที่พบในการศึกษานี้จะยังคงที่พบโดยปกติในแป้งขนาดใหญ่ประมวลผลอุตสาหกรรม [28] [29] สารมลพิษอินทรีย์เหล่านี้มาจากกระบวนการผ้า และขยายในอุตสาหกรรมแป้งมันสำปะหลัง [30] [31] การผลิตแป้ง 1 ตัน โรงงานแปรรูปมันสำปะหลัง discharges m3 ประมาณ 12 ประกอบด้วย 6125-13 น้ำเสียl−1 500 มิลลิกรัม (COD), l−1 mg 1466-7600 (SS) และค่า pH 4.5 – 5.0 [32] และ [33] ค่าเหล่านี้บ่งชี้ว่า น้ำเสียถูกสลายสูง และดังนั้น ไม่จำเป็นสำหรับการจัดหาแหล่งคาร์บอนภายนอกอินทรีย์ไซยาไนด์ลด microoganisms ค่า pH ของน้ำเสียได้ต่ำ (pH 5.5) และอาจจะเกิดขึ้นจากกระบวนการยูแป้งเนื่องจากผลิตกรดอินทรีย์ [34] เนื้อหาคาร์โบไฮเดรตต่ำ (l−1 16 mg) น้ำเสียที่ยังคงสังเกตนี้ได้ ความเข้มข้นสูงไซยาไนด์ของ l−1 86 มิลลิกรัมถูกสังเกตในการศึกษานี้เปรียบเทียบอื่น ๆ มันสำปะหลังโรงงานน้ำเสียศึกษา (ตารางที่ 1) และนี้อาจเกิดขึ้นจากมันสำปะหลังที่ไม่ได้รับการรักษาที่แตกต่างหลากหลาย อื่น ๆ ความเข้มข้นของไซยาไนด์ในน้ำทิ้งโรงงานมันสำปะหลังรายงานประกอบด้วย 200 มิลลิกรัม l−1 ขึ้นอยู่กับเนื้อหา cyanoglycoside พันธุ์มันสำปะหลัง
กำหนดเซลล์รวม ตัวอย่างถูก serially ผสมกับใส่เกลือ (0.85% w/v NaCl) ตัวอย่างที่เหมาะสมแตกออก (0.1 มล.) ถูกชุบ และ incubated ที่ 30 ° C ใน 24 ชมแบบอาณานิคมพัฒนาเต็ม จำนวนเซลล์ที่ประเมิน โดยนับอาณานิคมปลูกใน agar ธาตุอาหารปานกลางใช้ haemacytometer [25] สำหรับการตรวจนับทั้งหมด ค่าเฉลี่ยของแผ่นน้อย 3 replicate ถูกใช้สำหรับเจือจางการทดสอบแต่ละ เพื่อสร้างความน่าเชื่อถือและ reproducibility ของเทคนิคนับจาน 10 ตัวอย่างอิสระออก (พร้อมกัน) จากการทดลองการสั่นหนาว และ serially ผสม และชุบ เจือจางแต่ละถูกชุบในแผ่นแตกต่างกันสาม และอาณานิคมถูกนับ และคำนวณส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานโดยใช้ฟังก์ชัน STDEV ภายใน Microsoft Excel (วิธี "ไม่ใช่ลำเอียง" หรือ "n−1") ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานเป็น 6%.
