fungal sources has been extensively

fungal sources has been extensively studied (Howson and Davis1983 ; Gargova and Sariyska 2003; Dahiya et al. 2009). On the other hand, there is a paucity of information regarding phytases produced in alkaline medium. This result referred to the unique biochemical and structure properties of P. purpurogenum GE1 phytase. On the contrary, Hussin et al. 2010, reported that the optimum initial pH for phytase production of B. cereus ASUIA 260 was pH 7.2, while the optimum pH was 6.0 for the production of phytase from P. stewartii ASUIA271 and E. sakazakii ASUIA 279. 3.7. Effect of different carbon sources on phytase production The effect of supplementation of the substrate with 0.5 g/5 g ds of different carbon sources was tested. The results (Fig. 6) showed that only glucose among different carbon sources achieved the maximum phytase productivity GE1 (92 ± 5.6 U/g ds). Glucose was considered as a simple and easy carbon source consumed by microorganisms (Hassouni et al. 2006). It was reported that glucose supported phytase production by Aspergillus adeninivorans, Candida krusei and A. niger NCIM (Sano et al. 1999; Quan et al. 2001; Soni and Khire 2007). 3.8. Effect of different nitrogen sources on phytase production The medium supplemented with (0.25 g/5 g ds) of different nitrogen sources included organic and inorganic nitrogenous compounds (Beef extract, yeast extract, peptone, baker yeast, ammonium phosphate, ammonium sulpfate, ammonium chloride, and urea). The results in Fig. 7 showed that the additionof peptone resulted in great enhancement of enzyme production (125 ± 4.9 U/g ds). This result represented 1.75-fold compared to the control (without the addition of peptone). The study of different organic and inorganic nitrogen sources appeared that peptone was the most favorable nitrogen source for enzyme production. On the contrary, Vohra and Satyanarayana (2002); Hassouni et al. (2002) reported that (NH4)2HPO4 was the most favorable nitrogen source for Mycelophothora thermophila phytase production. On the other side, (Lan. et al. 2002) reported that soybean milk significantly increased the phytase production by Mitsuokella jalaludinni. 3.9. Effect of supplementation of the fermentation medium with different concentrations of surfactant The solid substrate was supplemented with (0.005, 0.01 and 0.015 g/5 g ds of Tween 80 or triton •100). The results in Fig. 8. revealed clearly that Triton •100 and Tween 80 enhanced phytase productivity at all concentrations , maximum enzyme production was observed with Tween 80 at 0.001 concentration (170 ± 4.2 U/g ds). This result was compatible with Esakkiraj et al. 2010, they enhance the production of phytase by Pseudomonas AP-MSU 2 with the addition of Tween 60 to the fermentation medium. Mandviwala and Khire 2000, reported that among various surfactants added to SSF, Trition X-100 (0.5%) exhibited a 30% increase in A. niger phytase productivity. On the contrary, surfactants such as Tween-80 (0Æ5% and 1Æ0%) and Triton X-100 (1Æ0%) did not affect the phytase production (Lan et al., 2002a, b).