2.4. Sample collection and laborato

2.4. Sample collection and laboratory analysis
At the end of the study, 10 birds randomly chosen from each treatments were slaughtered
and blood samples were collected, centrifuged at 3000  rpm for 10 min and sera was
collected and stored at 20°C. Sera samples were thawed at room temperature, and insulin
and corticosterone concentrations were determined. Serum insulin concentration was determined
via radioimmunoassay method using procedures described by McMurtry et al. [16].
All samples for each hormone assay were performed in a single run to avoid inter-assay
variation. The maximum binding for [125I] insulin was 25.7%. The sensitivity was 4.3

IU/ml at 80% binding. Radioimmunoassay for corticosterone concentration was performed
using a commercially available kit (IMMULITE 2000, catalog No. L2KAC2). Serum
glucose, total protein, and cholesterol concentrations were measured using biochemical
analyzer (Technicon RA-XT, New York, USA). For Cr content analysis, basal diet samples
in triplicate were wet-digested as described by Chang et al. [17] and were read using atomic
absorption spectrometer with a graphite furnace (Shimadzu AA-660-GFA-4B-P/N 204-
03154-02). Chemical analysis of the diet was run using international procedures of AOAC
[18]. Chromium contents of the experimental diets were ascertained.
2.5. Statistical analyses
The data were analyzed using the GLM procedure of SAS [19]. Linear, quadratic and
cubic polynomial contrasts (regression) were used to evaluate treatment effects.
3. Results
The effects of supplemental dietary chromium on performance of Japanese quails are
shown in Table 2. Increasing supplemental chromium resulted in an increase in body weight
(P
0.05, linear), feed intake (P
0.05, linear), egg production (P
0.01, linear), and
also improved feed efficiency (P
0.01, linear). Supplemental chromium also influenced
egg quality (Table 3). Increased supplemental chromium linearly increased egg weight (P

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.4. ตัวอย่างเก็บรวบรวมและห้องปฏิบัติการวิเคราะห์จบการศึกษา 10 นกสุ่มเลือกจากแต่ละทรีตเมนต์ถูกฆ่าตัวอย่างเลือดที่ เก็บ centrifuged ที่ 3000 rpm สำหรับ 10 นาที และจะถูกรวบรวม และจัดเก็บไว้ที่ 20 องศาเซลเซียส ตัวอย่างจะถูก thawed ที่อุณหภูมิห้อง และอินซูลินและมีกำหนดความเข้มข้น corticosterone กำหนดความเข้มข้นของอินซูลินเซรั่มผ่านวิธี radioimmunoassay ใช้ขั้นตอนที่อธิบายไว้โดย McMurtry et al. [16]ตัวอย่างทั้งหมดสำหรับแต่ละวิเคราะห์ฮอร์โมนดำเนินในการรันเดียวเพื่อหลีกเลี่ยงการทดสอบระหว่างเปลี่ยนแปลง รวมสูงสุดสำหรับอินซูลิน [125I] เป็น 25.7% ระดับความสำคัญได้ 4.3IU/ml ที่รวม 80% ทำ radioimmunoassay สำหรับสมาธิ corticosteroneใช้ชุดใช้ได้ในเชิงพาณิชย์ (IMMULITE 2000 แค็ตตาล็อกเลข L2KAC2) เซรั่มกลูโคส โปรตีนรวม และความเข้มข้นของไขมันที่วัดโดยใช้ชีวเคมีวิเคราะห์ (Technicon RA XT นิวยอร์ก สหรัฐอเมริกา) สำหรับการวิเคราะห์เนื้อหา Cr ตัวอย่างอาหารโรคใน triplicate ถูกต้องเปียกตามที่อธิบายไว้โดยช้างร้อยเอ็ด al. [17] และถูกอ่านโดยใช้อะตอมสเปกโตรมิเตอร์ดูดซึมกับเตาเผาแกรไฟต์ (Shimadzu AA-660-GFA-4B-P/N 204-03154-02) การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารถูกเรียกใช้กระบวนงานสากลของ AOAC[18] เนื้อหาโครเมียมของอาหารทดลองที่ ascertained2.5. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลได้วิเคราะห์โดยใช้กระบวนการ GLM ของ SAS [19] เส้น กำลังสอง และลูกบาศก์สัมผัสพหุนาม (ถดถอย) ถูกใช้เพื่อประเมินผลการรักษา3. ผลลัพธ์มีผลของโครเมียมเสริมอาหารประสิทธิภาพของ quails ญี่ปุ่นแสดงในตารางที่ 2 เพิ่มเติมโครเมียมทำให้เกิดการเพิ่มขึ้นของน้ำหนักตัว(P 0.05 เส้น), อาหารบริโภค (P 0.05 เส้น), ไข่ผลิต (P 0.01 เส้น), และนอกจากนี้ยัง ปรับปรุงประสิทธิภาพการใช้อาหาร (P 0.01 เส้น) เพิ่มเติมโครเมียมยัง มีอิทธิพลต่อไข่คุณภาพ (ตาราง 3) โครเมียมเพิ่มเติมเชิงเส้นเพิ่มน้ำหนักไข่ (P

