CLSM of BF01mut colonizing plant tissues. (A) Surface of maize roots and, (B) junction area, adjacent to an emerging root hair. The bacteria grew around the root hair base. Images 3A and B were taken eight days after inoculation. (C) Arabidopsis primary root tip, (D) Arabidopsis root hair. Images 3C and D were taken seven days after inoculation. (E) Lemna root covered by FB01mut biofilm. (F) Lemna frond, ventral side, colonized by FB01mut. Images 3E and F were taken nine days after inoculation.
Moreover, during prolonged incubation time (around nine days)
dense biofilms consisting of shorter, compact cells were formed.
During this process cell shape altered from rod- to dumpy barrel or
square-like structure
After eight days of growing in MS soft agar at room temperature,
the primary root of Z. mays was grown rapidly up to a length
of 20 cm. A segment of the primary root, located around 2–8cm
distant from the root tip, a region especially rich on emerging lateral
roots, was found heavily colonized by FB01mut, which formed
micro-colonies onto surface of outer epidermis cells of the primary
root (Fig. 4A) and at the junctions of primary root and lateral roots
(Fig. 4B). In general, GFP labeled bacteria were detected in decreasing
density towards root tip. A phenomenon previously reported
for tomato root colonization by P. fluorescens (Chin-A-Woeng et al.,
1997). Transmission electron microscopy (TEM) from cross sections
of maize primary root, revealed that bacterial cells colonized surface
of the root as biofilm (Davey and O’Toole, 2000) by forming
several cell layers on it (Fig. 4A). Thickness of the layer did not
exceed 2–3m as revealed by computer aided 3D-analysis of the
TEM images.
Whilst FZB42 and FB01mut, respectively, when colonizing
maize roots, colonized preferentially base and adjacent parts of
primary root including the junction between root epidermis and
root hairs (Fig. 4D), the same bacteria, when applied to Arabidopsis
plantlets, colonized plant roots in a different mode. Here, primary
root tip and the tip area of emerging lateral roots and root hairs
were preferred targets of colonization by FZB42 and its derivative
FB01mut (Fig. 4C and D). On surface of Arabidopsis roots, a significant
portion of colonizing bacteria grew in patches along grooves
or niches formed at the border regions of adjacent epidermis cells.
Growth within this physically protected area might lead to a more
intimate contact to root surface which could result in better utilization
of nutrients excreted by the root.
B. amyloliquefaciens colonized too the roots and the ventral side
of L. minor fronds. Bacterial colonization started at root tips, and
at the junction linking fronds and roots, where micro-colonies
became visible 24 h after inoculation. During following days, bacterial
micro-colonies spread over whole surface of fronds and roots.
Colonization of Lemna culminated in forming of a local biofilm that
covered surface of Lemna root (Fig. 4E). Notably, nine days after
