3.5. Changes in individual black mulberry phenolics
To identify the major black mulberry phenolics, LC-MS analysis
was performed on the methanolic extracts of the fruit and the juice
samples. Two anthocyanins, cyanidin-3-glucoside (peak #1,
[M+H]+ (m/z) 449) and cyanidin-3-rutinoside (peak #2, [M+H]+
(m/z) 595) could be identified based on their molecular mass and
maxima in their light absorption spectrum as reported by Qin
et al. (2010). In addition, two phenolic esters (3-caffeoylquinic acid
(peak #3, [M+H]+ (m/z) 355) and 4-cafeoylquinic acid (peak #4,
[M+H]+ (m/z) 355)) and three flavonols (rutin (quercetin-3-rutinoside)
(peak #5, [M+H]+ (m/z) 611), quercetin-3-glucoside (peak #6,
[M+H]+ (m/z) 465), and quercetin-3-malonylglucoside (peak #7,
[M+H]+ (m/z) 551)) were identified, based on data by Lee and
Choi (2012) (Table 3 and Fig. 2).
A targeted HPLC method was subsequently used to quantify
these compounds in 3 representative samples of juice processing,
including the fresh fruit, the final (pasteurized) juice, and the press
cake waste (Table 3). Anthocyanin components had the highest
concentrations in the starting fruit material (fresh fruit), with the
values of 669 mg/100 g DW for cyanidin-3-glucoside and
371 mg/100 g DW for cyanidin-3-rutinoside. These compounds
were found to be partly lost in the press cake (43% and 22% of
the original concentrations for cyanidin-3-glucoside and cyanidin-
3-rutinoside, respectively) leading to 66% of cyanidin-3-glucoside
and 65% of cyanidin-3-rutinoside present in the raw fruit ending up in the final nectar (Table 3). For the identified flavonols,
which included quercetin-3-rutinoside (rutin), quercetin-3-glucoside,
and quercetin-malonyl-glucoside, the trend of change
between samples were different. Approximately, 52% of the major
flavonol, rutin, present in the fresh fruit was recovered in the juice
fraction, while approximately 20% was lost in the press cake. On
the other hand, the press cake was found to be relatively high in
the other two flavonols (quercetin-3-glucoside and quercetin-malonyl-
glucoside), representing 57% and 49% of the original concentrations
in the fresh fruit material. Contradictory to this loss in
the form of press cake, these latter two flavonol compounds were
highly recovered (87% of quercetin-malonyl-glucoside present in
the fresh fruit was ended up in the final juice) or even had
increased values (105% of quercetin-3-glucoside present in the
fresh fruit was ended up in the final juice) in the processed juice
sample compared to the original fruit. This could indicate the
release of these compounds during fruit processing, making them
more accessible in the final processed juice. Remarkably, the final
juice sample was also found to be substantially higher for the contents
of the two phenolic esters identified, 3- and 4-caffeoylquinic
acid, with 401% and 485% of the starting concentrations determined
in the fresh fruit sample; whereas the press cake was relatively
poor in these compounds with 15% and 23% of the values
present in fresh fruit, respectively (Table 3). Similar results have
already been reported in the related studies, indicating an increase
in the phenolics or antioxidants as a result of processing including
drying, thermal processing, etc (Dewanto, Wu, Adom, & Liu, 2002;
Gahler, Otto, & Bohm, 2003; Kamiloglu & Capanoglu, 2013).
