- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
pretreatment, prior to bioabatement
pretreatment, prior to bioabatement and fermentation.
Sugars and fermentation products were measured at the
beginning and end of fermentations, and gas (CO2) pressure
detectors were used during fermentations to conveniently
assess fermentation progress and measure fermentation lag
times. In bioabated RHH supernatants, fermentations proceeded
with little delay (Fig. 1aec), and glucose was consumed
by all three fermenting microorganisms (Tables 2e4). In
contrast, and as expected based on the fermentation profiles
shown in Fig. 1, a significant amount of residual sugars
remained after fermentations of unabated RHH. As shown in
Fig. 1 and Tables 2e4, the unabated RHH was fermented
poorly by S. cerevisiae strains YRH400 and D5a and not at all by
E. coli FBR5.
E. coli FBR5, an engineered ethanologen with native ability
to metabolize xylose and arabinose, consumed most of the
xylose and arabinose (Table 2) present in bioabated RHH. RHH
supernatant that was abated prior to fermentation yielded
2.25% w/v ethanol at a yield essentially equal to the theoretical
maximum of 0.51 g/g. Without bioabatement, little to no sugar
was consumed and fermented to ethanol by E. coli FBR5. A
summary of E. coli FBR5 fermentations is shown in Table 2.
In fermentations using S. cerevisiae D5a, glucose was
completely consumed by the yeast in fermentations of bioabated
RHH supernatant (Table 3). The ethanol produced in
these fermentations averaged 0.50% w/v, nearly twice that
obtained in unabated hydrolyzate. Without inhibitor abatement,
fermentations with strain D5a either failed to exit lag
phase or had reduced ethanol yield, as shown in Table 3. S.
cerevisiae D5a does not have genes for complete metabolism of
xylose and although low levels of xylitol were occasionally
detected in these experiments due to the presence of an
endogenous aldose reductase [29], strain D5a did not consume
a significant amount of xylose in fermentations of RHH.
Therefore, fermentations were also carried out using a yeast
strain, S. cerevisiae YRH400, engineered with Pichia stipitis XYL1
and XYL2 and S. cerevisiae XKS1 for xylose metabolism [21].
Strain YRH400 completely fermented glucose from bioabated
RHH while without abatement, 0.52% w/v glucose was not
consumed (Table 4).
Under the conditions initially used for fermentation, strain
YRH400 did not metabolize xylose in bioabated RHH (Table 4).
These fermentations using YRH400 were initiated at pH 4.5,
without pH control during the 72 h fermentations. When the
starting pH was increased for YRH400 fermentations,
increased utilization of xylose was observed as follows: 15% of
xylose was consumed when the pH at the start of fermentation
was 6.5, compared to 5% utilization of xylose when
fermentation was initiated at pH 4.5. The pH in the former
reaction drifted from 6.5 to 5.5 by the fermentation end point
(72 h).
Sugars and fermentation products were measured at the
beginning and end of fermentations, and gas (CO2) pressure
detectors were used during fermentations to conveniently
assess fermentation progress and measure fermentation lag
times. In bioabated RHH supernatants, fermentations proceeded
with little delay (Fig. 1aec), and glucose was consumed
by all three fermenting microorganisms (Tables 2e4). In
contrast, and as expected based on the fermentation profiles
shown in Fig. 1, a significant amount of residual sugars
remained after fermentations of unabated RHH. As shown in
Fig. 1 and Tables 2e4, the unabated RHH was fermented
poorly by S. cerevisiae strains YRH400 and D5a and not at all by
E. coli FBR5.
E. coli FBR5, an engineered ethanologen with native ability
to metabolize xylose and arabinose, consumed most of the
xylose and arabinose (Table 2) present in bioabated RHH. RHH
supernatant that was abated prior to fermentation yielded
2.25% w/v ethanol at a yield essentially equal to the theoretical
maximum of 0.51 g/g. Without bioabatement, little to no sugar
was consumed and fermented to ethanol by E. coli FBR5. A
summary of E. coli FBR5 fermentations is shown in Table 2.
In fermentations using S. cerevisiae D5a, glucose was
completely consumed by the yeast in fermentations of bioabated
RHH supernatant (Table 3). The ethanol produced in
these fermentations averaged 0.50% w/v, nearly twice that
obtained in unabated hydrolyzate. Without inhibitor abatement,
fermentations with strain D5a either failed to exit lag
phase or had reduced ethanol yield, as shown in Table 3. S.
cerevisiae D5a does not have genes for complete metabolism of
xylose and although low levels of xylitol were occasionally
detected in these experiments due to the presence of an
endogenous aldose reductase [29], strain D5a did not consume
a significant amount of xylose in fermentations of RHH.
