planted in each furrow. Before cove

planted in each furrow. Before covering the furrow, 1 g of teliospores
of S. reilianum prepared in soil (30.5 g of teliospores/kg of soil)
was added to the furrow over the seed.
Irrigation was applied monthly. The herbicides Marvel (3,6-
dichloro-2-methoxybenzoic acid and 6-chloro-N-ethyl-N-isopropyl-
1,3,5-triazine-2,4-diamine), were applied after the first irrigation
at a dose of 2 L/ha.
At 30 days, the plants were thinned to a uniform population of
112 per plot, giving a population density of 72,500 plants/ha. Disease
assessment was done at harvest using the methodology proposed
by Perez and Bobadilla (2004). The total number of plants
and the number of sick plants were quantified after examining
the heads and ears for the presence of smut. The values ascertained
were used to determine the Smut Incidence Percentage (SIP) and
the Treatment Efficiency Percentage (TEP) using the following
formulas:
SIP ¼ ðNumber of diseased plants=Total number of plantsÞ
ð100%Þ
TEP ¼ ½ðSIP Control  SIP Treatment=SIP TreatmentÞð100%Þ
To determine Potential and Real Yields, the total number of ears
and the quantity of sick ears from the 2 central furrows of each plot
were counted. Of those, 22 were taken at random and weighed,
then a sub-sample of 5 ears was weighed and shelled. Seed moisture
was determined using a John Deere Brand Grain Moisture Tester,
and this value and the recorded weight were used to calculate
the shelled factor (SF) using the following formula:
SF ¼ ðWeight of ker nels from 5 ears=Total weight of 5 earsÞ:
With these data, Potential and Real Yields (PY and RY, respectively)
were calculated using these formulas:
PY ¼ ðWÞðTÞ½ð100  HPGÞ=86ðSFÞð1000=GÞ
RY ¼ ðWÞðT  CÞ½ð100  HPGÞ=86ðSFÞð1000=GÞ
where W= average weight of 22 ears (kg), T = total number of ears,
C = number of diseased ears, HPG = Humidity Percentage of Kernels,
86 = Standardized yield factor at 14% humidity, SF = shelled factor,
and G = furrow width (0.8 m).
To determine the Increase in Yield (IY) the following formula
was used:
IY ¼ 100  ½ðPY or RY without B: subtilis=
PY or RY with B: subtilisÞð100%Þ
Having ascertained the Potential and Real Yield data, the Yield
Decrease Percentage (YDP) was calculated using the formula:
YDP ¼ ðPY  RY=PYÞð100%Þ.
2.5. Statistical analysis
With the data obtained from the analysis of variance (ANOVA) it
was possible to determine the acceptance or rejection of the null
and alternative hypotheses. The test was performed with an a
value of 0.05.
3. Results
3.1. Selection of B. subtilis strains with anti-fungal activity against S.
reilianum
Of the five strains of B. subtilis (13, 35, 55, 135 and 160) tested to
evaluate their degree of anti-fungal activity against S. reilianum,
only the 135 and 160 strains inhibited the development of the fungus
in vitro (Fig. 1).
Different extracellular filtrates were obtained from the 135 and
160 strains as described in Section 2, at 12, 24 and 60 h, which correspond
to the logarithmic early stationary, and late stationary
phases, respectively. The filtrates obtained inhibited the growth
of the fungus (Fig. 2). The samples with the highest activity were
obtained from strain 160 in the stationary phase (Table 1).
3.2. Biological control of head smut in the field
Evaluations were made in the years 2010 and 2012. The distribution
of the experimental plots is described in Section 2.
The insecticide Poncho 600 FS present in the commercial seeds
did not inhibit the growth of B. subtilis.
Treatment with the 160 strain of B. subtilis decreased the Smut
Incidence Percentage (SIP) as shown in Table 2, achieving an efficiency
of 47.6% in 2010 and 31.9% in 2012. The results obtained
according to calculations of yield showed that treatment with B.
subtilis led to an increase in yields compared to the control plants
that did not receive treatment (Table 3).
