- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
3.2. Protoplast isolation and cultu
3.2. Protoplast isolation and culture
Regeneration from cauliflower mesophyll protoplasts has been
more successful with protocols based on Pelletier et al. (1983) than
Glimelius (1984) (reviewed in Kik and Zaal, 1993). As such,
efficient protoplast isolation and culture, incorporating such
factors as agarose embedding, were established for cv. Thalassa
(data not shown), based on a protocol developed at Rijk Zwaan BV,
Netherlands, adapted from Pelletier et al. (1983) (see Nugent et al.,
2006). Shoot cultures of Brittany were then used in the container
experiment where similar yields of mesophyll protoplasts were
obtained from leaves from the four container types (Table 2).
Significantly higher protoplast viability, division and shoot
regeneration was obtained from shoot cultures grown in glass
jars (Table 2). Protoplasts from leaves of shoot cultures grown in
large, vented culture vessels produced significantly higher division
frequency than those from leaves from unvented containers of the
same or smaller size (Fig. 1a). Shoot cultures developed vigorously
in vented jars (Fig. 1b and c). The importance of ventilation of
culture vessels and Petri dishes has also been demonstrated in
other brassica tissue culture systems. Micropropagated cauliflower
seedlings grew better in vitro in vented containers with or without
added AgNO3 (Zobayed et al., 1999) and a significant improvement
in culture of B. napus protoplasts was obtained when shoot
cultures, used as a source of mesophyll protoplasts, were grown on
a modified basal medium in large, vented glass jars (Dovzhenko,
2001). However this medium made cauliflower shoots chlorotic in
our study (data not shown), but large culture vessels was a key
improvement for cauliflower (Table 2).
No significant difference in protoplast yield or viability was
found among the seven Australian sourced cultivars. In all of these
cultivars, high yields, viabilities and division frequencies were
obtained (Table 3). Protoplast microcolonies were well developed
by 20 d of culture (Fig. 1d) and masses of green colonies easily
visible by eye in agarose discs by 30 d on medium D (Fig. 1e) and
early stages of shoot and root regeneration were visible on medium
E by 40 d after protoplast isolation (Fig. 1f). Only Phenomenal Early
showed significantly lower shoot regeneration from protoplast
calli than the other cultivars. Protoplast division and regeneration
in our study were the highest yet reported for cauliflower (e.g. Kik
and Zaal, 1993) and comparable to the broccoli cultivar Green
Comet (Robertson and Earle, 1986). With a division frequency
reliably around 70% for several cultivars including Thalassa, using
the modified protocol in combination with vented vessels, we have
a sound basis for improved transgenesis from protoplasts of
cauliflower, compared to earlier studies (Radchuk et al., 2002;
Nugent et al., 2006).
In conclusion, this study has found that regeneration from
several of the European and Australian sourced cultivars exhibit
the most efficient regeneration from leaf explants and mesophyll
protoplasts reported to date for this species. The utility of this high
regeneration frequency in transformation systems is under
examination.
Regeneration from cauliflower mesophyll protoplasts has been
more successful with protocols based on Pelletier et al. (1983) than
Glimelius (1984) (reviewed in Kik and Zaal, 1993). As such,
efficient protoplast isolation and culture, incorporating such
factors as agarose embedding, were established for cv. Thalassa
(data not shown), based on a protocol developed at Rijk Zwaan BV,
Netherlands, adapted from Pelletier et al. (1983) (see Nugent et al.,
2006). Shoot cultures of Brittany were then used in the container
experiment where similar yields of mesophyll protoplasts were
obtained from leaves from the four container types (Table 2).
Significantly higher protoplast viability, division and shoot
regeneration was obtained from shoot cultures grown in glass
jars (Table 2). Protoplasts from leaves of shoot cultures grown in
large, vented culture vessels produced significantly higher division
frequency than those from leaves from unvented containers of the
same or smaller size (Fig. 1a). Shoot cultures developed vigorously
in vented jars (Fig. 1b and c). The importance of ventilation of
culture vessels and Petri dishes has also been demonstrated in
other brassica tissue culture systems. Micropropagated cauliflower
seedlings grew better in vitro in vented containers with or without
added AgNO3 (Zobayed et al., 1999) and a significant improvement
in culture of B. napus protoplasts was obtained when shoot
cultures, used as a source of mesophyll protoplasts, were grown on
a modified basal medium in large, vented glass jars (Dovzhenko,
2001). However this medium made cauliflower shoots chlorotic in
our study (data not shown), but large culture vessels was a key
improvement for cauliflower (Table 2).