3.5. Changes in individual black mulberry phenolicsTo identify the major black mulberry phenolics, LC-MS analysiswas performed on the methanolic extracts of the fruit and the juicesamples. Two anthocyanins, cyanidin-3-glucoside (peak #1,[M+H]+ (m/z) 449) and cyanidin-3-rutinoside (peak #2, [M+H]+(m/z) 595) could be identified based on their molecular mass andmaxima in their light absorption spectrum as reported by Qinet al. (2010). In addition, two phenolic esters (3-caffeoylquinic acid(peak #3, [M+H]+ (m/z) 355) and 4-cafeoylquinic acid (peak #4,[M+H]+ (m/z) 355)) and three flavonols (rutin (quercetin-3-rutinoside)(peak #5, [M+H]+ (m/z) 611), quercetin-3-glucoside (peak #6,[M+H]+ (m/z) 465), and quercetin-3-malonylglucoside (peak #7,[M+H]+ (m/z) 551)) were identified, based on data by Lee andChoi (2012) (Table 3 and Fig. 2).A targeted HPLC method was subsequently used to quantifythese compounds in 3 representative samples of juice processing,including the fresh fruit, the final (pasteurized) juice, and the presscake waste (Table 3). Anthocyanin components had the highestconcentrations in the starting fruit material (fresh fruit), with thevalues of 669 mg/100 g DW for cyanidin-3-glucoside and371 mg/100 g DW for cyanidin-3-rutinoside. These compoundswere found to be partly lost in the press cake (43% and 22% ofthe original concentrations for cyanidin-3-glucoside and cyanidin-3-rutinoside, respectively) leading to 66% of cyanidin-3-glucosideand 65% of cyanidin-3-rutinoside present in the raw fruit ending up in the final nectar (Table 3). For the identified flavonols,which included quercetin-3-rutinoside (rutin), quercetin-3-glucoside,and quercetin-malonyl-glucoside, the trend of changebetween samples were different. Approximately, 52% of the majorflavonol, rutin, present in the fresh fruit was recovered in the juicefraction, while approximately 20% was lost in the press cake. Onthe other hand, the press cake was found to be relatively high inthe other two flavonols (quercetin-3-glucoside and quercetin-malonyl-glucoside), representing 57% and 49% of the original concentrationsin the fresh fruit material. Contradictory to this loss inthe form of press cake, these latter two flavonol compounds werehighly recovered (87% of quercetin-malonyl-glucoside present inthe fresh fruit was ended up in the final juice) or even hadincreased values (105% of quercetin-3-glucoside present in thefresh fruit was ended up in the final juice) in the processed juicesample compared to the original fruit. This could indicate therelease of these compounds during fruit processing, making themmore accessible in the final processed juice. Remarkably, the finaljuice sample was also found to be substantially higher for the contentsof the two phenolic esters identified, 3- and 4-caffeoylquinicacid, with 401% and 485% of the starting concentrations determinedin the fresh fruit sample; whereas the press cake was relativelypoor in these compounds with 15% and 23% of the valuespresent in fresh fruit, respectively (Table 3). Similar results havealready been reported in the related studies, indicating an increasein the phenolics or antioxidants as a result of processing includingdrying, thermal processing, etc (Dewanto, Wu, Adom, & Liu, 2002;Gahler, Otto, & Bohm, 2003; Kamiloglu & Capanoglu, 2013).
