Flow cytometric measurements.
Flow cytometry was used to determine the final cell concentration and average biovolume after growth.
A 10-l aliquot of SYBR green stain (Molecular Probes, Basel, Switzerland), diluted 100 times in
dimethyl sulfoxide (Fluka Chemie AG, Buchs, Switzerland), was added to 1 ml of a bacterial suspension and incubated for 15 min at room temperature in the dark before analysis.
For outer membrane permeabilization, EDTA (pH 8) was added (5 mM final concentration) to the sample together with the stain (1).
If asample contained more than 10cells ml1, a dilution prior to the staining procedure was done.
All samples were measured on a CyFlow Space flow cytometer (Partec, Mu¨nster, Germany) equipped with a 200-mW solid-state laser emitting a fixed wavelength of 488 nm and equipped with volumetric counting hardware.
The trigger was set on the green fluorescence (520-nm) channel, and signals for total cell counting were collected on the combined 520-nm/630-nm(red fluorescence) dot plot.
For cellular biovolume estimations, additional signals were collected on the combined 520-nm/side scatter (SSC) dot plot.
An experimentally derived correlation factor was then used to determine the cellular
biovolume (15).
The quantification limit of the instrument was below 1,000 cells ml1 with an average standard deviation of less than 5% (14).
Flow cytometric measurements.
Flow cytometry was used to determine the final cell concentration and average biovolume after growth.
A 10-l aliquot of SYBR green stain (Molecular Probes, Basel, Switzerland), diluted 100 times in
dimethyl sulfoxide (Fluka Chemie AG, Buchs, Switzerland), was added to 1 ml of a bacterial suspension and incubated for 15 min at room temperature in the dark before analysis.
For outer membrane permeabilization, EDTA (pH 8) was added (5 mM final concentration) to the sample together with the stain (1).
If asample contained more than 10cells ml1, a dilution prior to the staining procedure was done.
All samples were measured on a CyFlow Space flow cytometer (Partec, Mu¨nster, Germany) equipped with a 200-mW solid-state laser emitting a fixed wavelength of 488 nm and equipped with volumetric counting hardware.
The trigger was set on the green fluorescence (520-nm) channel, and signals for total cell counting were collected on the combined 520-nm/630-nm(red fluorescence) dot plot.
For cellular biovolume estimations, additional signals were collected on the combined 520-nm/side scatter (SSC) dot plot.
An experimentally derived correlation factor was then used to determine the cellular
biovolume (15).
The quantification limit of the instrument was below 1,000 cells ml1 with an average standard deviation of less than 5% (14).
การแปล กรุณารอสักครู่..
ลักษณะการไหลผ่านวัด
( การใช้เพื่อตรวจสอบระบบและถ่ายทอดความเข้มข้นของเซลล์ biovolume เฉลี่ยหลังการ
10 - L ส่วนลงตัวของ SYBR กรีนคราบ ( โมเลกุล ) , Basel , สวิตเซอร์แลนด์ ) , เจือจาง 100 ครั้งใน
เต๊ะ ( fluka CHEMIE AG , buchs , สวิตเซอร์แลนด์ )คือเพิ่ม 1 มิลลิลิตร ระงับเชื้อแบคทีเรียและเชื้อ 15 นาทีที่อุณหภูมิห้องในที่มืดก่อนการวิเคราะห์
สำหรับ permeabilization เนื้อเยื่อชั้นนอก , EDTA ( pH 8 ) เพิ่ม ( 5 มม. จึงนาล สมาธิ ) ตัวอย่างกันด้วยคราบ ( 1 )
ถ้าจำนวนมีมากกว่า 10cells ml 1 เจือจางก่อนการย้อมสีวิธีทํา
ตัวอย่างทั้งหมดจะถูกวัดในพื้นที่ cyflow flโอ๊ยใช้โมโน ( พาร์เท็ค มู่ตั้ง nster , เยอรมนี ) พร้อมกับ 200 MW ของเลเซอร์เปล่งจึง xed ความยาวคลื่น nm แล้วพร้อมกับปริมาตรนับฮาร์ดแวร์
เรียกถูกตั้งค่าบน uorescence flสีเขียว ( 520 nm ) ช่อง และสัญญาณทั้งหมดนับเซลล์ครั้งนี้รวม 520 nm / 630 nm ( สีแดงfl uorescence ) พล็อตจุด
สำหรับมือถือ biovolume การส่งสัญญาณเพิ่มเติมครั้งนี้รวม 520 nm / ด้านกระจาย ( SSC ) พล็อตจุด
มีความสัมพันธ์นี้ได้ปัจจัยแล้วใช้เพื่อตรวจสอบโทรศัพท์มือถือ
biovolume ( 15 )
ในขีด จำกัด ของการไฟฟ้าจึงมีด้านล่าง 1000 มิลลิลิตร 1 เซลล์ เฉลี่ยส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานไม่เกิน 5% ( 14 )
การแปล กรุณารอสักครู่..