No significant difference in protoplast yield or viability was
found among the seven Australian sourced cultivars. In all of these
cultivars, high yields, viabilities and division frequencies were
obtained (Table 3). Protoplast microcolonies were well developed
by 20 d of culture (Fig. 1d) and masses of green colonies easily
visible by eye in agarose discs by 30 d on medium D (Fig. 1e) and
early stages of shoot and root regeneration were visible on medium
E by 40 d after protoplast isolation (Fig. 1f). Only Phenomenal Early
showed significantly lower shoot regeneration from protoplast
calli than the other cultivars. Protoplast division and regeneration
in our study were the highest yet reported for cauliflower (e.g. Kik
and Zaal, 1993) and comparable to the broccoli cultivar Green
Comet (Robertson and Earle, 1986). With a division frequency
reliably around 70% for several cultivars including Thalassa, using
the modified protocol in combination with vented vessels, we have
a sound basis for improved transgenesis from protoplasts of
cauliflower, compared to earlier studies (Radchuk et al., 2002;
Nugent et al., 2006).
In conclusion, this study has found that regeneration from
several of the European and Australian sourced cultivars exhibit
the most efficient regeneration from leaf explants and mesophyll
protoplasts reported to date for this species. The utility of this high
regeneration frequency in transformation systems is under
examination.
0/5000
3.2. protoplast แยกและวัฒนธรรมได้รับการฟื้นฟูจากกะหล่ำ mesophyll โปประสบความสำเร็จกับโปรโตคอลอยู่บน Pelletier et al. (1983) มากกว่าGlimelius (1984) (ทบทวนก็และ Zaal, 1993) เช่นแยก protoplast ประสิทธิภาพและวัฒนธรรม เพจเช่นปัจจัยเป็น agarose ฝัง ก่อตั้งขึ้นสำหรับพันธุ์ลาสซา(ข้อมูลไม่แสดง), ตามโพรโทคอลที่พัฒนาที่ Rijk Zwaan BVประเทศเนเธอร์แลนด์ ดัดแปลงจาก Pelletier et al. (1983) (ดู Nugent et al.,2006) แล้วใช้ยิงวัฒนธรรมแห่งบริตานีในคอนเทนเนอร์ทดลองที่อัตราผลตอบแทนคล้ายของโป mesophyll มีได้รับจากออกจากคอนเทนเนอร์สี่ชนิด (ตารางที่ 2)อย่างมีนัยสำคัญชีวิต protoplast หาร และยิงฟื้นฟูได้รับจากวัฒนธรรมยิงปลูกแก้วขวด (ตาราง 2) โปจากใบโตในวัฒนธรรมยิงเรือขนาดใหญ่ vented วัฒนธรรมผลิตหารอย่างมีนัยสำคัญความถี่กว่านั้นจากใบจาก unvented คอนเทนเนอร์ของการเดียวกัน หรือเล็กกว่าขนาด (Fig. 1a) ยิงวัฒนธรรมพัฒนาโยคะในขวด vented (Fig. 1b และ c) ความสำคัญของการระบายอากาศของเรือวัฒนธรรมและจาน Petri มียังได้แสดงในระบบเนื้อเยื่อผักอื่น ๆ กะหล่ำดอก Micropropagatedกล้าไม้เติบโตดีการเพาะเลี้ยงในภาชนะ vented หรือไม่เพิ่ม AgNO3 (Zobayed et al., 1999) และปรับปรุงอย่างมีนัยสำคัญในวัฒนธรรมของ napus เกิดโปกล่าวเมื่อยิงวัฒนธรรม ใช้เป็นแหล่งของโป mesophyll ถูกปลูกในสื่อโรคแก้ไขในขวดแก้วขนาดใหญ่ vented (Dovzhenko2001) . อย่างไรก็ตาม สื่อประเภทนี้ทำกะหล่ำยอดปากในศึกษาของเรา (ข้อมูลไม่แสดง), แต่เรือใหญ่วัฒนธรรม คีย์ปรับปรุงในกะหล่ำดอก (ตาราง 2)ไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในผลผลิต protoplast