The น้ำเสียลักษณะเช่น pH ระงับของแข็ง (SS), MLSS แอมโมเนีย COD ได้วิเคราะห์ตามวิธีการมาตรฐาน [26] และเนื้อหาไซยาไนด์ถูกวิเคราะห์โดยใช้วิธี ninhydrin แก้ไขได้ดังนี้ [27]: ตัวอย่างน้ำเสียถูก centrifuged ที่ 6200 rpm สำหรับ 5 นาที แล้ว 2 ml ของ supernatant ถูกผสม ด้วยโซลูชั่น ninhydrin 2 ml หลังจาก 10 นาทีการบ่มที่อุณหภูมิห้อง absorbance ที่ถูกวัดที่ 485 nm โดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-1201 Shimadzu) ตัวอย่างที่วิเคราะห์ใน triplicates ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานไม่น้อยกว่า 5% ของค่าเฉลี่ย
3 ผลลัพธ์และสนทนา
3.1 ลักษณะของน้ำทิ้งโรงงานมันสำปะหลัง
ตารางที่ 1 แสดงส่วนประกอบของน้ำเสียมันสำปะหลัง เนื้อหาอินทรีย์สูงของ 16l−1 000 มิลลิกรัมในน้ำเสียที่พบในการศึกษานี้จะยังคงที่พบโดยปกติในแป้งขนาดใหญ่ประมวลผลอุตสาหกรรม [28] [29] สารมลพิษอินทรีย์เหล่านี้มาจากกระบวนการผ้า และขยายในอุตสาหกรรมแป้งมันสำปะหลัง [30] [31] การผลิตแป้ง 1 ตัน โรงงานแปรรูปมันสำปะหลัง discharges m3 ประมาณ 12 ประกอบด้วย 6125-13 น้ำเสียl−1 500 มิลลิกรัม (COD), l−1 mg 1466-7600 (SS) และค่า pH 4.5 – 5.0 [32] และ [33] ค่าเหล่านี้บ่งชี้ว่า น้ำเสียถูกสลายสูง และดังนั้น ไม่จำเป็นสำหรับการจัดหาแหล่งคาร์บอนภายนอกอินทรีย์ไซยาไนด์ลด microoganisms ค่า pH ของน้ำเสียได้ต่ำ (pH 5.5) และอาจจะเกิดขึ้นจากกระบวนการยูแป้งเนื่องจากผลิตกรดอินทรีย์ [34] เนื้อหาคาร์โบไฮเดรตต่ำ (l−1 16 mg) น้ำเสียที่ยังคงสังเกตนี้ได้ ความเข้มข้นสูงไซยาไนด์ของ l−1 86 มิลลิกรัมถูกสังเกตในการศึกษานี้เปรียบเทียบอื่น ๆ มันสำปะหลังโรงงานน้ำเสียศึกษา (ตารางที่ 1) และนี้อาจเกิดขึ้นจากมันสำปะหลังที่ไม่ได้รับการรักษาที่แตกต่างหลากหลาย อื่น ๆ ความเข้มข้นของไซยาไนด์ในน้ำทิ้งโรงงานมันสำปะหลังรายงานประกอบด้วย 200 มิลลิกรัม l−1 ขึ้นอยู่กับเนื้อหา cyanoglycoside พันธุ์มันสำปะหลัง
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.4. Analytical methods
To determine total cell count the samples were serially diluted with sterile saline solution (0.85% w/v NaCl). The appropriately diluted samples (0.1 ml) were plated and incubated at 30 °C for 24 h to form fully developed colonies. The cell count was estimated by counting colonies grown on nutrient agar medium using a haemacytometer [25]. For all counts, the average of at least three replicate plates was used for each tested dilution. In order to establish the reliability and reproducibility of the plate count technique, 10 independent samples were drawn (at the same time) from the shake flask experiment and were serially diluted and plated. Each dilution was plated in three different plates and the colonies were counted and the standard deviation was calculated using Microsoft Excel's built-in STDEV function (“non-biased” or “n−1” method). The standard deviation was 6%.
The wastewater characteristics such as pH, suspended solids (SS), MLSS, COD ammonia were analyzed following standard methods [26] and the cyanide content was analyzed using a modified ninhydrin method as follows [27]: wastewater sample was centrifuged at 6200 rpm, for 5 min. Then, 2 ml of supernatant was mixed with 2 ml ninhydrin solution. After 10 min incubation at room temperature, the absorbance was measured at 485 nm using spectrophotometer (UV-1201 Shimadzu). Samples were analyzed in triplicates. Standard deviations were less than 5% of the average.
