RESULT AND DISCUSSION In recent years, it has become difficult to maintain an ample supply of medicinal plants due to several factors, such as ruthless exploitation from natural habitat, lack of conservation of the environment, increasing labor costs and economical or technical problems associated with the cultivation of medicinal plants. The use of tissue culture technique for biosynthesis of secondary metabolites, particularly in plants of pharmaceutical significance, holds promise for the controlled production of plant constituents (Kokate et al., 2008). In spite of recent development in synthetic chemistry, higher plants are still an important source of medicinal compounds (Debnath et al., 2010). Formation of callus is the outcome of cell division and cell expansion under the influence of exogenously supplied plant growth regulator (Pierik, 1987). Calli like organs and cells are seats of metabolism and metabolic gradients. Despite changes in the physical form, they are capable of continued production of secondary metabolites e.g. Anthraquinone from Ophiorrhiza pumila tissue and cell cultures (Kitajima et al., 1998). Physical, chemical or biological stress leads to alteration in the concentration of secondary metabolites (Yeoman and Yeoman, 1996). Tissue culture media and controlled conditions reported to enhance callus growth along with secondary metabolite production of isoflavonoid in soyabean (Tuominen and Musgrave, 2006); Anthraquinones from Ophiorrhiza pumila tissue and cell cultures (Kitajima et al., 1998). Compact cell aggregates (Fu et al., 2005) and Methyl Jasmonate is reported to produce hispidulin in Saussurea medusa (Fu et al., 2006). Optimization of the hormonal concentration and combination are often effective. High auxin levels, although good for cell growth, are often deleterious to secondary metabolite production. Alteration in the environmental factors such as nutrient levels, light and temperature may also affect in increasing the productivity (Zenk et al, 1975). Plant growth regulators were tested in combinations of auxins, namely 2,4-D and IAA; along with cytokinins Kinetin and BAP. Amongst the combination of growth regulators tested, IAA: Kin (5:5) produced upto 1600 mg of callus from explants of 40-60 mg initial (Fig.1A) fresh weight in a period of 6 weeks (Fig.1E), The callus induced gradually covered the explants (Fig 1B, Fig 1C). Browning of callus was initiated at the contact region with the medium at the end of 4 weeks (Fig. 1D). Proliferation of callus continued till the end of 9 weeks (Fig. 1F) (Table 1). When BAP was used singly the amount of callus produced was less than 600mg/explants which is comparable to the control treatment devoid of plant growth regulators.