An analysis of variance (ANOVA) was performed (Table 4). The
null (H0) and alternative (HA) hypotheses were as follows: ‘‘Treatment
with B. subtilis does not decrease SIP’’, and ‘‘Treatment with B.
subtilis decreases SIP’’, respectively. In the first case, all averages
were the same; while in the second, no averages were identical.
The probability value was

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ปลูกในแต่ละ furrow ก่อนที่จะครอบคลุม furrow, g 1 ของ teliosporesของ S. reilianum เตรียมดิน (30.5 กรัมของ teliospores/กก. ของดิน)ถูกเพิ่ม furrow ที่มากกว่าเมล็ดชลประทานได้ใช้รายเดือน สารเคมีกำจัดวัชพืชเวล (3,6-กรด dichloro-2-methoxybenzoic และ 6-chloro-N-ethyl-N-isopropyl-1,3,5-triazine-2, 4-diamine), ถูกนำไปใช้หลังจากชลประทานแรกที่ปริมาณ ของ 2 L/ฮาใน 30 วัน พืชถูก thinned กับประชากรสม่ำเสมอ112 ต่อพล็อต ให้ความหนาแน่นประชากรของ 72,500 พืช/ฮา โรคทำการประเมินที่ใช้วิธีการนำเสนอการเก็บเกี่ยวเปเรซและ Bobadilla (2004) จำนวนรวมของพืชและจำนวนของพืชป่วยถูก quantified หลังจากการตรวจสอบหัวและหูสำหรับของ smut ค่า ascertainedใช้เพื่อกำหนดเปอร์เซ็นต์การเกิด Smut (SIP) และการรักษามีประสิทธิภาพเปอร์เซ็นต์ (TEP) ใช้ต่อไปนี้สูตร:สิบ ðNumber ¼ของเส้น =จำนวน plantsÞð100 %ÞTEP ¼ ½ðSIP ควบคุมสิบรักษา = TreatmentÞð100 สิบ%Þในการกำหนดศักยภาพและจริงก่อให้เกิด จำนวนรวมของหูและปริมาณของหูป่วยจาก furrows กลาง 2 ของแต่ละแผนนับได้ , 22 ถูกนำมาสุ่ม และชั่ง น้ำหนักแล้ว ตัวอย่างย่อยของหู 5 ถูกชั่งน้ำหนัก และปลอกเปลือกให้หมด ความชื้นของเมล็ดกำหนดใช้เป็นจอห์น Deere แบรนด์ข้าวความชื้นเครื่องวัดและใช้ในการคำนวณค่านี้และบันทึกน้ำหนักshelled ตัว (SF) โดยใช้สูตรต่อไปนี้:SF ¼ ðWeight nels โคเคอร์จากหู 5 =น้ำหนักรวมของ 5 earsÞ:ด้วยข้อมูลเหล่านี้ ศักยภาพและทำให้จริง (PY และลอง ตามลำดับ)มีคำนวณโดยใช้สูตรเหล่านี้:PY ¼ ðWÞðTÞ½ð100 HPGÞ = 86 ðSFÞð1000 = GÞลอง¼ ðWÞðT CÞ½ð100 HPGÞ 86 ðSFÞð1000 = = GÞที่ W =น้ำหนักเฉลี่ยของหู 22 (กก.), T =จำนวนหูC =จำนวนเส้นหู HPG =ความชื้นเปอร์เซ็นต์ของเมล็ด86 = Standardized ปัจจัยผลผลิตที่ความชื้น 14%, SF =ปัจจัย ปลอกเปลือกให้หมดและ G =ความกว้าง furrow (0.8 m)การกำหนดเพิ่มในอัตราผลตอบแทน (IY) สูตรต่อไปนี้ใช้:IY ¼ 100 ½ðPY หรือแห้ง โดย subtilis b: =PY หรือลองกับ b: subtilisÞð100 %Þมี ascertained ศักยภาพและผลตอบแทนจริงข้อมูล ผลตอบแทนลดเปอร์เซ็นต์ (YDP) ถูกคำนวณโดยใช้สูตร:YDP ¼ ðPY ลี่ = PYÞð100 %Þ2.5. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลที่ได้จากผลต่างของการวิเคราะห์ (วิเคราะห์ความแปรปรวน) มันไม่ได้ยอมรับหรือปฏิเสธการเป็น nullและสมมุติฐานทางเลือก ทำการทดสอบด้วยการเป็นค่า 0.053. ผลลัพธ์3.1. การเลือกเงีย subtilis เกิดกิจกรรมต้านเชื้อรากับ s ได้reilianumของสายพันธุ์ที่ห้าของ B. subtilis (13, 35, 55, 135 และ 160) ทดสอบประเมินปริญญากิจกรรมต้านเชื้อรากับ S. reilianumการพัฒนาของเชื้อราที่ห้ามเฉพาะ 135 และ 160 สายพันธุ์การเพาะเลี้ยง (Fig. 1)Extracellular filtrates แตกต่างกันได้รับมาจาก 135 และสายพันธุ์ 160 เป็นอธิบายไว้ในส่วน 2, 12, 24 และ 60 h ซึ่งสอดคล้องเขียนต้นลอการิทึม และสายเครื่องเขียนเฟส ตามลำดับ Filtrates ที่ได้ห้ามการเจริญเติบโตของเชื้อรา (Fig. 2) ตัวอย่างที่ มีกิจกรรมสูงสุดได้ได้รับจาก 160 ต้องใช้ในระยะเครื่องเขียน (ตาราง 1)3.2 การควบคุมของหัว smut ในฟิลด์การประเมินที่เกิดขึ้นในปี 2010 และ 2012 การกระจายของที่ดินทดลองถูกอธิบายใน 2 ส่วนยาฆ่าแมลงในเมล็ดพืชพาณิชย์ FS 600 ปอนโชไม่ได้ยับยั้งการเติบโตของ subtilis เกิดรักษา ด้วยพันธุ์ 160 ของ subtilis เกิดลดลง Smutอุบัติการณ์เปอร์เซ็นต์ (SIP) ดังแสดงในตาราง 2 บรรลุประสิทธิภาพการ47.6% ในปี 2553 และ 31.9% ใน 2012 ผลได้รับตามการคำนวณผลตอบแทนที่แสดงให้เห็นว่าการรักษา ด้วยเกิดsubtilis ที่นำไปสู่การเพิ่มผลผลิตเปรียบเทียบกับพืชควบคุมที่ไม่ได้รับการรักษา (ตาราง 3)ทำการผลต่างของการวิเคราะห์ (วิเคราะห์ความแปรปรวน) (ตาราง 4) ที่ค่า null (H0) และสมมุติฐาน (ฮา) ที่อื่นมีดังนี้: '' รักษามี B. subtilis ไม่ลดสิบนิ้ว และ '' รักษา ด้วยเกิดsubtilis ลดสิบนิ้ว ตามลำดับ ในกรณีแรก ทั้งหาค่าเฉลี่ยได้เหมือนกัน ในที่สอง ค่าเฉลี่ยไม่ได้เหมือนกันค่าความน่าเป็น < 0.05 ในทั้งการประเมิน ที่P = 0.0162 2553 และ P = 0.004 จาก 2012 แสดงให้เห็นความสำคัญความแตกต่างระหว่างการรักษา ซึ่ง corroborates ที่ใช้Subtilis เกิดในฟิลด์จริงลดสิบ4. สนทนาในการทดลองเหล่านี้ มีใช้ subtilis เกิดที่แยกต่างหากจากดินเป็นตัวควบคุมแทนการ การศึกษาแสดงว่า รวมเมื่อหรือ inhibiting เจริญเติบโตของ phytopathogens แน่นอน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ปลูกในร่องในแต่ละ ก่อนที่จะครอบคลุมร่องที่ 1 กรัม teliospores
เอส reilianum เตรียมในดิน (30.5 กรัม teliospores / กิโลกรัมของดิน)
ถูกบันทึกอยู่ในร่องในช่วงเมล็ด.