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.4 การเก็บตัวอย่างและการวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการในตอนท้ายของการศึกษา, 10 นกสุ่มเลือกจากการรักษาแต่ละถูกฆ่าและตัวอย่างเลือดที่เก็บรวบรวมหมุนเหวี่ยงที่3000? รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีและซีรั่มที่ถูกเก็บรวบรวมและเก็บไว้ที่20 องศาเซลเซียส ตัวอย่างซีรั่มที่ถูกละลายที่อุณหภูมิห้องและอินซูลินและความเข้มข้น corticosterone ได้รับการพิจารณา เซรั่มเข้มข้นอินซูลินถูกกำหนดโดยวิธี radioimmunoassay โดยใช้วิธีการอธิบายโดย McMurtry et al, [16]. ตัวอย่างทั้งหมดสำหรับแต่ละการทดสอบฮอร์โมนได้ดำเนินการในการทำงานครั้งเดียวที่จะหลีกเลี่ยงระหว่างการทดสอบรูปแบบ สูงสุดที่ผูกพัน [125i] อินซูลินเป็น 25.7% ความไวเป็น 4.3? IU / ml ที่ 80% มีผลผูกพัน radioimmunoassay ความเข้มข้น corticosterone ได้ดำเนินการโดยใช้ชุดใช้ได้ในเชิงพาณิชย์(IMMULITE 2000 แคตตาล็อกฉบับที่ L2KAC2) เซรั่มกลูโคสโปรตีนทั้งหมดและความเข้มข้นของคอเลสเตอรอลถูกวัดโดยใช้ทางชีวเคมีวิเคราะห์(Technicon RA-XT, New York, USA) สำหรับการวิเคราะห์เนื้อหา Cr ตัวอย่างอาหารพื้นฐานในเพิ่มขึ้นสามเท่าเปียกย่อยตามที่อธิบายช้างet al, [17] และได้รับการอ่านโดยใช้อะตอมสเปกโตรมิเตอร์ที่มีการดูดซึมเตากราไฟท์(Shimadzu AA-660-GFA-4B-P / N 204- 03154-02) การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารที่ดำเนินการโดยใช้วิธีการระหว่างประเทศของ AOAC [18] เนื้อหาโครเมี่ยมของอาหารที่ได้รับการตรวจสอบทดลอง. 2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติวิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้ขั้นตอน GLM ของเอสเอ [19] เชิงเส้นและสมการกำลังสองแตกต่างลูกบาศก์พหุนาม (ถดถอย) ถูกนำมาใช้ในการประเมินผลกระทบต่อการรักษา. 3 ผลผลของโครเมียมอาหารเสริมประสิทธิภาพการทำงานของหนูเล็กญี่ปุ่นที่แสดงในตารางที่2 การเพิ่มเสริมโครเมียมผลในการเพิ่มขึ้นของน้ำหนักตัว(P? 0.05, เชิงเส้น) ปริมาณอาหารที่กิน (P? 0.05, เชิงเส้น), การผลิตไข่ (P ? 0.01, เชิงเส้น) และยังมีการปรับปรุงประสิทธิภาพการใช้อาหาร(P? 0.01, เชิงเส้น) เสริมโครเมียมยังได้รับอิทธิพลคุณภาพของไข่ (ตารางที่ 3) เพิ่มเสริมโครเมียมเพิ่มขึ้นเป็นเส้นตรงน้ำหนักไข่ (P?