Therefore, fermentations were also carried out using a yeast
strain, S. cerevisiae YRH400, engineered with Pichia stipitis XYL1
and XYL2 and S. cerevisiae XKS1 for xylose metabolism [21].
Strain YRH400 completely fermented glucose from bioabated
RHH while without abatement, 0.52% w/v glucose was not
consumed (Table 4).
Under the conditions initially used for fermentation, strain
YRH400 did not metabolize xylose in bioabated RHH (Table 4).
These fermentations using YRH400 were initiated at pH 4.5,
without pH control during the 72 h fermentations. When the
starting pH was increased for YRH400 fermentations,
increased utilization of xylose was observed as follows: 15% of
xylose was consumed when the pH at the start of fermentation
was 6.5, compared to 5% utilization of xylose when
fermentation was initiated at pH 4.5. The pH in the former
reaction drifted from 6.5 to 5.5 by the fermentation end point
(72 h).
0/5000
pretreatment ก่อน bioabatement และหมักน้ำตาลและผลิตภัณฑ์ที่หมักได้ที่วัดจุดเริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของการหมักแหนม และความดันก๊าซ (CO2)ตรวจจับใช้ในระหว่างการหมักแหนมให้เชิญประเมินความคืบหน้าของหมักดอง และวัดความล่าช้าในการหมักครั้ง ใน bioabated RHH supernatants ครอบครัวหมักแหนมหน่วงเวลาเล็กน้อย (Fig. 1aec), และใช้กลูโคสโดยทั้งหมดสาม fermenting จุลินทรีย์ (2e4 ตาราง) ในความคมชัด และตามที่คาดหวังตามโพรไฟล์การหมักแสดงใน Fig. 1 จำนวนน้ำตาลที่เหลืออย่างมีนัยสำคัญยังคงอยู่หลังจากการหมักแหนม RHH รุนแรง ดังแสดงในตาราง fig. 1 และ 2e4, RHH รุนแรงถูกหมักไม่ดี โดย S. cerevisiae สายพันธุ์ YRH400 และ D5a และดีด้วยFBR5 e. coliFBR5 e. coli, ethanologen การออกแบบ ด้วยความสามารถในท้องถิ่นการ metabolize xylose และ arabinose ใช้ส่วนใหญ่xylose และ arabinose (ตารางที่ 2) นำเสนอใน bioabated RHH RHHsupernatant ที่ลดลงก่อนที่จะหมักให้ผล2.25% w/v เอทานอลที่ผลตอบแทนหลักเท่ากับที่ทฤษฎีจำนวน 0.51 g/g โดย bioabatement น้ำตาลไม่น้อยใช้ และหมักเพื่อเอทานอล โดย FBR5 E. coli Aสรุปการหมักแหนม FBR5 E. coli จะแสดงในตารางที่ 2ในการหมักแหนมใช้ S. cerevisiae D5a กลูโคสได้สมบูรณ์ใช้ โดยยีสต์ในการหมักแหนมของ bioabatedRHH supernatant (ตาราง 3) เอทานอลที่ผลิตในเหล่านี้หมักแหนม averaged 0.50% w/v เกือบสองเท่าได้รับใน hydrolyzate อัน ไม่ มีผลลดหย่อนหมักแหนม ด้วยต้องใช้ D5a ล้มเหลวอย่างใดอย่างหนึ่งเพื่อออกจากความล่าช้าระยะ หรือก็ลดลงผลผลิตเอทานอล ดังแสดงในตาราง 3 S ได้cerevisiae D5a ไม่มียีนสำหรับเผาผลาญสมบูรณ์xylose และแม้ ว่าระดับต่ำสุดของไซลิทอลได้เป็นครั้งคราวพบในการทดลองเหล่านี้เนื่องจากสถานะของการendogenous aldose reductase [29], ต้องใช้ D5a ไม่ได้ไม่ใช้ยอดเงินที่สำคัญของ xylose ในหมักแหนม RHHดังนั้น หมักแหนมได้ยังดำเนินการโดยใช้ยีสต์เป็นต้องใช้ S. cerevisiae YRH400 วิศวกรรมกับ Pichia stipitis XYL1และ XYL2 และ S. cerevisiae XKS1 สำหรับเผาผลาญ xylose [21]YRH400 ต้องใช้หมักน้ำตาลกลูโคสจาก bioabated ทั้งหมดRHH ไม่ลดหย่อน กลูโคส 0.52% w/v ไม่ได้การบริโภค (ตาราง 4)ภายใต้เงื่อนไขเริ่มต้นใช้สำหรับการหมัก สายพันธุ์YRH400 ได้ metabolize xylose ใน bioabated RHH (ตาราง 4)หมักแหนมเหล่านี้ใช้ YRH400 ได้เริ่มต้นที่ค่า pH 4.5โดยไม่มีการควบคุมค่า pH ระหว่างการหมักแหนม 72 h เมื่อการเริ่มต้นค่า pH เพิ่มขึ้นสำหรับการหมักแหนม YRH400xylose เพิ่มใช้ถูกตรวจสอบเป็นดังนี้: 15% ของใช้ xylose เมื่อ pH ที่จุดเริ่มต้นของหมักดองมี 6.5 เมื่อเทียบกับ 5% ใช้ xylose เมื่อหมักเป็นจุดเริ่มต้นที่ค่า pH 4.5 PH ในอดีตปฏิกิริยาที่ลอยจาก 6.5 5.5 โดยจุดสิ้นสุดการหมัก(72 h)