หรือชีวิตได้พบระหว่างพันธุ์ถิ่นออสเตรเลีย 7 ในสิ่งเหล่านี้พันธุ์ อัตราผลตอบแทนสูง viabilities และความถี่ฝ่ายรับ (ตาราง 3) Protoplast microcolonies ได้พัฒนาดีโดย d 20 ของวัฒนธรรม (Fig. 1 d) และมวลของอาณานิคมสีเขียวได้ง่ายมองเห็นได้ ด้วยตาใน agarose ดิสก์โดย 30 d กลาง D (Fig. 1e) และระยะเริ่มต้นของการยิงและรากฟื้นฟูมีปรากฏบนสื่อกลางE โดย d 40 หลังจาก protoplast แยก (Fig. 1f) ปรากฏการณ์เท่านั้นก่อนแสดงให้เห็นว่าฟื้นฟูระดับต่ำยิงจาก protoplastcalli กว่าพันธุ์อื่น ๆ ส่วน protoplast และฟื้นฟูในการศึกษาของเราได้สูงสุดยังได้รายงานในกะหล่ำดอก (เช่นรัฐไกรและ Zaal, 1993) และเทียบได้กับ cultivar บรอกโคลีเขียวดาวหาง (โรเบิร์ตสันและ Earle, 1986) ด้วยความถี่หารหลายพันธุ์รวมทั้งลาสซา ใช้ได้ประมาณ 70%เรามีการปรับเปลี่ยนโพรโทคอลร่วมกับเรือ ventedพื้นฐานสำหรับการปรับปรุง transgenesis จากโปของเสียงกะหล่ำดอก เปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้า (Radchuk et al., 2002Nugent และ al., 2006)เบียดเบียน การศึกษานี้พบว่าฟื้นฟูจากหลายแสดงพันธุ์เข้ายุโรปและออสเตรเลียฟื้นฟูที่มีประสิทธิภาพสูงสุดจาก explants ใบและ mesophyllโปรายงานวันสำหรับพันธุ์นี้ ของสูงนี้ความถี่ในการเปลี่ยนแปลงระบบการฟื้นฟูอยู่ตรวจสอบ
การแปล กรุณารอสักครู่..
3.2. Protoplast isolation and culture
Regeneration from cauliflower mesophyll protoplasts has been
more successful with protocols based on Pelletier et al. (1983) than
Glimelius (1984) (reviewed in Kik and Zaal, 1993). As such,
efficient protoplast isolation and culture, incorporating such
factors as agarose embedding, were established for cv. Thalassa
(data not shown), based on a protocol developed at Rijk Zwaan BV,
Netherlands, adapted from Pelletier et al. (1983) (see Nugent et al.,
2006). Shoot cultures of Brittany were then used in the container
experiment where similar yields of mesophyll protoplasts were
obtained from leaves from the four container types (Table 2).
Significantly higher protoplast viability, division and shoot
regeneration was obtained from shoot cultures grown in glass
jars (Table 2). Protoplasts from leaves of shoot cultures grown in
large, vented culture vessels produced significantly higher division
frequency than those from leaves from unvented containers of the
same or smaller size (Fig. 1a). Shoot cultures developed vigorously
in vented jars (Fig. 1b and c). The importance of ventilation of
culture vessels and Petri dishes has also been demonstrated in
other brassica tissue culture systems. Micropropagated cauliflower
seedlings grew better in vitro in vented containers with or without
added AgNO3 (Zobayed et al., 1999) and a significant improvement
in culture of B. napus protoplasts was obtained when shoot
cultures, used as a source of mesophyll protoplasts, were grown on
a modified basal medium in large, vented glass jars (Dovzhenko,
2001). However this medium made cauliflower shoots chlorotic in
our study (data not shown), but large culture vessels was a key
improvement for cauliflower (Table 2).