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แหล่งเชื้อราได้รับการศึกษาอย่างกว้างขวาง (Howson และ Davis1983 Gargova และ Sariyska 2003 Dahiya et al. 2009) บนมืออื่น ๆ มี paucity ข้อมูลเกี่ยวกับ phytases ที่ผลิตในด่าง ผลลัพธ์นี้อ้างอิงเฉพาะชีวเคมีและโครงสร้างคุณสมบัติของคุณสมบัติ P. purpurogenum GE1 ดอก Hussin et al. 2010 รายงานว่า pH เริ่มต้นเหมาะสมสำหรับการผลิตคุณสมบัติเกิด cereus ASUIA 260 ไม่ค่า pH 7.2 ในขณะที่ค่า pH เหมาะสมคือ 6.0 สำหรับการผลิตคุณสมบัติจาก P. stewartii ASUIA271 และ E. sakazakii ASUIA 279 3.7. ผลของแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างคุณสมบัติผลิตผลแห้งเสริมของพื้นผิวกับ ds 0.5 กรัม/5 กรัมแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันได้รับการทดสอบ ผลลัพธ์ (Fig. 6) พบว่า กลูโคสจากแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันได้รับประสิทธิผลสูงสุดคุณสมบัติ GE1 (92 ± 5.6 U/g ds) กลูโคสถูกถือว่าเป็นแหล่งคาร์บอนที่ง่าย และใช้จุลินทรีย์ (Hassouni et al. 2006) มันรายงานว่า กลูโคสสนับสนุนคุณสมบัติผลิต โดย Aspergillus adeninivorans แคน krusei และไนเจอร์ A. NCIM (ซาโนะ et al. 1999 ควน et al. 2001 Soni ก Khire 2007) 3.8. ผลของไนโตรเจนต่าง ๆ แหล่งบนคุณสมบัติผลิตสื่อเสริม ด้วย (0.25 กรัม/5 กรัม ds) ของไนโตรเจนต่างๆ แหล่งรวมไนโตรจีนัสสาร (สารสกัดเนื้อ สารสกัดจากยีสต์ peptone เบเกอร์ยีสต์ ฟอสเฟตแอมโมเนีย แอมโมเนีย sulpfate แอมโมเนียมคลอไรด์ และยูเรีย) ผลลัพธ์ใน Fig. 7 พบว่า additionof peptone ให้ดีเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตเอนไซม์ (125 ± 4.9 U/g ds) ผลนี้แสดง 1.75-fold เมื่อเทียบกับตัวควบคุม (โดยการเพิ่ม peptone) การศึกษาแหล่งไนโตรเจนอินทรีย์ และอนินทรีย์ต่าง ๆ ปรากฏ ว่า peptone เป็นแหล่งไนโตรเจนมากที่สุดสำหรับการผลิตเอนไซม์ ในตรงกันข้าม Vohra และ Satyanarayana (2002); Hassouni et al. (2002) รายงานว่า (NH4) 2HPO4 เป็นแหล่งไนโตรเจนมากที่สุดสำหรับการผลิตคุณสมบัติ thermophila Mycelophothora อีกด้านหนึ่ง, (Lan et al. 2002) รายงานว่า นมถั่วเหลืองมากขึ้นการผลิตคุณสมบัติ โดย Mitsuokella jalaludinni 3.9. ผลของการแห้งเสริมกลางหมักมีความเข้มข้นแตกต่างกันของ surfactant พื้นผิวเป็นของแข็งถูกเสริม ด้วย (0.005, 0.01 และ 0.015 กรัม/5 กรัม ds ของ Tween 80 หรือ •100 ไตรตั้น) ผลลัพธ์ใน Fig. 8 เปิดเผยชัดเจนว่า ไตรตั้น •100 และ Tween 80 เพิ่มผลผลิตคุณสมบัติที่ความเข้มข้นทั้งหมด ผลิตเอนไซม์สูงสุดถูกตรวจสอบกับ Tween 80 ที่ความเข้มข้น 0.001 (170 ± 4.2 U/g ds) ผลนี้ไม่เข้ากันได้กับ Esakkiraj et al. 2010 จะเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตของคุณสมบัติโดย Pseudomonas AP MSU 2 แห่ง Tween 60 ปานกลางหมัก Mandviwala และ Khire 2000 รายงานว่า ระหว่าง surfactants ต่าง ๆ เพิ่ม SSF, Trition X-100 (0.5%) จัดแสดงเพิ่มขึ้นเป็น 30% ในไนเจอร์ A. คุณสมบัติผลผลิต ดอก surfactants Tween-80 (0Æ5% และ 1Æ0%) และไตรตั้น X-100 (1Æ0%) ไม่มีผลต่อการผลิตคุณสมบัติ (Lan et al., 2002a, b)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