การแปล กรุณารอสักครู่..
pretreatment, prior to bioabatement and fermentation.
Sugars and fermentation products were measured at the
beginning and end of fermentations, and gas (CO2) pressure
detectors were used during fermentations to conveniently
assess fermentation progress and measure fermentation lag
times. In bioabated RHH supernatants, fermentations proceeded
with little delay (Fig. 1aec), and glucose was consumed
by all three fermenting microorganisms (Tables 2e4). In
contrast, and as expected based on the fermentation profiles
shown in Fig. 1, a significant amount of residual sugars
remained after fermentations of unabated RHH. As shown in
Fig. 1 and Tables 2e4, the unabated RHH was fermented
poorly by S. cerevisiae strains YRH400 and D5a and not at all by
E. coli FBR5.
E. coli FBR5, an engineered ethanologen with native ability
to metabolize xylose and arabinose, consumed most of the
xylose and arabinose (Table 2) present in bioabated RHH. RHH
supernatant that was abated prior to fermentation yielded
2.25% w/v ethanol at a yield essentially equal to the theoretical
maximum of 0.51 g/g. Without bioabatement, little to no sugar
was consumed and fermented to ethanol by E. coli FBR5. A
summary of E. coli FBR5 fermentations is shown in Table 2.
In fermentations using S. cerevisiae D5a, glucose was
completely consumed by the yeast in fermentations of bioabated
RHH supernatant (Table 3). The ethanol produced in
these fermentations averaged 0.50% w/v, nearly twice that
obtained in unabated hydrolyzate. Without inhibitor abatement,
fermentations with strain D5a either failed to exit lag
phase or had reduced ethanol yield, as shown in Table 3. S.
cerevisiae D5a does not have genes for complete metabolism of
xylose and although low levels of xylitol were occasionally
detected in these experiments due to the presence of an
endogenous aldose reductase [29], strain D5a did not consume
a significant amount of xylose in fermentations of RHH.
Therefore, fermentations were also carried out using a yeast
strain, S. cerevisiae YRH400, engineered with Pichia stipitis XYL1
and XYL2 and S. cerevisiae XKS1 for xylose metabolism [21].
Strain YRH400 completely fermented glucose from bioabated
RHH while without abatement, 0.52% w/v glucose was not
consumed (Table 4).
Under the conditions initially used for fermentation, strain
YRH400 did not metabolize xylose in bioabated RHH (Table 4).
These fermentations using YRH400 were initiated at pH 4.5,
without pH control during the 72 h fermentations. When the
starting pH was increased for YRH400 fermentations,
increased utilization of xylose was observed as follows: 15% of
xylose was consumed when the pH at the start of fermentation
was 6.5, compared to 5% utilization of xylose when
fermentation was initiated at pH 4.5. The pH in the former
reaction drifted from 6.5 to 5.5 by the fermentation end point
(72 h).