No significant difference in protoplast yield or viability was
found among the seven Australian sourced cultivars. In all of these
cultivars, high yields, viabilities and division frequencies were
obtained (Table 3). Protoplast microcolonies were well developed
by 20 d of culture (Fig. 1d) and masses of green colonies easily
visible by eye in agarose discs by 30 d on medium D (Fig. 1e) and
early stages of shoot and root regeneration were visible on medium
E by 40 d after protoplast isolation (Fig. 1f). Only Phenomenal Early
showed significantly lower shoot regeneration from protoplast
calli than the other cultivars. Protoplast division and regeneration
in our study were the highest yet reported for cauliflower (e.g. Kik
and Zaal, 1993) and comparable to the broccoli cultivar Green
Comet (Robertson and Earle, 1986). With a division frequency
reliably around 70% for several cultivars including Thalassa, using
the modified protocol in combination with vented vessels, we have
a sound basis for improved transgenesis from protoplasts of
cauliflower, compared to earlier studies (Radchuk et al., 2002;
Nugent et al., 2006).
In conclusion, this study has found that regeneration from
several of the European and Australian sourced cultivars exhibit
the most efficient regeneration from leaf explants and mesophyll
protoplasts reported to date for this species. The utility of this high
regeneration frequency in transformation systems is under
examination.
Regeneration from cauliflower mesophyll protoplasts has been
more successful with protocols based on Pelletier et al. (1983) than
Glimelius (1984) (reviewed in Kik and Zaal, 1993). As such,
efficient protoplast isolation and culture, incorporating such
factors as agarose embedding, were established for cv. Thalassa
(data not shown), based on a protocol developed at Rijk Zwaan BV,
Netherlands, adapted from Pelletier et al. (1983) (see Nugent et al.,
2006). Shoot cultures of Brittany were then used in the container
experiment where similar yields of mesophyll protoplasts were
obtained from leaves from the four container types (Table 2).
Significantly higher protoplast viability, division and shoot
regeneration was obtained from shoot cultures grown in glass
jars (Table 2). Protoplasts from leaves of shoot cultures grown in
large, vented culture vessels produced significantly higher division
frequency than those from leaves from unvented containers of the
same or smaller size (Fig. 1a). Shoot cultures developed vigorously
in vented jars (Fig. 1b and c). The importance of ventilation of
culture vessels and Petri dishes has also been demonstrated in
other brassica tissue culture systems. Micropropagated cauliflower
seedlings grew better in vitro in vented containers with or without
added AgNO3 (Zobayed et al., 1999) and a significant improvement
in culture of B. napus protoplasts was obtained when shoot
cultures, used as a source of mesophyll protoplasts, were grown on
a modified basal medium in large, vented glass jars (Dovzhenko,
2001). However this medium made cauliflower shoots chlorotic in
our study (data not shown), but large culture vessels was a key
improvement for cauliflower (Table 2).
No significant difference in protoplast yield or viability was
found among the seven Australian sourced cultivars. In all of these
cultivars, high yields, viabilities and division frequencies were
obtained (Table 3). Protoplast microcolonies were well developed
by 20 d of culture (Fig. 1d) and masses of green colonies easily
visible by eye in agarose discs by 30 d on medium D (Fig. 1e) and
early stages of shoot and root regeneration were visible on medium
E by 40 d after protoplast isolation (Fig. 1f). Only Phenomenal Early
showed significantly lower shoot regeneration from protoplast
calli than the other cultivars. Protoplast division and regeneration
in our study were the highest yet reported for cauliflower (e.g. Kik
and Zaal, 1993) and comparable to the broccoli cultivar Green
Comet (Robertson and Earle, 1986). With a division frequency
reliably around 70% for several cultivars including Thalassa, using
the modified protocol in combination with vented vessels, we have
a sound basis for improved transgenesis from protoplasts of
cauliflower, compared to earlier studies (Radchuk et al., 2002;
Nugent et al., 2006).