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.4 . การเก็บตัวอย่างและ
การวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการผลการศึกษา 10 นกสุ่มเลือกจากแต่ละวิธีฆ่า
) และเก็บตัวอย่างที่ระดับที่ 3 , 000 ,  รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีและ Sera คือ
รวบรวม และจัดเก็บใน  20 ° C ( ตัวอย่างที่ละลายในอุณหภูมิห้อง และอินซูลินและปริมาณคอร์ติโคสเตอโรน
มุ่งมั่นเซรั่มเข้มข้นอินซูลินถูกกำหนดโดยวิธี radioimmunoassay
การใช้ขั้นตอนที่อธิบายไว้โดยเมิกเมอร์ตรี et al . [ 16 ] .
ตัวอย่างสำหรับการทดสอบแต่ละฮอร์โมนได้ในระยะเดียวเพื่อหลีกเลี่ยงอินเตอร์ (
ความแปรผัน สูงสุดผลผูกพัน [ 125I ] อินซูลินคือ 25.7 เปอร์เซ็นต์ ความไวเป็น 4.3

IU / ml ที่ 80% เข้าเล่ม radioimmunoassay สำหรับคอร์ติโคสเตอโรนระดับปฏิบัติ
ใช้เป็นชุดพร้อมใช้งานในเชิงพาณิชย์ ( immulite 2000 แคตตาล็อกไม่ l2kac2 ) เซรั่ม
กลูโคส โปรตีนรวม และคอเลสเตอรอลปริมาณการวัดวิเคราะห์ทางชีวเคมี
( technicon ra-xt , นิวยอร์ก , สหรัฐอเมริกา ) สำหรับการวิเคราะห์ปริมาณโครเมียม แรกเริ่มอาหารตัวอย่าง
ทั้งสามใบเปียกย่อยตามที่อธิบายไว้โดยชาง et al . [ 17 ] และถูกอ่าน Atomic
การดูดซึมสเปคโตรมิเตอร์ กับ กราไฟท์ เตา ( Shimadzu aa-660-gfa-4b-p / N 204 -
03154-02 ) การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารที่ถูกเรียกใช้ระหว่างประเทศ ขั้นตอนไม่
[ 18 ] โครเมียม ปริมาณของอาหารทดลองการตรวจสอบ .
2.5 สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์
วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้ glm ขั้นตอนของ SAS [ 19 ] เชิงเส้นกำลังสองและ
ลูกบาศก์แบบแตกต่าง ( Regression ) โดยมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลการรักษา .
3 ผลของการเสริมโครเมียม
เสริมประสิทธิภาพของนกกระทาญี่ปุ่น
แสดงในตารางที่ 2 การเพิ่มอาหารเสริมโครเมียม มีผลทำให้มีการเพิ่มน้ำหนัก ( p +

เชิงเส้น ) , ปริมาณอาหารที่กิน ( P
0.05 , เชิงเส้น , การผลิตไข่ ( P
0.01 , เชิงเส้น ) และยังมีการปรับปรุงประสิทธิภาพการใช้อาหาร ( P

0.01