การแปล กรุณารอสักครู่..

3.5 การเปลี่ยนแปลงในแต่ละฟีนอลหม่อนสีดำเพื่อระบุฟีนอลสีดำหม่อนที่สำคัญการวิเคราะห์ LC-MS ได้รับการดำเนินการเกี่ยวกับสารสกัดเมทานอลของผลไม้และน้ำผลไม้ตัวอย่าง สอง anthocyanins, cyanidin-3-glucoside (สูงสุด # 1 [M + H] + (m / z) 449) และ cyanidin-3-rutinoside (สูงสุด # 2 [M + H] + (m / z) 595) สามารถระบุได้โดยขึ้นอยู่กับมวลโมเลกุลของพวกเขาและสูงสุดในสเปกตรัมของพวกเขาดูดกลืนแสงตามการรายงานของฉินet al, (2010) นอกจากนี้สองเอสเทอฟีนอล (กรด 3 caffeoylquinic (สูงสุด # 3 [M + H] + (m / z) 355) และ 4 cafeoylquinic กรด (สูงสุด # 4, [M + H] + (m / z) 355)) และสาม flavonols (รูติน (quercetin-3-rutinoside) (สูงสุดที่ 5 [M + H] + (m / z) 611) quercetin-3-glucoside (สูงสุด # 6, [M + H] + (m / z) 465) และ quercetin-3-malonylglucoside (สูงสุด # 7, [M + H] + (m / z) 551)) ที่ถูกระบุบนพื้นฐานของข้อมูลโดยลีและชอย(2012) (ตารางที่ 3 และ รูปที่. 2). วิธี HPLC กำหนดเป้าหมายต่อมาใช้ปริมาณสารเหล่านี้ใน3 ตัวอย่างที่เป็นตัวแทนของการประมวลผลน้ำผลไม้รวมทั้งผลไม้สดรอบชิงชนะเลิศ(พาสเจอร์ไรส์) น้ำผลไม้และกดเสียเค้ก(ตารางที่ 3) ส่วนประกอบ Anthocyanin ได้สูงสุดความเข้มข้นในวัสดุเริ่มต้นผลไม้(ผลไม้สด) กับค่านิยมของ669 มก. / 100 กรัมสำหรับ DW cyanidin-3-glucoside และ371 มก. / 100 กรัมสำหรับ DW cyanidin-3-rutinoside สารเหล่านี้ถูกพบว่ามีการสูญเสียส่วนหนึ่งในเค้กกด (43% และ 22% ของความเข้มข้นของเดิมสำหรับcyanidin-3-glucoside และ cyanidin- 3 rutinoside ตามลำดับ) ที่นำไปสู่ 66% ของ cyanidin-3-glucoside และ 65% ของ cyanidin-3-rutinoside อยู่ในผลไม้ดิบสิ้นสุดในน้ำหวานสุดท้าย (ตารางที่ 3) สำหรับ flavonols ระบุซึ่งรวมถึงquercetin-3-rutinoside (รูติน), quercetin-3-glucoside, และ quercetin-malonyl-glucoside แนวโน้มของการเปลี่ยนแปลงระหว่างกลุ่มตัวอย่างที่แตกต่างกัน ประมาณ 52% ของรายใหญ่flavonol, รูติน, อยู่ในผลไม้สดก็หายในน้ำผลไม้ส่วนในขณะที่ประมาณ20% ก็หายไปในเค้กกด บนมืออื่น ๆ ที่เค้กกดถูกพบว่าเป็นที่ค่อนข้างสูงในอีกสองflavonols (quercetin-3-glucoside และ quercetin-malonyl- glucoside) คิดเป็น 57% และ 49% ของความเข้มข้นของเดิมในวัสดุผลไม้สด ขัดแย้งกับการสูญเสียในครั้งนี้รูปแบบของเค้กกดเหล่านี้หลังสองสารประกอบ flavonol ถูกกู้คืนสูง(87% ของ quercetin-malonyl-glucoside อยู่ในผลไม้สดได้สิ้นสุดลงในน้ำสุดท้าย) หรือแม้กระทั่งได้เพิ่มขึ้นค่า (105% ของ quercetin-3-glucoside อยู่ในผลไม้สดได้สิ้นสุดลงในน้ำสุดท้าย) ในน้ำการประมวลผลตัวอย่างเมื่อเทียบกับผลไม้เดิม ซึ่งอาจบ่งบอกถึงการเปิดตัวของสารเหล่านี้ในระหว่างการประมวลผลไม้ที่ทำให้พวกเขาสามารถเข้าถึงได้มากขึ้นในการประมวลผลน้ำสุดท้าย อย่างน่าทึ่งสุดท้ายตัวอย่างน้ำผลไม้นอกจากนี้ยังพบว่ามีนัยสำคัญที่สูงขึ้นสำหรับเนื้อหาของทั้งสองเอสเทอฟีนอลระบุ3 และ 4-caffeoylquinic กรดที่มี 401% และ 485% ของความเข้มข้นเริ่มต้นที่กำหนดในตัวอย่างผลไม้สด ในขณะที่เค้กกดค่อนข้างยากจนในสารเหล่านี้มี 15% และ 23% ของค่าที่มีอยู่ในผลไม้สดตามลำดับ(ตารางที่ 3) ผลที่คล้ายกันได้รับการรายงานในการศึกษาที่เกี่ยวข้องกับการแสดงให้เห็นการเพิ่มขึ้นในฟีนอลหรือสารต้านอนุมูลอิสระเป็นผลมาจากการประมวลผลรวมทั้งการอบแห้งกระบวนการให้ความร้อนฯลฯ (Dewanto วู, ตบแต่งและหลิว 2002; Gahler อ็อตโตและ Bohm, 2003; & Capanoglu Kamiloglu 2013)
การแปล กรุณารอสักครู่..