In conclusion, this study has found that regeneration from
several of the European and Australian sourced cultivars exhibit
the most efficient regeneration from leaf explants and mesophyll
protoplasts reported to date for this species. The utility of this high
regeneration frequency in transformation systems is under
examination.
การแปล กรุณารอสักครู่..
3.2 . การแยกโปรโตพลาสต์ และฟื้นฟูวัฒนธรรมจากเซลล์มีโซฟิลล์มีกะหล่ำ
ความสําเร็จด้วยโปรโตคอลตามเพลเลอเทียร์ et al . ( 1983 ) มากกว่า
glimelius ( 2527 ) ( สุดท้ายในกิ๊ก และ zaal , 1993 ) เช่น วัฒนธรรมการแยกโปรโตพลาสต์
และมีประสิทธิภาพ จึงเป็นปัจจัย
, ฝังขึ้นสำหรับพันธุ์ Thalassa
( ข้อมูลไม่แสดง ) ,ตามขั้นตอนการพัฒนาที่ริคจ์เป็นระยะ
BV เนเธอร์แลนด์ ดัดแปลงจากเพลเลอเทียร์ et al . ( 1983 ) ( ดู
นูเจนท์ et al . , 2006 ) ยิงวัฒนธรรมของ Brittany แล้วใช้ในการทดลองที่ให้ผลคล้ายกับภาชนะ
ที่ได้จากใบพบว่ามีโซฟิลล์จากสี่ภาชนะชนิด ( ตารางที่ 2 ) .
สูงกว่าจำนวน 1 กอง และยิง
การยิงได้จากวัฒนธรรมที่ปลูกในขวดแก้ว
( ตารางที่ 2 ) เอนไซม์จากใบยิงวัฒนธรรมปลูก
ขนาดใหญ่ระบายเรือวัฒนธรรมที่ผลิตแบ่งความถี่
สูงกว่าจากใบไม้จากภาชนะบรรจุ unvented ของ
เดียวกันหรือขนาดเล็ก ( รูปที่ 1 ) ยิงวัฒนธรรมพัฒนาอย่างแข็งขัน
ใน vented ไห ( รูปที่ 1A และ C ) ความสำคัญของการระบายอากาศของ
เรือวัฒนธรรมและจานเพาะเลี้ยงยังได้รับแสดงให้เห็นในระบบเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ
ผักอื่น ๆ micropropagated กะหล่ำดอก
ต้นกล้าเจริญเติบโตได้ดีในหลอดทดลองในภาชนะที่มีหรือไม่มี
ระบายอากาศเพิ่ม agno3 ( zobayed et al . , 1999 ) และการพัฒนาทางวัฒนธรรมของ napus พลาสต์ได้เมื่อยิง
วัฒนธรรม ใช้เป็นแหล่งของโปรโตพลาสต์ที่ปลูกบน
มีโซฟีลล์ ,โดยแรกเริ่มขนาดกลาง ขนาดใหญ่ ระบายเหยือกแก้ว ( dovzhenko
, 2001 ) อย่างไรก็ตาม สื่อนี้ทำกะหล่ำยิง chlorotic ใน
การศึกษาของเรา ( ข้อมูลไม่แสดง ) แต่เรือวัฒนธรรมขนาดใหญ่ปรับปรุงคีย์
ดอกกะหล่ํา ( ตารางที่ 2 ) .