3. Results and discussion
3.1. Characteristics of cassava mill wastewater
Table 1 shows the composition of cassava wastewater. The high organic content of 16,000 mg l−1 in the wastewater found in this study is in agreement with those found typically in large scale starch processing industries [28] and [29]. These organic pollutants originate from the washing and extracting processes in the tapioca industry [30] and [31]. In order to produce 1 ton of starch, a tapioca processing factory discharges about 12 m3 of wastewater containing 6125–13,500 mg l−1 (COD), 1466–7600 mg l−1 (SS) and pH 4.5–5.0 [32] and [33]. These values indicate that the wastewater is highly biodegradable and therefore, there is no need for the supply of external organic carbon source for cyanide-degrading microoganisms. The wastewater pH was low (pH 5.5) and probably arises from the acidification process of starch due to organic acid production [34]. The low carbohydrate content (16 mg l−1) of the wastewater was in agreement with this observation. A high cyanide concentration of 86 mg l−1 was observed in this study comparing the other cassava mill wastewater studies (Table 1) and this could arise from the different variety of cassava that is being treated. Elsewhere, cyanide concentration in cassava mill wastewater was reported contain up to 200 mg l−1 depending on the cyanoglycoside content of the cassava varieties
To determine total cell count the samples were serially diluted with sterile saline solution (0.85% w/v NaCl). The appropriately diluted samples (0.1 ml) were plated and incubated at 30 °C for 24 h to form fully developed colonies. The cell count was estimated by counting colonies grown on nutrient agar medium using a haemacytometer [25]. For all counts, the average of at least three replicate plates was used for each tested dilution. In order to establish the reliability and reproducibility of the plate count technique, 10 independent samples were drawn (at the same time) from the shake flask experiment and were serially diluted and plated. Each dilution was plated in three different plates and the colonies were counted and the standard deviation was calculated using Microsoft Excel's built-in STDEV function (“non-biased” or “n−1” method). The standard deviation was 6%.
The wastewater characteristics such as pH, suspended solids (SS), MLSS, COD ammonia were analyzed following standard methods [26] and the cyanide content was analyzed using a modified ninhydrin method as follows [27]: wastewater sample was centrifuged at 6200 rpm, for 5 min. Then, 2 ml of supernatant was mixed with 2 ml ninhydrin solution. After 10 min incubation at room temperature, the absorbance was measured at 485 nm using spectrophotometer (UV-1201 Shimadzu). Samples were analyzed in triplicates. Standard deviations were less than 5% of the average.
3. Results and discussion
3.1. Characteristics of cassava mill wastewater
Table 1 shows the composition of cassava wastewater. The high organic content of 16,000 mg l−1 in the wastewater found in this study is in agreement with those found typically in large scale starch processing industries [28] and [29]. These organic pollutants originate from the washing and extracting processes in the tapioca industry [30] and [31]. In order to produce 1 ton of starch, a tapioca processing factory discharges about 12 m3 of wastewater containing 6125–13,500 mg l−1 (COD), 1466–7600 mg l−1 (SS) and pH 4.5–5.0 [32] and [33]. These values indicate that the wastewater is highly biodegradable and therefore, there is no need for the supply of external organic carbon source for cyanide-degrading microoganisms. The wastewater pH was low (pH 5.5) and probably arises from the acidification process of starch due to organic acid production [34]. The low carbohydrate content (16 mg l−1) of the wastewater was in agreement with this observation. A high cyanide concentration of 86 mg l−1 was observed in this study comparing the other cassava mill wastewater studies (Table 1) and this could arise from the different variety of cassava that is being treated. Elsewhere, cyanide concentration in cassava mill wastewater was reported contain up to 200 mg l−1 depending on the cyanoglycoside content of the cassava varieties
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.4 . วิธีการวิเคราะห์
หาจำนวนเซลล์ทั้งหมดนับเป็นเจือจางด้วยน้ำเกลือปลอดเชื้อ ( 0.85 % W / V NaCl ) ความเหมาะสมเจือจางตัวอย่าง ( 0.1 มิลลิลิตร และชุบ บ่มที่ 30 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงเพื่อแบบฟอร์มการพัฒนาอย่างเต็มที่อาณานิคม เซลล์นับประมาณ โดยการนับโคโลนีบนอาหารวุ้นสารอาหารที่ปลูกโดยใช้ haemacytometer [ 25 ] สำหรับการนับทั้งหมดเฉลี่ยอย่างน้อย 3 ทำซ้ำแผ่นใช้สำหรับแต่ละการทดสอบเจือจาง เพื่อสร้างความน่าเชื่อถือและกระชับแผ่นนับเทคนิค 10 ตัวอย่างอิสระ สุ่ม ( ในเวลาเดียวกัน ) จากการเขย่าขวดทดลอง และยังเป็นเจือจาง และชุบแต่ละ dilution คือชุบสามจานที่แตกต่างกันและอาณานิคมถูกนับและค่าส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานคำนวณได้โดยใช้ Microsoft Excel ฟังก์ชัน built-in STDDEV ( " ไม่มีอคติ " หรือ " n − 1 วิธี ) ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานเท่ากับ 6 %
น้ำเสียลักษณะ เช่น pH , ของแข็งแขวนลอย ( SS ) 2 , ,ค่าแอมโมเนียวิเคราะห์ตามวิธีการมาตรฐาน [ 26 ] และปริมาณไซยาไนด์ถูกวิเคราะห์โดยใช้วิธีที่ดัดแปลง ninhydrin ดังนี้ [ 27 ] : น้ำเสียตัวอย่างระดับที่ 6200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาที จากนั้นนำ 2 มิลลิลิตรผสมกับ 2 ml ninhydrin โซลูชั่น หลังจาก 10 นาทีบ่มที่อุณหภูมิห้อง นวัดที่ 465 นาโนเมตรโดยใช้ Spectrophotometer ( uv-1201 Shimadzu )วิเคราะห์ 3 ซ้ำ . ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานมีค่าน้อยกว่า 5% ของค่าเฉลี่ย .