inoculating, nearly the whole ventral side of Lemna fronds was
found colonized by Bacillus cells (Fig. 4F) suggesting that fronds
are preferred sites of bacterial colonization.
CLSM ของ BF01mut เนื้อเยื่อพืชอาณานิคม (A) พื้นผิวของรากข้าวโพดและ (B) บริเวณทางแยกติดกับรากผมที่เกิดขึ้นใหม่ แบคทีเรียเติบโตรอบฐานรากผม รูปภาพ 3A และ B ถูกนำแปดวันหลังจากการฉีดวัคซีน (C) Arabidopsis ปลายรากหลัก (D) รากผม Arabidopsis รูปภาพ 3C และ D ถูกนำเจ็ดวันหลังจากการฉีดวัคซีน (E) ราก Lemna ปกคลุมด้วย FB01mut ไบโอฟิล์ม (F) Lemna เฟิน, หน้าท้องด้านข้าง, อาณานิคมโดย FB01mut รูปภาพ 3E และ F ถูกนำเก้าวันหลังจากการฉีดวัคซีน. นอกจากนี้ในช่วงเวลาบ่มเป็นเวลานาน (ประมาณเก้าวัน) ไบโอฟิล์มหนาแน่นประกอบด้วยสั้นเซลล์ที่มีขนาดกะทัดรัดที่มีอยู่. ในช่วงรูปร่างเซลล์กระบวนการนี้เปลี่ยนแปลงจาก rod- เพื่อบาร์เรลอ้วนเตี้ยม่อต้อหรือตารางเช่นโครงสร้างหลังจากแปดวันของการเจริญเติบโตใน MS วุ้นนุ่มที่อุณหภูมิห้องรากหลักของซี mays ได้รับการเติบโตอย่างรวดเร็วที่มีความยาว20 ซม ส่วนของรากหลักที่ตั้งอยู่รอบ 2-8cm ห่างจากปลายรากภูมิภาคโดยเฉพาะอย่างยิ่งที่เกิดขึ้นใหม่มากมายในด้านข้างรากถูกพบอาณานิคมอย่างหนักโดย FB01mut, ซึ่งเป็นอาณานิคมของไมโครลงบนพื้นผิวของเซลล์ผิวหนังชั้นนอกของหลักราก ( รูปที่. 4A) และที่ทางแยกของรากหลักและรากด้านข้าง(รูป. 4B) โดยทั่วไป GFP แบคทีเรียที่มีข้อความถูกตรวจพบในการลดความหนาแน่นต่อปลายราก ปรากฏการณ์ที่รายงานก่อนหน้านี้สำหรับการล่าอาณานิคมรากมะเขือเทศโดย P. fluorescens (ชิน-A-เวิ้ง et al., 1997) กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน (TEM) จากส่วนข้ามของรากหลักข้าวโพดเปิดเผยว่าเซลล์แบคทีเรียอาณานิคมพื้นผิวของรากเป็นไบโอฟิล์ม (ดาวี่และโอทูล, 2000) โดยการสร้างชั้นเซลล์หลายที่มัน (รูป. 4A) ความหนาของชั้นไม่เกิน 2-3? เมตรเป็นเปิดเผยโดยคอมพิวเตอร์ช่วยวิเคราะห์ 3 มิติของภาพ TEM. ขณะ FZB42 และ FB01mut ตามลำดับเมื่ออาณานิคมรากข้าวโพดอาณานิคมฐานพิเศษและชิ้นส่วนที่อยู่ติดกันของรากหลักรวมถึงทางแยกระหว่าง หนังกำพร้ารากและรากขน (รูป. 4D) แบคทีเรียเดียวกันเมื่อนำไปใช้กับ Arabidopsis ต้น, รากพืชอาณานิคมในโหมดที่แตกต่างกัน ที่นี่หลักปลายรากและบริเวณปลายรากโผล่ออกมาด้านข้างและรากขนถูกเป้าหมายที่ต้องการของการล่าอาณานิคมโดย FZB42 และอนุพันธ์ของมันFB01mut (รูป. 4C และลึก) บนพื้นผิวของราก Arabidopsis อย่างมีนัยสำคัญส่วนหนึ่งของอาณานิคมแบคทีเรียเติบโตในแพทช์พร้อมร่องหรือซอกเกิดขึ้นที่บริเวณชายแดนที่ติดกันของเซลล์ผิวหนังชั้นนอก. การเจริญเติบโตในพื้นที่นี้ได้รับการคุ้มครองทางร่างกายอาจนำไปสู่เพิ่มเติมติดต่อใกล้ชิดกับพื้นผิวรากซึ่งอาจส่งผลให้ดีขึ้น การใช้ประโยชน์ของสารอาหารที่ขับออกมาจากราก. B. amyloliquefaciens อาณานิคมเกินไปรากและหน้าท้องด้านข้างของ L. ใบเล็กน้อย แบคทีเรียเริ่มต้นที่ปลายรากและที่สถานีชุมทางเชื่อมโยงใบและรากที่อาณานิคมขนาดเล็กกลายเป็นมองเห็นได้ตลอด 24 ชั่วโมงหลังจากการฉีดวัคซีน ในช่วงวันที่ต่อไปนี้แบคทีเรียอาณานิคมไมโครแผ่กระจายไปทั่วพื้นผิวทั้งหมดของใบและราก. รกรากของ Lemna culminated ในการสร้างไบโอฟิล์มของท้องถิ่นที่ปกคลุมพื้นผิวของราก Lemna (รูป. 4E) ยวดเก้าวันหลังจากฉีดวัคซีนเกือบหน้าท้องด้านข้างทั้งใบ Lemna ถูกพบอาณานิคมโดยเซลล์ Bacillus (รูป 4F.) บอกว่าใบเป็นที่ต้องการเว็บไซต์ของแบคทีเรีย
การแปล กรุณารอสักครู่..
![](//thimg.ilovetranslation.com/pic/loading_3.gif?v=b9814dd30c1d7c59_8619)