ผลและอภิปรายในปีที่ผ่านมา มันได้กลายเป็นยากที่จะรักษาอุปทานกว้างขวางของพืชสมุนไพรเนื่องจากปัจจัยหลายประการ เช่นใช้ประโยชน์จากหินจากธรรมชาติอยู่อาศัย ขาดการอนุรักษ์สภาพแวดล้อม เพิ่มค่าแรงและปัญหาเศรษฐกิจ หรือทางเทคนิคที่เกี่ยวข้องกับการเพาะปลูกพืชสมุนไพร การใช้เทคนิคเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อสำหรับการสังเคราะห์ของ metabolites รอง โดยเฉพาะอย่างยิ่งในพืชสำคัญยา มีสัญญาในการผลิตควบคุมพืช constituents (Kokate et al., 2008) แม้ว่าการพัฒนาล่าสุดทางเคมีสังเคราะห์ พืชสูงได้ยังเป็นแหล่งสำคัญของสารยา (Debnath et al., 2010) จัดตั้งให้มีผลของการแบ่งเซลล์และขยายเซลล์ภายใต้อิทธิพลของ exogenously ให้พืชเจริญเติบโตควบคุม (Pierik, 1987) ที่นั่งของเมแทบอลิซึมและการไล่ระดับสีที่เผาผลาญ Calli เช่นอวัยวะและเซลล์ได้ แม้ มีการเปลี่ยนแปลงในรูปร่าง พวกเขามีความสามารถในการผลิตอย่างต่อเนื่องของ metabolites รองเช่น Anthraquinone จาก Ophiorrhiza pumila เนื้อเยื่อและเซลล์วัฒนธรรม (Kitajima et al., 1998) ความเครียดทางกายภาพ ทางเคมี หรือชีวภาพนำไปแก้ไขในความเข้มข้นของ metabolites รอง (Yeoman และ Yeoman, 1996) สื่อเยื่อและเงื่อนไขควบคุมรายงานเพื่อเพิ่มประสิทธิภาพการเจริญเติบโตให้กับผลิต metabolite รอง isoflavonoid ใน soyabean (Tuominen และมัสเกรฟ 2006); Anthraquinones จาก Ophiorrhiza pumila เนื้อเยื่อและเซลล์วัฒนธรรม (Kitajima et al., 1998) เซลล์ขนาดเล็กรวม (ฟู et al., 2005) และ Methyl Jasmonate รายงานการผลิต hispidulin ใน Saussurea เมดูซ่า (ฟูและ al., 2006) เพิ่มประสิทธิภาพของความเข้มข้นของฮอร์โมนและชุดมักมีประสิทธิภาพ ออกซินสูงระดับ แม้ว่าการเจริญเติบโตของเซลล์ มักร้าย metabolite รองผลิต แก้ไขในปัจจัยแวดล้อมเช่นระดับธาตุอาหาร แสง และอุณหภูมิอาจมีผลต่อในการเพิ่มผลผลิต (Zenk et al, 1975) หน่วยงานกำกับดูแลการเจริญเติบโตของพืชทดสอบในชุดของ auxins ได้แก่ 2, 4-D และ IAA กับ cytokinins Kinetin และ BAP. หมู่รวมเจริญเติบโตของ หน่วยงานกำกับดูแลทดสอบ IAA: กิน (5:5) สำหรับผลิต 1600 มก.แคลลัสจาก explants เริ่มต้น 40-60 มก. (Fig.1A) น้ำหนักสดในระยะเวลา 6 สัปดาห์ (Fig.1E), แคลลัสที่เกิดค่อย ๆ ครอบคลุม explants (ฟิก 1B ฟิก 1C) เกิดสีน้ำตาลของแคลลัสถูกเริ่มต้นที่ภูมิภาคติดต่อกับสื่อเมื่อสิ้นสุดสัปดาห์ที่ 4 (Fig. 1D) ของให้อย่างต่อเนื่องจนถึงสิ้นสุดสัปดาห์ที่ 9 (Fig. 1F) (ตารางที่ 1) เมื่อใช้ BAP เดี่ยว จำนวนให้ผลิตได้น้อยกว่า 600mg/explants ซึ่งเทียบได้กับการรักษาควบคุมไร้หน่วยงานกำกับดูแลการเจริญเติบโตของพืช
การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลและการอภิปรายในปีที่ผ่านมามันได้กลายเป็นเรื่องยากที่จะรักษาอุปทานเพียงพอของพืชสมุนไพรเนื่องจากปัจจัยหลายประการเช่นการแสวงหาผลประโยชน์จากการไร้ความปรานีอยู่อาศัยตามธรรมชาติขาดการอนุรักษ์สิ่งแวดล้อมเพิ่มขึ้นค่าใช้จ่ายแรงงานและปัญหาการประหยัดหรือทางเทคนิคที่เกี่ยวข้องกับ การเพาะปลูกของพืชสมุนไพร การใช้เทคนิคการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อสำหรับการสังเคราะห์ของสารทุติยภูมิโดยเฉพาะอย่างยิ่งในพืชที่มีความสำคัญยาถือสัญญาสำหรับการผลิตการควบคุมขององค์ประกอบพืช (Kokate et al., 2008) ทั้งๆที่มีการพัฒนาล่าสุดในวิชาเคมีสังเคราะห์พืชที่สูงขึ้นยังคงเป็นแหล่งสำคัญของสารสมุนไพร (Debnath et al., 2010) การก่อตัวของแคลลัสเป็นผลมาจากการแบ่งเซลล์และการขยายตัวของเซลล์ภายใต้อิทธิพลของลิ้นจี่ที่ให้มาควบคุมการเจริญเติบโตของพืช (Pierik, 1987) แคลลัสเช่นอวัยวะและเซลล์ที่นั่งของการเผาผลาญและการไล่ระดับสีการเผาผลาญอาหาร แม้จะมีการเปลี่ยนแปลงในรูปแบบทางกายภาพที่พวกเขามีความสามารถในการผลิตอย่างต่อเนื่องของสารทุติยภูมิเช่นแอนทราจากเนื้อเยื่อ Ophiorrhiza มิล่าเซลล์และวัฒนธรรม (Kitajima et al., 1998) ทางกายภาพเคมีหรือความเครียดทางชีวภาพจะนำไปสู่การเปลี่ยนแปลงในความเข้มข้นของสารทุติยภูมิ (เสรีชนและเสรีชน, 1996) สื่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อและเงื่อนไขในการควบคุมการรายงานไปยังส่งเสริมการเจริญเติบโตแคลลัสพร้อมกับการผลิต metabolite รองของ isoflavonoid ในถั่วเหลือง (Tuominen และเกรฟส์, 2006); แอนทราจากเนื้อเยื่อ Ophiorrhiza มิล่าเซลล์และวัฒนธรรม (Kitajima et al., 1998) มวลรวมมือถือขนาดกะทัดรัด (Fu et al., 2005) และ Methyl jasmonate มีรายงานการผลิต hispidulin ใน Saussurea แมงกะพรุน (Fu et al., 2006) การเพิ่มประสิทธิภาพของความเข้มข้นของฮอร์โมนและการรวมกันมักจะมีประสิทธิภาพ ออกซินระดับสูงแม้ว่าที่ดีสำหรับการเจริญเติบโตของเซลล์มักจะเป็นอันตรายต่อการผลิต metabolite รอง การเปลี่ยนแปลงในปัจจัยสิ่งแวดล้อมเช่นสารอาหารระดับแสงและอุณหภูมิยังอาจส่งผลกระทบในการเพิ่มประสิทธิภาพการผลิต (Zenk และคณะ, 1975) ควบคุมการเจริญเติบโตของพืชได้มีการทดสอบในการรวมกันของ auxins คือ 2,4-D และ IAA; พร้อมกับไซโตไคนิ Kinetin และ BAP ท่ามกลางการรวมกันของการเจริญเติบโตของการทดสอบ IAA: คิน (ที่ 5: 5) การผลิตไม่เกิน 1,600 มิลลิกรัมของแคลลัสจากชิ้นส่วนของ 40-60 มิลลิกรัมเริ่มต้น (Fig.1A) น้ำหนักสดในช่วง 6 สัปดาห์ (Fig.1E) แคลลัสเหนี่ยวค่อยๆปกคลุมชิ้น (รูปที่ 1B, รูปที่ 1C) บราวนิ่งของแคลลัสได้ริเริ่มที่ติดต่อภูมิภาคที่มีขนาดกลางที่ส่วนท้ายของสัปดาห์ที่ 4 (รูป. 1D) การแพร่กระจายของแคลลัสอย่างต่อเนื่องจนถึงสิ้นสัปดาห์ที่ 9 (รูป. 1F) (ตารางที่ 1) เมื่อ BAP ถูกนำมาใช้โดยลำพังปริมาณของแคลลัสที่ผลิตได้น้อยกว่า 600mg / ชิ้นซึ่งเทียบได้กับการรักษาควบคุมไร้ควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลและการอภิปรายใน ปี ล่าสุดมันได้กลายเป็นยากที่จะรักษาอุปทานเพียงพอของพืชสมุนไพร เนื่องจากปัจจัยหลายประการ เช่น การใช้ประโยชน์จากหินธรรมชาติ ขาดการอนุรักษ์สิ่งแวดล้อม การเพิ่มต้นทุนแรงงาน และปัญหาทางเศรษฐกิจ หรือทางเทคนิคที่เกี่ยวข้องกับการปลูกพืชสมุนไพรการใช้เทคนิคการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อการสังเคราะห์สารประกอบทุติยภูมิ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในพืชทางเภสัชกรรม ถือสัญญาสำหรับควบคุมการผลิตของทางโรงงาน ( kokate et al . , 2008 ) ทั้งๆที่การพัฒนาล่าสุดในเคมีสังเคราะห์ พืชที่สูงขึ้นยังคงเป็นแหล่งสำคัญของสารประกอบยา ( debnath et al . , 2010 )การเกิดแคลลัส คือ ผลของการแบ่งเซลล์และเซลล์ขยายตัวภายใต้อิทธิพลของ exogenously มาควบคุมการเจริญเติบโตพืช ( pierik , 1987 ) เนื้อเยื่ออวัยวะและเซลล์เช่นที่นั่งของเมแทบอลิซึม และสลายการไล่ระดับสี . แม้จะมีการเปลี่ยนแปลงในรูปแบบทางกายภาพ พวกเขามีความสามารถในการผลิตอย่างต่อเนื่องของสารทุติยภูมิ เช่นแอนทราควิโนนจาก ophiorrhiza pumila เนื้อเยื่อและเซลล์วัฒนธรรม ( คิตาจิม่า et al . , 1998 ) ความเครียดทางกายภาพ เคมี หรือชีวภาพ นำไปสู่การเปลี่ยนแปลงในความเข้มข้นของสารประกอบทุติยภูมิ ( องค์รักษ์ และองค์รักษ์ , 1996 ) เนื้อเยื่อสื่อวัฒนธรรมและสภาพควบคุมรายงานเพื่อเพิ่มการเติบโตของแคลลัสพร้อมกับการผลิตการสร้างสารทุติยภูมิของซฟลาโวนอยด์ในถั่วเหลือง ( tuominen และมัสเกรฟ ,2006 ) ; แอนทราควิโนนจาก ophiorrhiza pumila เนื้อเยื่อและเซลล์วัฒนธรรม ( คิตาจิม่า et al . , 1998 ) กลุ่มเซลล์ขนาดเล็ก ( Fu et al . , 2005 ) และเมทิลจั มเนตมีรายงานการผลิต hispidulin ในบัวหิมะเมดูซ่า ( Fu et al . , 2006 ) การเพิ่มประสิทธิภาพของฮอร์โมน ความเข้มข้นและรวมกันมักจะมีประสิทธิภาพ ระดับออกซินสูง แต่ที่ดีสำหรับการเจริญเติบโตของเซลล์มักจะเป็นอันตรายเพื่อการผลิตระดับมัธยมศึกษา การเปลี่ยนแปลงด้านสิ่งแวดล้อม เช่น ระดับธาตุอาหาร แสง และอุณหภูมิ อาจมีผลต่อการเพิ่มผลผลิต ( zenk et al , 1975 ) สารควบคุมการเจริญเติบโตของพืชทดสอบในชุดของออกซินคือ 2 , 4-D และ IAA ; พร้อมกับไซโตไคนินและความเข้มข้นที่เหมาะสม ท่ามกลางการรวมกันของสาร IAA : ทดสอบคิน ( 5 : 5 ) ผลิตไม่เกิน 1 , 600 มิลลิกรัม แคลลัสจากใบอ่อนของต้น ( 40-60 มิลลิกรัมต่อน้ำหนักสด fig.1a ) ในช่วง 6 สัปดาห์ ( fig.1e ) , นำแคลลัสที่ค่อยๆปกคลุมเนื้อเยื่อ ( มะเดื่อมะเดื่อ 1B , 1C ) การเกิดสีน้ำตาลของแคลลัส เป็นโครงการที่ติดต่อเขตกับสื่อที่ส่วนท้ายของสัปดาห์ที่ 4 ( ภาพดี ) การงอกของแคลลัสต่อจนถึงจุดสิ้นสุดของสัปดาห์ที่ 9 ( รูปที่ชั้น 1 ) ( ตารางที่ 1 )เมื่อใช้เดี่ยว ๆและปริมาณของแคลลัสที่ผลิตน้อยกว่าอาหารราคาถูก / ซึ่งก็เปรียบได้กับการควบคุมการรักษาไร้สารควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
การแปล กรุณารอสักครู่..