Sugars and fermentation products were measured at the
beginning and end of fermentations, and gas (CO2) pressure
detectors were used during fermentations to conveniently
assess fermentation progress and measure fermentation lag
times. In bioabated RHH supernatants, fermentations proceeded
with little delay (Fig. 1aec), and glucose was consumed
by all three fermenting microorganisms (Tables 2e4). In
contrast, and as expected based on the fermentation profiles
shown in Fig. 1, a significant amount of residual sugars
remained after fermentations of unabated RHH. As shown in
Fig. 1 and Tables 2e4, the unabated RHH was fermented
poorly by S. cerevisiae strains YRH400 and D5a and not at all by
E. coli FBR5.
E. coli FBR5, an engineered ethanologen with native ability
to metabolize xylose and arabinose, consumed most of the
xylose and arabinose (Table 2) present in bioabated RHH. RHH
supernatant that was abated prior to fermentation yielded
2.25% w/v ethanol at a yield essentially equal to the theoretical
maximum of 0.51 g/g. Without bioabatement, little to no sugar
was consumed and fermented to ethanol by E. coli FBR5. A
summary of E. coli FBR5 fermentations is shown in Table 2.
In fermentations using S. cerevisiae D5a, glucose was
completely consumed by the yeast in fermentations of bioabated
RHH supernatant (Table 3). The ethanol produced in
these fermentations averaged 0.50% w/v, nearly twice that
obtained in unabated hydrolyzate. Without inhibitor abatement,
fermentations with strain D5a either failed to exit lag
phase or had reduced ethanol yield, as shown in Table 3. S.
cerevisiae D5a does not have genes for complete metabolism of
xylose and although low levels of xylitol were occasionally
detected in these experiments due to the presence of an
endogenous aldose reductase [29], strain D5a did not consume
a significant amount of xylose in fermentations of RHH.
Therefore, fermentations were also carried out using a yeast
strain, S. cerevisiae YRH400, engineered with Pichia stipitis XYL1
and XYL2 and S. cerevisiae XKS1 for xylose metabolism [21].
Strain YRH400 completely fermented glucose from bioabated
RHH while without abatement, 0.52% w/v glucose was not
consumed (Table 4).
Under the conditions initially used for fermentation, strain
YRH400 did not metabolize xylose in bioabated RHH (Table 4).
These fermentations using YRH400 were initiated at pH 4.5,
without pH control during the 72 h fermentations. When the
starting pH was increased for YRH400 fermentations,
increased utilization of xylose was observed as follows: 15% of
xylose was consumed when the pH at the start of fermentation
was 6.5, compared to 5% utilization of xylose when
fermentation was initiated at pH 4.5. The pH in the former
reaction drifted from 6.5 to 5.5 by the fermentation end point
(72 h).
การแปล กรุณารอสักครู่..
โดยก่อนที่จะ bioabatement และการหมัก .
น้ำตาลและการหมักผลิตภัณฑ์เป็นวัดที่
จุดเริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของ fermentations และก๊าซ ( CO2 ) เครื่องตรวจจับแรงดันที่ใช้ในการค้นหา fermentations
ประเมินความก้าวหน้าและการหมักการหมักวัดความล่าช้า
ครั้ง ใน bioabated supernatants rhh , การ fermentations
กับความล่าช้าเล็กน้อย ( รูปที่ 1aec )และกลูโคสถูกบริโภค
โดยทั้งสามหมักจุลินทรีย์ ( ตาราง 2e4 ) ใน
คมชัดและเป็นที่คาดหวังจากการหมักโปรไฟล์
แสดงในรูปที่ 1 , ปริมาณน้ำตาลที่เหลืออยู่หลังจาก fermentations
ของคงที่ rhh . ดังแสดงในรูปที่ 1 และตาราง 2e4
, rhh คงที่มาหมัก
ไม่ดีโดย S . cerevisiae สายพันธุ์และ yrh400 d5a และไม่ทั้งหมดของ E . coli fbr5
.
E( fbr5 , วิศวกรรม ethanologen กับเจ้าของภาษาจะเผาผลาญน้ำตาลไซโลส และความสามารถ
,
6 บริโภคส่วนใหญ่ และอะราบิโนส ( ตารางที่ 2 ) ปัจจุบันใน bioabated rhh . rhh
น่านที่ถูกลดลง ก่อนที่จะหมักให้ผล
2.25 % W / V เอทานอลที่ผลิตเป็นหลักเท่ากับทฤษฎีสูงสุด 0.51 กรัม / g .