แหล่งที่มาของเชื้อราได้รับการศึกษาอย่างกว้างขวาง (ฮาวสันและ Davis1983; Gargova และ Sariyska. 2003; Dahiya et al, 2009) ในทางตรงกันข้ามมีความขัดสนของข้อมูลเกี่ยวกับ phytases ผลิตในกลางอัลคาไลน์ ผลที่ได้นี้เรียกว่าไม่ซ้ำกันคุณสมบัติทางชีวเคมีและโครงสร้างของ P. purpurogenum GE1 phytase ในทางตรงกันข้าม Hussin และคณะ 2010 รายงานว่า pH เริ่มต้นที่เหมาะสมสำหรับการผลิต phytase ของ B. cereus ASUIA 260 เป็นค่า pH 7.2 ในขณะที่ค่า pH ที่เหมาะสมคือ 6.0 สำหรับการผลิต phytase จาก P. stewartii ASUIA271 และ E. sakazakii ASUIA 279 3.7 ผลของแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันในการผลิต phytase ผลของการเสริมของพื้นผิวที่มี 0.5 กรัม / 5 กรัม ds ของแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันได้รับการทดสอบ ผล (รูปที่. 6) แสดงให้เห็นว่าน้ำตาลกลูโคสเพียง แต่ในหมู่แหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันประสบความสำเร็จในการผลิต phytase สูงสุด GE1 (92 ± 5.6 U / กรัม DS) กลูโคสได้รับการพิจารณาเป็นแหล่งคาร์บอนง่ายและสะดวกในการบริโภคโดยจุลินทรีย์ (Hassouni et al. 2006) มีรายงานว่าระดับน้ำตาลในการสนับสนุนการผลิต phytase โดย adeninivorans Aspergillus, Candida krusei และ A. ไนเจอร์ NCIM (Sano et al, 1999;. Quan et al, 2001;. โซและ Khire 2007) 3.8 ผลกระทบของแหล่งไนโตรเจนที่แตกต่างกันในการผลิต phytase กลางเสริมด้วย (0.25 กรัม / 5 กรัม DS) ของแหล่งไนโตรเจนที่แตกต่างกันรวมถึงสารประกอบไนโตรเจนอินทรีย์และอนินทรี (สารสกัดจากเนื้อสารสกัดจากยีสต์, เปปโตน, ยีสต์ขนมปังฟอสเฟตแอมโมเนียม sulpfate แอมโมเนียมคลอไรด์แอมโมเนียม และยูเรีย) ผลในรูป 7 แสดงให้เห็นว่าเปปโตน additionof ผลในการเพิ่มประสิทธิภาพที่ดีของการผลิตเอนไซม์ (125 ± 4.9 U / กรัม DS) ผลนี้เป็นตัวแทน 1.75 เท่าเมื่อเทียบกับการควบคุม (โดยไม่มีการเติมเปปโตน) การศึกษาของแหล่งไนโตรเจนอินทรีย์และอนินทรีที่แตกต่างกันปรากฏว่าเปปโตนเป็นแหล่งไนโตรเจนที่ดีที่สุดสำหรับการผลิตเอนไซม์ ในทางตรงกันข้าม Vohra และ Satyanarayana (2002); Hassouni และคณะ (2002) รายงานว่า (NH4) 2HPO4 เป็นแหล่งไนโตรเจนที่ดีที่สุดสำหรับ Mycelophothora ผลิต phytase thermophila ในอีกด้านหนึ่ง (ลาน. et al. 2002) รายงานว่านมถั่วเหลืองอย่างมีนัยสำคัญเพิ่มกำลังการผลิต phytase โดย Mitsuokella jalaludinni 3.9 ผลของการเสริมของกลางหมักที่มีความเข้มข้นแตกต่างกันของแรงตึงผิวพื้นผิวที่เป็นของแข็งได้รับการเสริมด้วย (0.005, 0.015 และ 0.01 กรัม / 5 กรัม ds ของ Tween 80 หรือไทรทัน• 100) ผลในรูป 8. เปิดเผยอย่างชัดเจนว่าไทรทัน• 100 และ Tween 80 phytase ผลผลิตที่เพิ่มขึ้นที่ระดับความเข้มข้นทุกการผลิตเอนไซม์สูงสุดเป็นที่สังเกตกับ Tween 80 ที่ 0.001 เข้มข้น (170 ± 4.2 U / กรัม DS) ผลที่ได้นี้ก็เข้ากันได้กับ Esakkiraj และคณะ 2010, พวกเขาเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตของ phytase โดย Pseudomonas AP-MSU 2 ด้วยนอกเหนือจาก Tween 60 ถึงกลางหมัก Mandviwala และ Khire 2000 รายงานว่าในหมู่ลดแรงตึงผิวต่าง ๆ เข้ามาอยู่ใน SSF, Trition X-100 (0.5%) การจัดแสดงเพิ่มขึ้น 30% ในการผลิตเอไนเจอร์ phytase ในทางตรงกันข้ามการลดแรงตึงผิวเช่น Tween-80 (0Æ5% และ1Æ0%) และ Triton X-100 (1Æ0%) ไม่ได้ส่งผลกระทบต่อการผลิต phytase (ลาน et al., 2002a, ข)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