3 ผลและการอภิปราย
3.1 . ลักษณะของน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลัง
ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบของมันสำปะหลัง น้ำเสีย เนื้อหาอินทรีย์สูง 16000 mg L − 1 ในน้ำเสียที่พบในการศึกษานี้สอดคล้องกับที่พบโดยทั่วไปในขนาดใหญ่ อุตสาหกรรมการแปรรูปแป้ง [ 28 ] และ [ 29 ] สารมลพิษเหล่านี้มาจากการแยกกระบวนการในอุตสาหกรรมแป้งมันสำปะหลัง [ 30 ] และ [ 31 ] เพื่อผลิต 1 ตันของแป้ง , แป้งมันสำปะหลังแปรรูป โรงงานปล่อยน้ำเสียที่มีประมาณ 12 m3 6125 – 13500 mg L − 1 ( COD ) – 7600 mg L − 1 ตัว ( SS ) และ pH 4.5 - 5.0 [ 32 ] [ 33 ] ค่าเหล่านี้บ่งชี้ว่า น้ำเป็นอย่างสูงที่ย่อยสลายได้ ดังนั้น จึงไม่ต้องมีการจัดหาแหล่งคาร์บอนอินทรีย์ภายนอกไซยาไนด์สลาย microoganisms . น้ำเสีย pH ต่ำ ( pH 5.5 ) และอาจเกิดจากกระบวนการทางแป้ง เนื่องจากการผลิตสินค้าเกษตรอินทรีย์กรด [ 34 ]เนื้อหาคาร์โบไฮเดรตต่ำ ( 16 mg L − 1 ) ของน้ำเสียในข้อตกลงกับการสังเกตนี้ ความเข้มข้นของไซยาไนด์สูง 86 mg L − 1 ) ในการศึกษาเปรียบเทียบอื่น ๆน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลังการศึกษา ( ตารางที่ 1 ) และนี้อาจเกิดขึ้นจากหลากหลายแตกต่างกันของมันสำปะหลังที่มีการรักษา อื่น ๆความเข้มข้นของไซยาไนด์ในน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลัง มีรายงานว่า มีถึง 200 mg L − 1 ขึ้นอยู่กับ cyanoglycoside ปลูกมันสำปะหลังพันธุ์
หาจำนวนเซลล์ทั้งหมดนับเป็นเจือจางด้วยน้ำเกลือปลอดเชื้อ ( 0.85 % W / V NaCl ) ความเหมาะสมเจือจางตัวอย่าง ( 0.1 มิลลิลิตร และชุบ บ่มที่ 30 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงเพื่อแบบฟอร์มการพัฒนาอย่างเต็มที่อาณานิคม เซลล์นับประมาณ โดยการนับโคโลนีบนอาหารวุ้นสารอาหารที่ปลูกโดยใช้ haemacytometer [ 25 ] สำหรับการนับทั้งหมดเฉลี่ยอย่างน้อย 3 ทำซ้ำแผ่นใช้สำหรับแต่ละการทดสอบเจือจาง เพื่อสร้างความน่าเชื่อถือและกระชับแผ่นนับเทคนิค 10 ตัวอย่างอิสระ สุ่ม ( ในเวลาเดียวกัน ) จากการเขย่าขวดทดลอง และยังเป็นเจือจาง และชุบแต่ละ dilution คือชุบสามจานที่แตกต่างกันและอาณานิคมถูกนับและค่าส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานคำนวณได้โดยใช้ Microsoft Excel ฟังก์ชัน built-in STDDEV ( " ไม่มีอคติ " หรือ " n − 1 วิธี ) ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานเท่ากับ 6 %
น้ำเสียลักษณะ เช่น pH , ของแข็งแขวนลอย ( SS ) 2 , ,ค่าแอมโมเนียวิเคราะห์ตามวิธีการมาตรฐาน [ 26 ] และปริมาณไซยาไนด์ถูกวิเคราะห์โดยใช้วิธีที่ดัดแปลง ninhydrin ดังนี้ [ 27 ] : น้ำเสียตัวอย่างระดับที่ 6200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาที จากนั้นนำ 2 มิลลิลิตรผสมกับ 2 ml ninhydrin โซลูชั่น หลังจาก 10 นาทีบ่มที่อุณหภูมิห้อง นวัดที่ 465 นาโนเมตรโดยใช้ Spectrophotometer ( uv-1201 Shimadzu )วิเคราะห์ 3 ซ้ำ . ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานมีค่าน้อยกว่า 5% ของค่าเฉลี่ย .