ชลประทานถูกนำมาใช้เป็นรายเดือน สารเคมีกำจัดวัชพืชมหัศจรรย์? (3,6-
ไดคลอโร-2-methoxybenzoic กรดและ 6-chloro-N-เอทิล-N-isopropyl-
1,3,5-triazine-2,4-diamine)
ถูกนำมาใช้หลังจากชลประทานแรกขนาด2 L. /
ไร่ใน30 วันพืชถูกบางตาประชากรเครื่องแบบ
112 ต่อพล็อตให้ความหนาแน่นของประชากรพืช 72,500 / ไร่ โรคการประเมินที่ได้กระทำในการเก็บเกี่ยวโดยใช้วิธีการที่นำเสนอโดยเปเรซและBobadilla (2004) จำนวนรวมของพืชและจำนวนของพืชป่วยได้รับการตรวจสอบปริมาณหลังจากที่หัวและหูการปรากฏตัวของเขม่า ค่าที่ตรวจสอบถูกนำมาใช้เพื่อตรวจสอบเขม่าอุบัติการณ์ร้อยละ (SIP) และร้อยละประสิทธิภาพการรักษา(TEP) โดยใช้ต่อไปนี้สูตร: SIP ¼ðNumberของโรคพืช = จำนวนplantsÞ D100% Th? TEP ¼½ðSIPควบคุม? SIP รักษา = SIP TreatmentÞð100% Th? การตรวจสอบที่มีศักยภาพและอัตราผลตอบแทนจริงจำนวนรวมของหูและปริมาณของหูป่วยจาก 2 ร่องกลางของแต่ละพล็อตนับ ของคนเหล่านั้นถูกนำ 22 ที่สุ่มและชั่งน้ำหนัก, แล้วย่อยตัวอย่าง 5 หูได้รับการชั่งน้ำหนักและปอกเปลือก ความชื้นเมล็ดพันธุ์ที่ถูกกำหนดโดยใช้ John Deere รถยี่ห้อข้าวทดสอบความชื้นและความคุ้มค่านี้และน้ำหนักที่บันทึกไว้ถูกนำมาใช้ในการคำนวณปัจจัยตะพาบ(เอสเอฟ) โดยใช้สูตรต่อไปนี้: เอสเอฟ¼ðWeightของ Nels เคอร์จาก 5 หู = น้ำหนักรวม 5 earsÞ : ด้วยข้อมูลเหล่านี้มีศักยภาพและอัตราผลตอบแทนจริง (PY และ RY ตามลำดับ) จะถูกคำนวณโดยใช้สูตรเหล่านี้: PY ¼ðWÞðTÞ½ð100? HPGÞ = 86 = ðSFÞð1000 GTH RY ¼ðWÞðT? CÞ½ð100? HPGÞ = 86 ðSFÞð1000 = GTH ที่ W = น้ำหนักเฉลี่ย 22 หู (กิโลกรัม) T = จำนวนรวมของหูC = จำนวนหูโรค HPG = ร้อยละความชื้นของเมล็ด, 86 = ปัจจัยผลผลิตมาตรฐานที่ความชื้น 14% เอสเอฟ = ปัจจัยที่ปอกเปลือกและg = ความกว้างของร่อง (0.8 ม.) เพื่อตรวจสอบการเพิ่มขึ้นของผลผลิต (IY) สูตรต่อไปนี้ถูกนำมาใช้: IY ¼ 100? ½ðPYหรือ RY โดยไม่ต้อง B: subtilis = PY หรือ RY กับ B: subtilisÞð100% Þมีการตรวจสอบข้อมูลผลผลิตที่อาจเกิดขึ้นจริงและที่ผลผลิตลดลงร้อยละ(YDP) ที่คำนวณโดยใช้สูตร: YDP ¼ðPY? RY = PYÞð100% Þ. 2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติกับข้อมูลที่ได้จากการวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) มันเป็นไปได้ที่จะตรวจสอบการยอมรับหรือปฏิเสธของnull สมมติฐานและทางเลือก การทดสอบที่ได้รับการดำเนินการกับมูลค่า 0.05. 