3.5 . การเปลี่ยนแปลงในผลหม่อนสีดำบุคคล
ระบุสาขาสีดำหม่อนผล
การวิเคราะห์อินซูลินคือใช้สารสกัดเมทานอลของผลไม้และน้ำผลไม้
ตัวอย่าง สอง cyanidin-3-glucoside anthocyanins ( ยอด# 1
[ M ] ( M / Z ) 449 ) และ cyanidin-3-rutinoside ( ยอด# 2 [ M ]
( M / Z ) 595 ) สามารถระบุตามมวลของโมเลกุลและ
Maxima ของสเปกตรัมการดูดกลืนแสง ตามการรายงานของซิน
et al . ( 2010 ) นอกจากนี้ สองสารเอสเทอร์ ( 3-caffeoylquinic กรด
( ยอด# 3 [ M ] ( M / Z ) 355 ) และ 4-cafeoylquinic กรด ( ยอด# 4
[ M ] ( M / Z ) 355 ) และสาม ฟลาโวนอล ( รูติน ( quercetin-3-rutinoside )
( ยอด# [ M 5 ] ( M / Z ) 611 ) quercetin-3-glucoside ( ยอด# 6
[ M ] ( M / Z ) 465 ) และ quercetin-3-malonylglucoside ( ยอด#
7[ M ] ( M / Z ) 551 ) ถูกระบุบนพื้นฐานของข้อมูล โดย ลี และ
ชอย ( 2012 ) ( ตารางที่ 3 และรูปที่ 2 )
2 วิธีคือกำหนดเป้าหมายโดยการใช้ปริมาณสารเหล่านี้ใน 3 ตัวแทน
ตัวอย่างการประมวลผล น้ำผลไม้ รวมทั้งผลไม้สด สุดท้ายน้ำผลไม้พาสเจอร์ไรซ์ ) และกด
เค้กเสีย ( ตารางที่ 3 ) ส่วนประกอบของแอนโธไซยานินได้สูงสุด
ความเข้มข้นตั้งต้นผลไม้ ( ผลไม้สด ) กับค่า
669 มิลลิกรัม / 100 กรัม และ cyanidin-3-glucoside DW DW
371 มิลลิกรัม / 100 กรัม สำหรับ cyanidin-3-rutinoside . สารเหล่านี้พบว่ามีบางส่วน
หายไปในกดเค้ก ( 43% และ 22% ของต้นฉบับและความเข้มข้นสำหรับ cyanidin-3-glucoside
-
3-rutinoside ไซยานิดิน ตามลำดับ ) นำไปสู่ 66% ของ cyanidin-3-glucoside
และ 65% ของ cyanidin-3-rutinoside ที่มีอยู่ในผลไม้ดิบสิ้นสุดในน้ำหวานสุดท้าย ( ตารางที่ 3 ) สำหรับการระบุฟลาโวนอลซึ่งรวม quercetin-3-rutinoside (
,
quercetin-3-glucoside รูติน ) , และ malonyl เคอร์และ แนวโน้มของการเปลี่ยนแปลง
ระหว่างจำนวนที่แตกต่างกัน ประมาณร้อยละ 52 ของพันตรี
flavonol , รูติน มีอยู่ในผลไม้สดก็หายในน้ำ
เศษ ,ในขณะที่ประมาณร้อยละ 20 หายในกดเค้ก บน
มืออื่น ๆ , กดเค้กอยู่ค่อนข้างสูงใน
อีกสองฟลาโวนอล ( quercetin-3-glucoside เคอร์และ malonyl -
( ) หรือ 57% และ 49% ของ
ความเข้มข้นเดิมในวัตถุดิบผลไม้สด ขัดแย้งกับการสูญเสียนี้ในรูปแบบของเค้กกด
,
3 เหล่านี้หลังสองสารประกอบคือขอกู้ ( 87% ของเควอซิติน ( ปัจจุบัน malonyl
ผลไม้สดก็จบลงในน้ำสุดท้าย ) หรือแม้แต่มี
เพิ่มค่า ( 105 ) quercetin-3-glucoside ในปัจจุบัน
ผลไม้สดได้จบลงในน้ำสุดท้าย ) ในการประมวลผลน้ำ
ตัวอย่างเมื่อเทียบกับไม้เดิม นี้อาจบ่งชี้
ปล่อยสารประกอบเหล่านี้ในระหว่างการแปรรูปผลไม้ ทําให้
สามารถเข้าถึงได้มากขึ้นในขั้นสุดท้ายแปรรูปน้ำผลไม้ อย่างน่าทึ่ง , ตัวอย่าง
น้ำสุดท้ายพบจะสูงขึ้นอย่างมากสำหรับเนื้อหา
ของทั้งสองฟีเทอร์ ระบุ 3 - 4-caffeoylquinic
กรด , 401 ล้านบาท และ 59 % ของปริมาณเริ่มต้นที่กำหนด
ในผลไม้สด ตัวอย่าง ในขณะที่กดเค้กค่อนข้าง
ยากจนในสารประกอบเหล่านี้กับ 15% 23 % ของค่า
ที่มีอยู่ในผลไม้สด ตามลำดับ ( ตารางที่ 3 ) ผลที่คล้ายกัน
แล้วรายงานในการศึกษาที่เกี่ยวข้องกับระบุเพิ่ม
ในผลหรือสารต้านอนุมูลอิสระผลของการประมวลผลรวมทั้ง
แห้ง กระบวนการ ฯลฯ ( dewanto วู adom & , หลิว , 2002 ;
gahler อ๊อตโต้ &โบม , 2003 ; kamiloglu & capanoglu 2013 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