3 ผลและการอภิปราย
3.1 . ลักษณะของน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลัง
ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบของมันสำปะหลัง น้ำเสีย เนื้อหาอินทรีย์สูง 16000 mg L − 1 ในน้ำเสียที่พบในการศึกษานี้สอดคล้องกับที่พบโดยทั่วไปในขนาดใหญ่ อุตสาหกรรมการแปรรูปแป้ง [ 28 ] และ [ 29 ] สารมลพิษเหล่านี้มาจากการแยกกระบวนการในอุตสาหกรรมแป้งมันสำปะหลัง [ 30 ] และ [ 31 ] เพื่อผลิต 1 ตันของแป้ง , แป้งมันสำปะหลังแปรรูป โรงงานปล่อยน้ำเสียที่มีประมาณ 12 m3 6125 – 13500 mg L − 1 ( COD ) – 7600 mg L − 1 ตัว ( SS ) และ pH 4.5 - 5.0 [ 32 ] [ 33 ] ค่าเหล่านี้บ่งชี้ว่า น้ำเป็นอย่างสูงที่ย่อยสลายได้ ดังนั้น จึงไม่ต้องมีการจัดหาแหล่งคาร์บอนอินทรีย์ภายนอกไซยาไนด์สลาย microoganisms . น้ำเสีย pH ต่ำ ( pH 5.5 ) และอาจเกิดจากกระบวนการทางแป้ง เนื่องจากการผลิตสินค้าเกษตรอินทรีย์กรด [ 34 ]เนื้อหาคาร์โบไฮเดรตต่ำ ( 16 mg L − 1 ) ของน้ำเสียในข้อตกลงกับการสังเกตนี้ ความเข้มข้นของไซยาไนด์สูง 86 mg L − 1 ) ในการศึกษาเปรียบเทียบอื่น ๆน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลังการศึกษา ( ตารางที่ 1 ) และนี้อาจเกิดขึ้นจากหลากหลายแตกต่างกันของมันสำปะหลังที่มีการรักษา อื่น ๆความเข้มข้นของไซยาไนด์ในน้ำเสียโรงงานมันสำปะหลัง มีรายงานว่า มีถึง 200 mg L − 1 ขึ้นอยู่กับ cyanoglycoside ปลูกมันสำปะหลังพันธุ์
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- โล่สีแดงประดับจันทร์เสี้ยวและกลุ่มดาว ๕
- ฉันแค่ส่งสัย
- Negative
- ไม่ติดค้างกัน
- ริฮานนาเป็นนักร้องชื่อดังของอเมริกา ที่โ
- ฉํนและครอบครัวได้ไปเที่ยวจังหวัดตราดซึ่ง
- But i risk loosing you even as friend if
- Ok. i think we can chating again. N hope
- ความแน่นอนคือความไม่แน่นอน
- Goodbye xD see u later
- เป็นการเปลี่ยรแปลงชีวิตครั้งยิ่งใหญ่ของฉ
- Grain yield
- Assist customers with returns, purchasin
- คุณทานข้าวหรือยัง
- Another instance of health care are such
- หลานชื่อปุน
- ราชภัฏ
- สิ่งที่แรกที่อยากได้คือโปรชัวร์เพราะว่าจ
- คุณปู่ช่วยฉันตกแต่งห้องครัว
- ฉันรู้ว่าคุณทำงานหนัก โปรดระมัดระวัง และ
- มูลค่าหุ้นละ 100
- I love to be in relation with old lady
- bird feed
- Good morning Pongsiri Kindly forward you