3 ผล3.1 การคัดเลือกสายพันธุ์บี subtilis มีฤทธิ์ต้านเชื้อรากับเอสreilianum ทั้งห้าสายพันธุ์ของเชื้อ B. (13, 35, 55, 135 และ 160) การทดสอบเพื่อประเมินระดับของกิจกรรมการต้านเชื้อรากับเอสreilianum, เพียง 135 และ 160 สายพันธุ์ยับยั้งการพัฒนาของเชื้อราในหลอดทดลอง(รูปที่ 1).. filtrates สารที่แตกต่างกันที่ได้รับจาก 135 และ160 สายพันธุ์ที่อธิบายไว้ในส่วนที่ 2 ที่ 12, 24 และ 60 ชั่วโมงซึ่งสอดคล้องไปลอการิทึมต้นนิ่งและปลายนิ่งขั้นตอนตามลำดับ filtrates ที่ได้รับการยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อรา(รูปที่. 2) กลุ่มตัวอย่างที่มีกิจกรรมสูงที่สุดคือการที่ได้รับจากสายพันธุ์ 160 ในเฟส (ตารางที่ 1). 3.2 การควบคุมทางชีวภาพของเขม่าหัวในด้านการประเมินผลที่ถูกสร้างขึ้นในปี 2010 และ 2012 การกระจายของแปลงทดลองอธิบายไว้ในมาตรา2 ยาฆ่าแมลง Poncho หรือไม่? 600 FS อยู่ในเมล็ดเชิงพาณิชย์ไม่ได้ยับยั้งการเจริญเติบโตของsubtilis ข. การรักษาด้วย 160 สายพันธุ์ของเชื้อ B. ลดเขม่าร้อยละอุบัติการณ์(SIP) ดังแสดงในตารางที่ 2 การบรรลุประสิทธิภาพของ47.6% ในปี 2010 และ 31.9 % ในปี 2012 ผลที่ได้รับตามการคำนวณของอัตราผลตอบแทนที่แสดงให้เห็นว่าการรักษาด้วยB. subtilis นำไปสู่การเพิ่มขึ้นของอัตราผลตอบแทนเมื่อเทียบกับพืชควบคุมที่ไม่ได้รับการรักษา(ตารางที่ 3). การวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) ได้ดำเนินการ ( ตารางที่ 4) null (H0) และทางเลือก (HA) สมมติฐานมีดังนี้ '' การรักษาด้วยsubtilis บีไม่ได้ลดลง SIP '' และ '' การรักษาด้วย B. subtilis ลดลง SIP '' ตามลำดับ ในกรณีแรกที่ค่าเฉลี่ยทั้งหมดได้เหมือนกัน; ในขณะที่สองค่าเฉลี่ยไม่เหมือนกัน. ค่าความน่าจะเป็น <0.05 ในการประเมินผลทั้งที่p = 0.0162 จากปี 2010 และ P = 0.004 จาก 2012 อย่างมีนัยสำคัญที่แสดงให้เห็นความแตกต่างระหว่างการรักษาซึ่งยืนยันว่าการใช้บี subtilis ในสาขาที่ไม่แน่นอนลดจิบ. 4 อภิปรายในการทดลองเหล่านี้ B. subtilis ที่แยกได้จากดินที่ถูกนำมาใช้เป็นตัวแทนการควบคุม ผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่าจะก่อให้ระงับหรือยับยั้งการเจริญเติบโตของ phytopathogens บางอย่าง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ปลูกในแต่ละร่อง . ก่อนที่จะครอบคลุม 59 , 1 กรัม teliospores
S . reilianum เตรียมดิน ( 30.5 กรัม / กิโลกรัมของดิน teliospores )
ถูกเพิ่มเข้าในร่องมากกว่าเมล็ด .