ไม่มีความแตกต่างในโปรโตพลาสต์ผลผลิตหรือความมีชีวิตอยู่
พบในหมู่เจ็ดออสเตรเลียแหล่งพันธุ์ ในทั้งหมดนี้
พันธุ์สูง ผลผลิตviabilities และการหารความถี่
) ( ตารางที่ 3 ) โปร microcolonies ได้รับการพัฒนาอย่างดี
20 D ของวัฒนธรรม ( ภาพดี ) และมวลของโคโลนีสีเขียวที่มองเห็นได้ด้วยตา , ได้อย่างง่ายดาย
ในแผ่น 30 D ( รูปบนกลาง D 1e ) และ
ช่วงแรกของต้นและรากงอกได้ปรากฏให้เห็นในสื่อ
E 40 D หลังจากการแยกโปรโตพลาสต์ ( รูปที่ชั้น 1 ) ปรากฏการณ์แรก
เท่านั้นพบว่าลดลงจากระดับโปรยิงใหม่
กว่าพันธุ์อื่น โปรโตพลาสต์หมวดและการฟื้นฟู
ในการศึกษาของเราที่สุดเลยว่าดอกกะหล่ำ ( เช่น คิ๊ก
และ zaal , 1993 ) และเทียบเท่ากับคะน้าพันธุ์สีเขียว
ดาวหาง ( โรเบิร์ต และ เอิร์ล , 1986 ) ด้วยการแบ่งความถี่
ได้ประมาณ 70% สำหรับพันธุ์ต่าง ๆ รวมทั้งใช้
Thalassa ,แก้ไขพิธีสารการระบายเครื่องใช้เรามี
พื้นฐานเสียงสำหรับการปรับปรุง transgenesis จากโปรโตพลาสต์ของ
กะหล่ํา เมื่อเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ ( radchuk et al . , 2002 ;
นูเจนท์ et al . , 2006 ) .
สรุป การศึกษานี้พบว่า การฟื้นฟูจาก
หลายของยุโรปและออสเตรเลียที่มาจัดแสดง
พันธุ์ใหม่ที่มีประสิทธิภาพมากที่สุดจากเนื้อเยื่อและเซลล์มีโซฟิลล์
ใบรายงานในวันที่สำหรับชนิดนี้ โปรแกรมอรรถประโยชน์ของความถี่สูงในระบบใหม่นี้อยู่ภายใต้การเปลี่ยนแปลง
สอบ
ความสําเร็จด้วยโปรโตคอลตามเพลเลอเทียร์ et al . ( 1983 ) มากกว่า
glimelius ( 2527 ) ( สุดท้ายในกิ๊ก และ zaal , 1993 ) เช่น วัฒนธรรมการแยกโปรโตพลาสต์
และมีประสิทธิภาพ จึงเป็นปัจจัย
, ฝังขึ้นสำหรับพันธุ์ Thalassa
( ข้อมูลไม่แสดง ) ,ตามขั้นตอนการพัฒนาที่ริคจ์เป็นระยะ
BV เนเธอร์แลนด์ ดัดแปลงจากเพลเลอเทียร์ et al . ( 1983 ) ( ดู
นูเจนท์ et al . , 2006 ) ยิงวัฒนธรรมของ Brittany แล้วใช้ในการทดลองที่ให้ผลคล้ายกับภาชนะ
ที่ได้จากใบพบว่ามีโซฟิลล์จากสี่ภาชนะชนิด ( ตารางที่ 2 ) .
สูงกว่าจำนวน 1 กอง และยิง
การยิงได้จากวัฒนธรรมที่ปลูกในขวดแก้ว
( ตารางที่ 2 ) เอนไซม์จากใบยิงวัฒนธรรมปลูก
ขนาดใหญ่ระบายเรือวัฒนธรรมที่ผลิตแบ่งความถี่
สูงกว่าจากใบไม้จากภาชนะบรรจุ unvented ของ
เดียวกันหรือขนาดเล็ก ( รูปที่ 1 ) ยิงวัฒนธรรมพัฒนาอย่างแข็งขัน
ใน vented ไห ( รูปที่ 1A และ C ) ความสำคัญของการระบายอากาศของ
เรือวัฒนธรรมและจานเพาะเลี้ยงยังได้รับแสดงให้เห็นในระบบเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ
ผักอื่น ๆ micropropagated กะหล่ำดอก
ต้นกล้าเจริญเติบโตได้ดีในหลอดทดลองในภาชนะที่มีหรือไม่มี
ระบายอากาศเพิ่ม agno3 ( zobayed et al . , 1999 ) และการพัฒนาทางวัฒนธรรมของ napus พลาสต์ได้เมื่อยิง
วัฒนธรรม ใช้เป็นแหล่งของโปรโตพลาสต์ที่ปลูกบน
มีโซฟีลล์ ,โดยแรกเริ่มขนาดกลาง ขนาดใหญ่ ระบายเหยือกแก้ว ( dovzhenko
, 2001 ) อย่างไรก็ตาม สื่อนี้ทำกะหล่ำยิง chlorotic ใน
การศึกษาของเรา ( ข้อมูลไม่แสดง ) แต่เรือวัฒนธรรมขนาดใหญ่ปรับปรุงคีย์
ดอกกะหล่ํา ( ตารางที่ 2 ) .