ของโดยไม่ bioabatement เล็กไม่มีน้ําตาล
ถูกใช้ และหมักเอทานอลโดย E . coli fbr5 . a
สรุปของ E . coli fbr5 fermentations แสดงดังตารางที่ 2
fermentations ใช้ใน S . cerevisiae d5a กลูโคสคือ
สมบูรณ์บริโภคโดยยีสต์ใน fermentations ของ bioabated
rhh น่าน ( ตารางที่ 3 ) เอทานอลที่ผลิตใน
fermentations เหล่านี้เฉลี่ย 0.50 % w / v , เกือบสองเท่า
ได้คงที่ hydrolyzate .โดยไม่ต้องยับยั้งการ fermentations , d5a เมื่อยเหมือนกันด้วย
หรือล้มเหลวที่จะออกจากขั้นตอนความล่าช้าลดลงผลผลิตเอทานอล ดังแสดงในตารางที่ 3 S . cerevisiae d5a
ไม่มียีนสำหรับการเผาผลาญที่สมบูรณ์ของ
ไซโลส และถึงแม้ว่าระดับต่ำของไซลิทอลเป็น
ที่ตรวจพบในการทดลองเหล่านี้เนื่องจากการปรากฏตัวของ
โครงสร้างอัตราผลตอบแทน [ 29 ] , ความเครียด d5a ไม่ได้กิน
จำนวนเงินที่สำคัญของเอนไซม์ใน fermentations ของ rhh .
ดังนั้น fermentations ยังดำเนินการโดยใช้ยีสต์
สายพันธุ์ , S . cerevisiae yrh400 วิศวกรรมกับ pichia stipitis xyl1
และ xyl2 และ S . cerevisiae xks1 สำหรับเอนไซม์เมแทบอลิซึม [ 21 ] .
yrh400 เมื่อยเลยหมักกลูโคสจาก bioabated
rhh ในขณะที่โดยไม่ต้องลด 0.52 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก / V กลูโคสไม่ได้
ใช้ ( ตารางที่ 4 )ภายใต้เงื่อนไขในตอนแรกใช้สำหรับหมัก เมื่อย
yrh400 ไม่ได้เผาผลาญน้ำตาลไซโลสใน bioabated rhh ( ตารางที่ 4 ) .
fermentations เหล่านี้ใช้งบประมาณ yrh400 ที่ pH 4.5 ,
โดยไม่ต้องควบคุม pH ในช่วง 72 ชั่วโมง fermentations . เมื่อ pH เพิ่มขึ้นสำหรับ yrh400
เริ่ม fermentations
เพิ่มขึ้น 6 , ใช้สังเกตได้ดังนี้ 15 %
ไซโลส คือบริโภคเมื่อ pH เริ่มต้นของการหมัก
คือ 6.5 , เมื่อเทียบกับการใช้ 5% ของไซโลสเมื่อ
หมักเริ่มต้นที่พีเอช 4.5 . pH ในปฏิกิริยาอดีต
ลอยจาก 6.5 5.5 โดยการหมักจุดสิ้นสุด
( 72 ชั่วโมง )
น้ำตาลและการหมักผลิตภัณฑ์เป็นวัดที่
จุดเริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของ fermentations และก๊าซ ( CO2 ) เครื่องตรวจจับแรงดันที่ใช้ในการค้นหา fermentations
ประเมินความก้าวหน้าและการหมักการหมักวัดความล่าช้า
ครั้ง ใน bioabated supernatants rhh , การ fermentations
กับความล่าช้าเล็กน้อย ( รูปที่ 1aec )และกลูโคสถูกบริโภค
โดยทั้งสามหมักจุลินทรีย์ ( ตาราง 2e4 ) ใน
คมชัดและเป็นที่คาดหวังจากการหมักโปรไฟล์
แสดงในรูปที่ 1 , ปริมาณน้ำตาลที่เหลืออยู่หลังจาก fermentations
ของคงที่ rhh . ดังแสดงในรูปที่ 1 และตาราง 2e4
, rhh คงที่มาหมัก
ไม่ดีโดย S . cerevisiae สายพันธุ์และ yrh400 d5a และไม่ทั้งหมดของ E . coli fbr5
.