ชลประทานมาใช้รายเดือน สารมหัศจรรย์ที่  ( 3 , 6 - -

dichloro-2-methoxybenzoic กรดและ 6-chloro-n-ethyl-n-isopropyl 1,3,5-triazine-2,4-diamine ) ใช้หลังแรกชลประทาน
ที่ขนาด 2 ลิตร /
ฮ่าๆใน 30 วัน , ปลูก thinned กับประชากรของชุด
112 ต่อแปลง ให้ประชากรของ 72500 พืช / ฮา การประเมินโรค
ถูกทำในการเก็บเกี่ยวโดยใช้วิธีการเสนอ
โดยเปเรซและ bobadilla ( 2004 ) จำนวนรวมของพืช
และจำนวนพืชป่วยถูกวัดหลังจากตรวจสอบ
หัวและหูสำหรับการแสดงตนของ ST . ค่าการตรวจสอบ
ถูกใช้เพื่อศึกษาอุบัติการณ์ร้อยละ ST ( SIP ) และรักษาประสิทธิภาพค่า

( TEP ) โดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
จิบ¼ðจํานวนของพืช = ป่วยจำนวนทั้งหมดของพืชÞ
 ð 100% Þ
เทพ¼½ðจิบจิบจิบ  ควบคุมการรักษาÞð = 100% Þ 
เพื่อศึกษาศักยภาพและจริงผลผลิต , จำนวนของหู
และปริมาณของการป่วยหูจาก 2 ในภาคกลางของแต่ละแปลง
เคยนับ ของผู้ที่ , 22 ถูกสุ่ม และชั่งน้ำหนัก
แล้วย่อยตัวอย่าง 5 หูถูกชั่งน้ําหนักและเปลือก .
ความชื้นเมล็ดตั้งใจใช้ John Deere แบรนด์เม็ดความชื้น tester
และค่าและบันทึกน้ำหนักใช้ในการคำนวณปัจจัย
เปลือก ( SF ) โดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
SF ¼ðน้ำหนักของเคอร์เนลส์จากหู 5 = น้ำหนักรวม 5 หูÞ :
กับข้อมูลเหล่านี้และเพิ่มศักยภาพที่แท้จริง ( PY และ ry ตามลำดับ )
) คำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
PY ¼ð W Þð T Þ½ð 100  hpg Þ = 86  ð SF Þð 1000 = g Þ
ry ¼ð W Þð T  C Þ½ð 100  hpg Þ = 86  ð SF Þð 1000 = g Þ
ที่ W = น้ำหนักเฉลี่ย 22 หู ( กก. ) , t = จํานวนหู ,
c = จำนวนหูป่วย hpg = ค่าความชื้นของเมล็ด
86 = มาตรฐานผลผลิตองค์ประกอบที่ความชื้น 14% , SF =
เปลือกด้านและ G = ร่องกว้าง ( 0.8 m .
หาเพิ่มผลผลิต ( เอง ) ใช้สูตรต่อไปนี้ :

ก็¼ 100  ½ð py หรือ ry โดย B : subtilis =
py หรือเรียวมะกับ B subtilis Þð 100% Þ 
มีความศักยภาพและผลตอบแทนที่แท้จริงข้อมูล ผลผลิตลดลงร้อยละ
( ydp ) คำนวณได้โดยใช้สูตร :
ydp ¼ð PY  ry = PY Þð 100% Þ .