ไม่มีความแตกต่างในโปรโตพลาสต์ผลผลิตหรือความมีชีวิตอยู่
พบในหมู่เจ็ดออสเตรเลียแหล่งพันธุ์ ในทั้งหมดนี้
พันธุ์สูง ผลผลิตviabilities และการหารความถี่
) ( ตารางที่ 3 ) โปร microcolonies ได้รับการพัฒนาอย่างดี
20 D ของวัฒนธรรม ( ภาพดี ) และมวลของโคโลนีสีเขียวที่มองเห็นได้ด้วยตา , ได้อย่างง่ายดาย
ในแผ่น 30 D ( รูปบนกลาง D 1e ) และ
ช่วงแรกของต้นและรากงอกได้ปรากฏให้เห็นในสื่อ
E 40 D หลังจากการแยกโปรโตพลาสต์ ( รูปที่ชั้น 1 ) ปรากฏการณ์แรก
เท่านั้นพบว่าลดลงจากระดับโปรยิงใหม่
กว่าพันธุ์อื่น โปรโตพลาสต์หมวดและการฟื้นฟู
ในการศึกษาของเราที่สุดเลยว่าดอกกะหล่ำ ( เช่น คิ๊ก
และ zaal , 1993 ) และเทียบเท่ากับคะน้าพันธุ์สีเขียว
ดาวหาง ( โรเบิร์ต และ เอิร์ล , 1986 ) ด้วยการแบ่งความถี่
ได้ประมาณ 70% สำหรับพันธุ์ต่าง ๆ รวมทั้งใช้
Thalassa ,แก้ไขพิธีสารการระบายเครื่องใช้เรามี
พื้นฐานเสียงสำหรับการปรับปรุง transgenesis จากโปรโตพลาสต์ของ
กะหล่ํา เมื่อเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ ( radchuk et al . , 2002 ;
นูเจนท์ et al . , 2006 ) .
สรุป การศึกษานี้พบว่า การฟื้นฟูจาก
หลายของยุโรปและออสเตรเลียที่มาจัดแสดง
พันธุ์ใหม่ที่มีประสิทธิภาพมากที่สุดจากเนื้อเยื่อและเซลล์มีโซฟิลล์
ใบรายงานในวันที่สำหรับชนิดนี้ โปรแกรมอรรถประโยชน์ของความถี่สูงในระบบใหม่นี้อยู่ภายใต้การเปลี่ยนแปลง
สอบ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- Shun el siempre estara con tigo
- Nan today. It's what a nice day, the sun
- always
- ฉันเริ่มงานในปี
- วันสุดท้ายของการทำงาน
- ห้องสำนักงาน
- I hope that we can still be friends...an
- ฉันเพียงแค่อยากจะบอกให้คุณรู้ถึงความรู้ส
- เกี่ยวกับสิทธิและหน้าที่ของประชาชนกับรัฐ
- I send shift for you
- Nan today. It's what a nice day, th e su
- ฉันสียใจกับคุณ ฉันไม่สามารถรักษาน้ำหนักค
- From 1st december 2014, MBC TV program c
- อย่าลืมกินยาด้วยนะ
- คนนอกสายตา
- From 1st december 2014, MBC TV program c
- Lettuce is a biennial, monoecious specie
- ฉันรู้สึกเหงา..
- คุณมีใครอยู่ในใจคุณไม่ทักฉันในfacebookคุ
- ตอนนี้เราถึงปลายทางแล้ว ที่นี่คืออรัญประ
- คุณเล่นเกมส์เถอะ ฉันนอนและ
- i will sent money each month for you to
- I still repeat thing you said to me my h
- Hehe. Should we continue then? ;)