แหล่งของเชื้อราได้อย่างกว้างขวางและศึกษา ( ฮาวสัน davis1983 ; gargova และ sariyska 2003 ; Dahiya et al . 2009 ) บนมืออื่น ๆมีจำนวนเล็กน้อยของข้อมูลเกี่ยวกับ phytases ผลิตในด่างปานกลาง ผลที่ได้นี้เรียกว่าทางชีวเคมีโครงสร้างและสมบัติเฉพาะของหน้า purpurogenum ge1 phytase ในทางตรงกันข้าม hussin et al . 2553รายงานว่า ที่ pH เริ่มต้นสำหรับการผลิตเอนไซม์ไฟเตสของ B . cereus asuia 260 คือ pH 7.2 ในขณะที่ pH 6.0 สําหรับการผลิตเอนไซม์ไฟเตสจากหน้า stewartii asuia271 และ E . sakazakii asuia 279 . 3.7 ผลของแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันในการผลิตผลของการเสริมสารอาหารกับ 0.5 กรัม / 5 g DS ของแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันถูกทดสอบ 1 . ผลลัพธ์ที่ได้ ( ภาพประกอบ6 ) พบว่ากลูโคสเท่านั้นระหว่างแหล่งคาร์บอนที่แตกต่างกันได้สูงสุดและผลผลิต ge1 ( 92 ± 5.6 U / g DS ) กลูโคสเป็นแหล่งคาร์บอนที่ใช้ง่ายและสะดวก โดยจุลินทรีย์ ( hassouni et al . 2006 ) มีรายงานว่า กลุ่มสนับสนุนการผลิตกลูโคสโดยเชื้อ Aspergillus และ Candida adeninivorans 90 , A . niger ncim ( ซาโนะ et al . 2542 ; เฉวียน et al . 2001โซนี่ และ khire 2007 ) 3.8 . ผลของระดับไนโตรเจนต่อการผลิตอาหารสูตร MS ที่เสริมด้วยเอนไซม์ไฟเตส ( 0.25 กรัม / 5 g DS ) ของแหล่งไนโตรเจนที่แตกต่างกัน ได้แก่ อินทรีย์ และอนินทรีย์ไนโตรเจนสารประกอบ ( สารสกัดจากเนื้อ ยีสต์สกัดเปปโตน เบเกอร์ยีสต์ แอมโมเนียมฟอสเฟต แอมโมเนีย sulpfate แอมโมเนียมคลอไรด์ และยูเรีย ) ผลลัพธ์ในฟิค7 พบว่า additionof extract ส่งผลเสริมที่ดีของการผลิตเอนไซม์ ( 125 ± 4.9 U / g DS ) ผลที่ได้นี้แสดง 1.75-fold เมื่อเทียบกับการควบคุม ( โดยไม่ต้องเพิ่มตามลำดับ ) การศึกษาที่แตกต่างกัน อินทรีย์ และอนินทรีย์แหล่งไนโตรเจนปรากฏว่าเปปโตนเป็นแหล่งไนโตรเจนที่ดีที่สุดสำหรับการผลิตเอนไซม์ ในทางตรงกันข้าม vohra และ satyanarayana ( 2002 )hassouni et al . ( 2002 ) รายงานว่า 2hpo4 ( NH4 ) เป็นแหล่งไนโตรเจนที่โปรดปรานมากที่สุดสำหรับ mycelophothora thermophila ลดการผลิต อีกด้านหนึ่ง ( LAN et al . 2002 ) รายงานว่า นมถั่วเหลืองอย่างมีนัยสำคัญเพิ่มระดับการผลิตโดย mitsuokella jalaludinni . 3.9ผลของการเสริมกรดกลางกับระดับความเข้มข้นของสารลดแรงตึงผิวที่พื้นผิวแข็งเสริมด้วย ( 0.005 , 0.01 และ 0.015 กรัม 5 กรัม DS ของ Tween 80 หรือ ไทรตัน - 100 ) ผลลัพธ์ที่ได้ในรูปที่ 8 เปิดเผยว่า ไทรทัน - 100 และเพิ่มผลผลิตที่ใช้ Tween 80 เข้มข้น การผลิตเอนไซม์สูงสุดและทวีน 80 ที่ 0001 ปริมาณ ( 170 ± 4.2 U / g DS ) ผลนี้ยังเข้ากันได้กับ esakkiraj et al . 2010 , พวกเขาเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตของเอนไซม์ไฟเตสจาก Pseudomonas ap-msu 2 ด้วยนอกเหนือจาก Tween 60 การหมัก ) และ mandviwala khire 2000 รายงานว่าในด้านต่าง ๆเพิ่ม trition X-100 SSF ( 0.5% ) จัดแสดงเพิ่มขึ้น 30% ใน A . niger และผลผลิต ในทางตรงกันข้ามสารลดแรงตึงผิว เช่น tween-80 ( 0 กู้ร้อยละ 5 และ 1 กู้ 0 % ) และ Triton X-100 ( 1 กู้ 0 % ) ไม่มีผลต่อการผลิตเอนไซม์ไฟเตส ( LAN et al . , 2002a , B )