2.5
สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลกับข้อมูลที่ได้จากการวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) เพื่อศึกษา
เป็นไปได้การยอมรับหรือปฏิเสธของ null
และสมมติฐานทางเลือก การทดสอบการปฏิบัติกับ A
ค่า 0.05 .
3 ผลลัพธ์
3.1 . เลือก B . subtilis สายพันธุ์กับ anti fungal กิจกรรมต่อต้าน reilianum S .

ของห้าสายพันธุ์ B . subtilis ( 13 , 35 , 55 , 135 และ

160 ) ทดสอบประเมินระดับของกิจกรรมต่อต้านเชื้อรากับเอส reilianum
เพียง 135 , 160 สายพันธุ์สามารถยับยั้งการพัฒนาของเชื้อราในหลอดทดลอง ( รูปที่ 1 )
.
สารละลายภายนอกต่างๆ ได้จาก 135 และ
160 สายพันธุ์ที่อธิบายไว้ในมาตรา 2 ที่ 12 , 24 และ 60 ชั่วโมงซึ่งสอดคล้อง
ไปลอการิทึมแต่เช้า เครื่องเขียน และสายเครื่องเขียน
ขั้นตอนตามลำดับในสารละลายที่ได้ยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อรา
( รูปที่ 2 ) ตัวอย่างที่มีกิจกรรมสูงสุดคือ
ที่ได้จากสายพันธุ์ 160 ในเฟสอยู่กับที่ ( ตารางที่ 1 )
2 . การควบคุมทางชีวภาพของหัวหนังโป๊ในฟิลด์
การประเมินผลเกิดขึ้นในปี 2010 และ 2012 การกระจาย
ของแปลงทดลองที่อธิบายไว้ในมาตรา 2 .
ยาฆ่าแมลง , เสื้อปอนโช  600 FS อยู่ในเมล็ดพืชพาณิชย์
ไม่ได้ยับยั้งการเจริญของ B . subtilis .
รักษากับ 160 ของเชื้อ B . subtilis ลดหนังโป๊
อุบัติการณ์ร้อยละ ( SIP ) ดังแสดงในตารางที่ 2 เพื่อประสิทธิภาพ
ของ 50% ใน 2010 และ 31.9 % ในปี 2012 ผลลัพธ์ที่ได้
ตามการคำนวณผลผลิต พบว่า การรักษาด้วย
.ชุด LED เพื่อเพิ่มผลผลิตเมื่อเทียบกับพืชที่ไม่ได้รับการรักษาควบคุม

( ตารางที่ 3 ) การวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) กำหนด ( ตารางที่ 4 )
null ( H0 และสมมติฐานทางเลือก ( ฮา ) ) ดังนี้ : ' 'treatment
กับ B . subtilis ไม่ได้ลดลงจิบ ' ' , และ ' ' B .
'treatment กับเชื้อลดลงจิบ ' ' ตามลำดับ ในกรณีแรก ทั้งหมดเฉลี่ย
เป็นเหมือนกัน ในขณะที่สอง ไม่เฉลี่ยอยู่เหมือนกัน ค่าความน่าจะเป็นคือ
< 0.05 ทั้งในการประเมินที่
p = 0.0162 จาก 2010 และ p = 0.004 จาก 2012 พบว่ามีความแตกต่างกันระหว่างการรักษา
ซึ่ง HUB ที่ใช้
B . subtilis ในฟิลด์ไม่แน่นอนลดจิบ .
4 การอภิปราย
ในการทดลองเหล่านี้ , B . subtilis ที่แยกได้จากดินใช้
เป็นเจ้าหน้าที่ควบคุม ผลการศึกษาพบว่า มันก่อให้เกิด
ปราบปรามหรือยับยั้งการเจริญเติบโตบาง phytopathogens