E( fbr5 , วิศวกรรม ethanologen กับเจ้าของภาษาจะเผาผลาญน้ำตาลไซโลส และความสามารถ
,
6 บริโภคส่วนใหญ่ และอะราบิโนส ( ตารางที่ 2 ) ปัจจุบันใน bioabated rhh . rhh
น่านที่ถูกลดลง ก่อนที่จะหมักให้ผล
2.25 % W / V เอทานอลที่ผลิตเป็นหลักเท่ากับทฤษฎีสูงสุด 0.51 กรัม / g .
ของโดยไม่ bioabatement เล็กไม่มีน้ําตาล
ถูกใช้ และหมักเอทานอลโดย E . coli fbr5 . a
สรุปของ E . coli fbr5 fermentations แสดงดังตารางที่ 2
fermentations ใช้ใน S . cerevisiae d5a กลูโคสคือ
สมบูรณ์บริโภคโดยยีสต์ใน fermentations ของ bioabated
rhh น่าน ( ตารางที่ 3 ) เอทานอลที่ผลิตใน
fermentations เหล่านี้เฉลี่ย 0.50 % w / v , เกือบสองเท่า
ได้คงที่ hydrolyzate .โดยไม่ต้องยับยั้งการ fermentations , d5a เมื่อยเหมือนกันด้วย
หรือล้มเหลวที่จะออกจากขั้นตอนความล่าช้าลดลงผลผลิตเอทานอล ดังแสดงในตารางที่ 3 S . cerevisiae d5a
ไม่มียีนสำหรับการเผาผลาญที่สมบูรณ์ของ
ไซโลส และถึงแม้ว่าระดับต่ำของไซลิทอลเป็น
ที่ตรวจพบในการทดลองเหล่านี้เนื่องจากการปรากฏตัวของ
โครงสร้างอัตราผลตอบแทน [ 29 ] , ความเครียด d5a ไม่ได้กิน
จำนวนเงินที่สำคัญของเอนไซม์ใน fermentations ของ rhh .
ดังนั้น fermentations ยังดำเนินการโดยใช้ยีสต์
สายพันธุ์ , S . cerevisiae yrh400 วิศวกรรมกับ pichia stipitis xyl1
และ xyl2 และ S . cerevisiae xks1 สำหรับเอนไซม์เมแทบอลิซึม [ 21 ] .
yrh400 เมื่อยเลยหมักกลูโคสจาก bioabated
rhh ในขณะที่โดยไม่ต้องลด 0.52 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก / V กลูโคสไม่ได้
ใช้ ( ตารางที่ 4 )ภายใต้เงื่อนไขในตอนแรกใช้สำหรับหมัก เมื่อย
yrh400 ไม่ได้เผาผลาญน้ำตาลไซโลสใน bioabated rhh ( ตารางที่ 4 ) .
fermentations เหล่านี้ใช้งบประมาณ yrh400 ที่ pH 4.5 ,
โดยไม่ต้องควบคุม pH ในช่วง 72 ชั่วโมง fermentations . เมื่อ pH เพิ่มขึ้นสำหรับ yrh400
เริ่ม fermentations
เพิ่มขึ้น 6 , ใช้สังเกตได้ดังนี้ 15 %
ไซโลส คือบริโภคเมื่อ pH เริ่มต้นของการหมัก
คือ 6.5 , เมื่อเทียบกับการใช้ 5% ของไซโลสเมื่อ
หมักเริ่มต้นที่พีเอช 4.5 . pH ในปฏิกิริยาอดีต
ลอยจาก 6.5 5.5 โดยการหมักจุดสิ้นสุด
( 72 ชั่วโมง )
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- เดือนธันวาคมจะเงียบไหม
- Jobs are broken down into routine, well-
- Pudonnut
- tired
- ซึ่งไก่ย่างที่มีชื่อเสียงเป็นที่รู้จักแล
- continuing instruction
- 食べるくて
- โค
- divided
- ปลอก
- มีใบรับรองการการสอน
- ความสุข
- ช่วงนี้ คุณงานยุ่ง ไม่ค่อยส่งchat หาฉัน
- ลุง
- Why do you read a book midday
- วันเวลาดีๆสำหรับชีวิตฉัน
- เธอใจดีและมีเมตตา
- กำลังรอ
- order in precedence
- เดี๋ยวจะมาหาใหม่
- I have to go. good bye!Remember to take
- เดินทางปลอดภัยนะคะ
- วันเวลาดีๆสำหรับชีวิตฉัน
- Children begin to learn self-regulation
